altona altona RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0 always a drop ahead. 07/2015 altona Diagnostics GmbH Mörkenstr Hamburg Germany

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1 altona DIAGNOSTICS altona DIAGNOSTICS RealStar Dengue RT-PCR Kit /2015 altona Diagnostics GmbH Mörkenstr Hamburg Germany phone fax always a drop ahead.

2 RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0 Pour utilisation avec Mx 3005P QPCR System (Stratagene) VERSANT kpcr Molecular System AD (Siemens) ABI Prism 7500 SDS and 7500 Fast SDS (Applied Biosystems) LightCycler 480 Instrument II (Roche) Rotor-Gene 3000/6000 (Corbett Research) Rotor-Gene Q5/6 plex Platform (QIAGEN) CFX96 /Dx Real-Time System (BIO-RAD) Usage en diagnostic in vitro Référence: tests MAN FR-01 Conserver à -25 C C Juillet 2015 altona Diagnostics GmbH Mörkenstraße 12 D Hamburg

3 Sommaire 1. Usage prévu Composants du kit Conservation Matériels requis non fournis Informations générales Description du produit Mises en garde et précautions Mode d emploi Préparation de l échantillon Préparation du Mastermix Préparation de la réaction Evaluation des performances Sensibilité analytique Spécificité analytique Précision Limites et précautions Contrôle de qualité Assistance technique Marques déposées et responsabilité Explications des symboles Programmation des instruments de PCR en temps réel Paramètres Marqueurs de fluorescence (fluorophores) Profil de température et acquisition du fluorophore Analyse des données Validité du test de diagnostic Test de diagnostic valide (qualitatif) Test de diagnostic invalide (qualitatif) Interprétation des résultats

4 1. Usage prévu Le kit est un test de diagnostic in vitro, basé sur la technologie PCR en temps réel, pour la détection qualitative de l ARN spécifique du virus de la Dengue. Il convient d éviter des cycles répétés de congélation-décongélation (plus de deux) car cela peut affecter les performances du test. Les réactifs doivent être congelés en aliquote en cas d utilisation occasionnelle. La conservation à +4 C ne doit pas excéder une période de deux heures. Le Master A et le Master B doivent être conservés à l abri de la lumière. 2. Composants du kit 4. Matériels requis non fournis Couleur du couvercle Bleu Violet Vert Rouge Blanc Composants Master A Master B Internal Control 1 Quantification Standard 2 PCR grade Nb de tubes Water 3 Volume [µl/tube] Contrôle interne (IC) 2 Le kit contient quatre étalons (QS1-QS4) 3 Eau ultra-pure pour biologie moléculaire Instrument adapté à la PCR en temps réel (Chapitre 6: Description du produit) Système ou kit approprié à l extraction des acides nucléiques Centrifugeuse de paillasse avec rotor pour tubes réactionnels de 2 ml Centrifugeuse avec rotor pour microplaques, si des plaques de 96 puits sont utilisées Vortex Plaques de 96 puits ou tubes de réaction avec matériel de fermeture (optique) correspondant Pipettes (réglables) Cônes avec filtres (jetables) Gants non talqués (jetables) 3. Conservation Le kit est expédié sous glace carbonique. Les composants du kit doivent arriver congelés. Si un ou plusieurs composants ne sont pas congelés à la réception, ou si l un des tubes a été endommagé pendant le transport, merci de contacter altona Diagnostics GmbH pour assistance. Tous les composants doivent être conservés à -25 C C dès leur réception. NOTE Merci de vous assurer que les instruments ont été installés, calibrés, vérifiés et entretenus selon les instructions et les recommandations du fabricant. 6 7

5 5. Informations générales Le virus de la Dengue (DENV) est un virus appartenant à la famille Flaviviridae. Il existe 4 sérotypes connus (DENV 1-4). Le génome du virus DENV est sous forme d ARN simple brin de polarité positive [(+)ssrna]. Les gènes sont localisés sur un même segment d environ 11 kb. Les régions 5 et 3 du génome contiennent des séquences spécifiques qui permettent la traduction directe et la synthèse des protéines par les ribosomes hôtes sans limite. Les flavivirus sont des virus enveloppés d environ 50 nm de diamètre. La protéine E de l enveloppe virale sert de médiateur pour l accroche sur les récepteurs et elle est le principal antigène reconnu par le système immunitaire de l hôte. Après l entrée de la particule virale dans la cellule, la réplication et la transcription ont lieu dans le cytoplasme de la cellule hôte, sans étape intermédiaire au sein du noyau. Trois protéines structurales (E, M et C) et 7 protéines non-structurales (NS1, NS2 A/B, NS3, NS4A/B, NS5) sont produites pendant ce processus. La particule virale mature est ensuite assemblée dans le réticulum endoplasmique, puis acheminée par le complexe de Golgi vers la surface de la cellule, d où elle sera par la suite libérée. pourrait être le fait que les anticorps induisent une augmentation de la présence de cellules immunitaires dans lesquelles le virus peut se répliquer. Ce phénomène rend particulièrement délicat l élaboration d un vaccin, aussi à ce jour aucun vaccin potentiel n a passé avec succès les essais cliniques. Aucun traitement spécifique n est disponible et les traitements actuels visent à traiter les symptômes uniquement. La détection directe du virus est possible chez la plupart des patients au cours de la première semaine après l apparition des symptômes. La RT-PCR en temps réel ainsi que la détection d anticorps (NS1) sont des méthodes sensibles. Après la phase virémique, les IgM et IgG seront détectables. Dans de nombreux pays, la Dengue est une maladie à signaler et elle doit être enregistrée auprès des autorités responsables. 6. Description du produit Le virus de la Dengue est transmis par des vecteurs arthropodes (principalement Aedes aegypti and A. albopictus). Il existe des cycles de vie dans les zones urbaines et dans les zones sauvages, le premier concerne principalement les humains et les moustiques alors que le second concerne essentiellement les animaux sauvages et les moustiques. Les infections humaines via des cycles dans les zones sauvages sont rares. Les quatre sérotypes se retrouvent dans toutes les régions tropicales du monde où le vecteur est présent. Après infection par le virus de la Dengue, la période d incubation est de 3 à 14 jours. Les premiers symptômes sont de la fièvre, un malaise général ainsi que des douleurs musculaires et articulaires. 80% des infections sont des formes relativement atténuées et sans complications. Pour certains patients, les formes sont plus sévères et peuvent parfois mettre le pronostic vital en jeu. L hôte humain développe une protection immunitaire contre le sérotype ayant causé l infection primaire. Les infections secondaires dues à des sérotypes différents peuvent provoquer des symptômes bien plus sévères. Une explication à ce phénomène Le kit est un test de diagnostic in vitro, basé sur la technologie RT-PCR en temps réel, pour la détection qualitative de l ARN spécifique du virus de la Dengue. Le kit comprend un système d amplification hétérologue (contrôle interne, internal control, (IC)) afin d identifier d éventuelles inhibitions de la RT-PCR et de confirmer l intégrité des réactifs du kit. Le test repose sur la technologie de transcription inverse couplée à une réaction d amplification en chaîne (RT-PCR) qui utilise la transcription inverse (RT) pour convertir l ARN en ADN complémentaire (ADNc), la réaction d amplification en chaîne (PCR) pour l amplification de séquences cibles spécifiques, ainsi que des sondes spécifiques aux cibles pour la détection de l ADN amplifié. Les sondes sont marquées par un reporter fluorescent et un quencher. Les sondes spécifiques à l ARN du virus de la Dengue sont marquées par le fluorophore FAM. La sonde spécifique pour la cible du contrôle interne (IC) est marquée par le fluorophore JOE. L utilisation de sondes associées à des fluorophores 8 9

6 discernables permet de détecter et de différencier simultanément l ARN spécifique au virus de la Dengue et le contrôle interne (IC) dans les canaux de détection correspondants de l instrument de PCR en temps réel. En raison de l assemblage moléculaire et de l évolution possible du virus de la Dengue, il existe un risque lié à l accumulation de mutations au cours du temps, pouvant entrainer des faux négatifs avec le système de RT-PCR. Néanmoins, au cas où les souches circulantes évoluent et accumulent des mutations, une mise à jour des couples d amorces / sonde pourrait être nécessaire. Les amorces et les sondes du Kit sont fondées sur les alignements de séquences (2010) de l ensemble des 4 sous-types de la Dengue (1-4), permettant la détection d ARN (dépistage), mais pas la différenciation (typage) entre ces sous-types. Pour le sous-typage de l ARN spécifique au virus de la Dengue, nous vous suggérons d utiliser l une des méthodes décrites dans la littérature ([1], [2], [3], [4]). En raison de la grande sensibilité du système du Kit RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0, de très faibles échantillons positifs peuvent ne pas contenir suffisamment d ARN pour le sous-typage. La revue de Domingo et al. [5] fournit un excellent résumé des technologies actuellement utilisées dans la détection du virus de la Dengue et du typage. [1] Lanciott RS et al. (1992), J Clin. Microbiol 30: [2] Laue T et al. (1999), J Clin Microbiol 37: [3] Scarramozino N et al. (2001), J Clin Microbiol 39: [4] Johnson BW et al. (2005), J Clin Microbiol 43: [5] Domingo C et al. (2010), PLOSntds 4, Issue 10, e833 Le test consiste en trois processus réalisés dans un même tube à essai: Transcription inverse de l ARN cible en ADNc Amplification par PCR de l ADNc et du contrôle interne (IC) Détection simultanée des amplicons de PCR par des sondes marquées par une molécule fluorescente Le kit a été développé et validé pour être utilisé avec les instruments de PCR suivants: Mx 3005P QPCR System (Stratagene) VERSANT kpcr Molecular System AD (Siemens) ABI Prism 7500 SDS and 7500 Fast SDS (Applied Biosystems) LightCycler 480 Instrument II (Roche) Rotor-Gene 3000/6000 (Corbett Research) Rotor-Gene Q 5/6 plex Platform (QIAGEN) CFX96 /Dx Real-Time System (BIO-RAD) Le kit est composé de: Deux Masters (Master A et Master B) Un contrôle interne (Internal Control - IC) Quatre étalons (QS1 QS4) De l Eau ultra-pure pour biologie moléculaire (PCR grade Water) Les réactifs Master A et Master B contiennent tous les composants nécessaires (tampon, enzymes, amorces et sondes) afin de réaliser la transcription inverse, l amplification par PCR et la détection des cibles (ARN spécifique du virus de la Dengue et contrôle interne) en une seule étape de réaction

7 7. Mises en garde et précautions L utilisation de ce produit est limitée au personnel qualifié et formé aux techniques de PCR en temps réel et aux procédures de diagnostic in vitro. Manipuler les échantillons comme s ils étaient infectieux et/ou dangereux, en accord avec les procédures de sécurité en vigueur dans le laboratoire. Porter des gants jetables non talqués, une blouse de laboratoire et des lunettes de protection lors de la manipulation des échantillons. Eviter les contaminations microbiennes et nucléaires (par ADNase/ARNase) de l échantillon et des composants du kit. Toujours utiliser des pipettes à cônes jetables avec filtre, non contaminées par de l ADNase et de l ARNase. Toujours porter des gants de protection non talqués lors de la manipulation des composants du kit. Utiliser des zones de travail séparées les unes des autres pour les différentes activités de (i) préparation des échantillons, (ii) préparation de la réaction et (iii) les étapes d amplification/détection. Le sens de travail dans le laboratoire doit être unidirectionnel. Porter des gants dans chaque zone de travail et les changer avant d entrer dans une zone différente. Dédier des fournitures et du matériel pour chaque zone de travail et ne pas les déplacer d une zone à une autre. Conserver le matériel positif et/ou potentiellement positif séparément des autres composants du kit. Ne pas ouvrir les tubes/plaques de réaction après l amplification afin d éviter toute contamination par les amplicons. Des témoins additionnels peuvent devoir être testés selon les directives des organisations locales/gouvernementales ou des organismes d accréditation. 8. Mode d emploi 8.1 Préparation de l échantillon L ARN extrait constitue l échantillon de départ pour le RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0. La qualité de l ARN extrait a un impact important sur la performance de l ensemble du test. Il est important de s assurer que le système d extraction des acides nucléiques utilisé est compatible avec la technologie de PCR en temps réel. Le kit d extraction des acides nucléiques suivant a été validé pour être utilisé avec le : QIAamp Viral RNA Mini Kit (QIAGEN) Si la préparation des échantillons s effectue sur une colonne comportant des tampons de lavage à l éthanol, une étape de centrifugation supplémentaire de 10 minutes à environ x g (~ tr/min), dans un nouveau tube à essai, est vivement recommandée avant l élution des acides nucléiques. NOTE L utilisation d ARN porteur est crucial pour l efficacité de l extraction et la stabilité des acides nucléiques extraits. L éthanol est un fort inhibiteur de la PCR en temps réel. Si votre système de préparation de l échantillon utilise des tampons de lavage contenant de l éthanol, assurez vous d éliminer toutes les traces d éthanol avant de procéder à l élution des acides nucléiques. Ne pas utiliser les composants au-delà de leur date d expiration. Eliminer les échantillons et les déchets de l essai conformément aux règles de sécurité

8 Pour toute information complémentaire ou assistance technique sur le pré- traitement et la préparation des échantillons, merci de contacter notre support technique: Si le contrôle interne (IC) est utilisé comme contrôle de préparation de l échantillon et d inhibition de la RT-PCR, le contrôle interne (IC) doit être ajouté au moment de la procédure d extraction des acides nucléiques. téléphone: +49-(0) Préparation du Mastermix Tous les réactifs doivent être complètement décongelés, homogénéisés (par pipetage ou léger vortexage) et brièvement centrifugés avant utilisation. Quelque soit la méthode ou le système utilisé pour l extraction des acides nucléiques, le contrôle interne (IC) ne doit jamais être ajouté directement à l échantillon. Il doit toujours être ajouté au mélange échantillon/tampon de lyse. Le volume du contrôle interne à ajouter dépend toujours et uniquement du volume d élution dont il représente 10% du volume d élution. Par exemple si les acides nucléiques doivent être élués dans 60 µl de tampon d élution ou d eau, 6 µl du contrôle interne par échantillon doivent être ajoutés au mélange échantillon/tampon de lyse. Le contient un contrôle interne (IC) hétérologue pouvant être utilisé soit en tant que contrôle d inhibition de la RT-PCR soit en tant que contrôle de la procédure de préparation des échantillons (extractiondes des acides nucléiques) et en tant que contrôle d inhibition de la RT-PCR. NOTE Ne jamais ajouter le Contrôle Interne directement avec l échantillon! Si le contrôle interne est utilisé en tant que contrôle d inhibition de la RT- PCR, mais non en tant que contrôle lors de la procédure de préparation des échantillons, le Mastermix est préparé selon le schéma de pipetage suivant: Si le IC a été ajouté pendant la phase de préparation de l échantillon, le Mastermix doit être préparé selon le schéma de pipetage suivant: Nombre de réactions (rxns) 1 12 Master A 5 µl 60 µl Master B 15 µl 180 µl Contrôle interne 1 µl 12 µl Nombre de réactions (rxns) 1 12 Master A 5 µl 60 µl Master B 15 µl 180 µl Volume de Mastermix 20 µl 240 µl Volume de Mastermix 21 µl 252 µl 14 15

9 8.3 Préparation de la réaction 9.1 Paramètres Pipeter 20 µl de Mastermix dans chacun des puits nécessaires d une plaque 96 puits ou d un tube réactionnel permettant les réactions optiques. Ajouter 10 µl d échantillon (éluat issu de l extraction des acides nucléiques) ou 10 µl des contrôles (étalons, contrôles positifs ou négatifs). Veiller à ce qu au moins un contrôle positif et un contrôle négatif soient utilisés par essai. Homogénéiser avec soin les échantillons et les contrôles avec le Mastermix par pipettage. Couvrir la plaque de 96 puits avec un film adhésif transparent approprié et les tubes réactionnels à l aide de couvercles appropriés. Centrifuger la plaque de 96 puits à l aide d un rotor à microplaques pendant 30 secondes à environ 1000 x g (~ 3000 tr/min). Définir les paramètres suivants: Paramètres Volume de réaction 30 µl Taux de rampe par défaut Référence passive aucune 9.2 Marqueurs de fluorescence (fluorophores) Définir les marqueurs fluorescence (fluorophores): Détection Nom du marqueur Reporter Quencher Préparation de la réaction Mastermix 20 µl ARN spécifique de la Dengue Dengue FAM (aucun) Contrôle interne IC JOE (aucun) Echantillon ou contrôle 10 µl Volume total 30 µl 9. Programmation des instruments de PCR en temps réel Pour obtenir des informations générales sur la préparation et la programmation des différents instruments de PCR en temps réel, veuillez consulter les manuels d utilisation des instruments respectifs. Pour des instructions de programmation relative à l utilisation du avec un instrument de PCR en temps réel spécifique, merci de contacter notre support technique

10 9.3 Profil de température et acquisition du fluorophore Nom du Contrôle Canal de détection FAM Canal de détection JOE Définir le profil de température et l acquisition du fluorophore: Contrôle positif POSITIF POSITIF Contrôle négatif NEGATIF POSITIF Étape Nb de cycles Acquisition Température Durée Transcription inverse Dénaturation Stationnaire C 20:00 min Stationnaire C 2:00 min - 95 C 0:15 min Test de diagnostic invalide (qualitatif) Un test de diagnostic qualitatif est invalide, (i) si l essai n est pas complet ou (ii) si les différentes conditions de contrôle pour un test de diagnostic valide ne sont pas remplies. Amplification Cyclique hold, 2 cycling 58 C 0:45 min - 72 C 0:15 min En cas d invalidité du test de diagnostic, répéter le test avec les acides nucléiques purifiés restants ou recommencer depuis l échantillon de départ. 10. Analyse des données Pour des informations de base concernant l analyse des données sur un instrument spécifique de PCR en temps réel, merci de se référer au manuel concerné. Pour des informations détaillées concernant l analyse des données avec le sur des différents instruments de PCR en temps réel, merci de contacter notre support technique Validité du test de diagnostic Test de diagnostic valide (qualitatif) Pour qu un test de diagnostic qualitatif soit valide, les valeurs suivantes des contrôles doivent être obtenues: 18 19

11 10.2 Interprétation des résultats 11. Evaluation des performances Échantillon Canal de détection FAM Canal de détection JOE Interprétation des résultats L évaluation des performances du kit a été effectuée en utilisant de l ARN quantifiée (transcrit in vitro). A POSITIF POSITIF* B NÉGATIF POSITIF C NÉGATIF NÉGATIF ARN spécifique de la Dengue détecté. ARN spécifique de la Dengue non détecté. L échantillon ne contient pas de quantités détectables d ARN de la Dengue. Inhibition de la RT-PCR ou échec de le réactifs. Répéter le test à partir de l échantillon original ou bien prélever et tester un nouvel échantillon Sensibilité analytique La sensibilité analytique (Limit of Detection: LoD) du kit RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0 est définie comme étant la concentration (copies par µl d éluat) de molécules d ARN spécifique du virus de la Dengue pouvant être détectées avec un taux de positivité à 95 %. La sensibilité analytique a été déterminée en analysant des séries de dilution d ARN quantifié de la Dengue. Tableau 1: Résultats de RT-PCR utilisés pour le calcul de la sensibilité analytique du kit RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0, sérotype 1 du virus de la Dengue * La détection du contrôle interne dans le canal de détection JOE n est pas requise pour des résultats positifs dans le canal de détection FAM. De fortes charges virales en Dengue dans l échantillon peuvent conduire à des signaux absents ou très faibles pour le contrôle interne. [C] initiale [copies/µl] Nombre de replicates Nombre de positifs Taux de succès [%] Contrôle interne Valide Valide Valide Valide Valide Valide Valide Valide 20 21

12 Tableau 2: Résultats de RT-PCR utilisés pour le calcul de la sensibilité analytique du kit RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0, sérotype 4 du virus de la Dengue [C] initiale [copies/µl] Nombre de replicates Nombre de positifs Taux de succès [%] Contrôle interne Valide Valide Valide Valide Valide Valide Valide Valide Valide La Sensibilité analytique du kit a été déterminée par analyse Probit. Pour l ARN spécifique au sérotype 1 du virus de la Dengue: [intervalle de confiance de 95%: Pour l ARN spécifique au sérotype 4 du virus de la Dengue: [intervalle de confiance de 95%: 4.7 copies/µl d éluat 2.76 to copies cibles/µl] 0.7 copies/µl d éluat 0.44 to 1.48 copies cibles/µl] 11.2 Spécificité analytique La spécificité analytique du kit Realstar Dengue RT-PCR Kit 2.0 est assurée par une sélection approfondie des oligonucléotides (amorces et sondes). Les séquences de ces derniers ont été comparées aux séquences publiques disponibles afin de s assurer que l ensemble des sérotypes du virus de la Dengue seront détectés. La spécificité analytique du kit a été évaluée en testant un panel d ADN/ARN génomique extrait d autres flavivirus, d autres pathogènes transmissibles par le sang et de pathogènes causant des symptômes similaires. Tableau 3: Les organismes testés afin de démontrer la spécificité analytique du kit RealStar Dengue RT-PCR Kit 2.0 Organisms Canal de détection FAM (Dengue Virus) Canal de détection JOE (Internal Control) Dengue Virus Type 1 Positif Positif Dengue Virus Type 2 Positif Positif Dengue Virus Type 3 Positif Positif Dengue Virus Type 4 Positif Positif West Nile Virus Négatif Positif Japanese Encephalitis Virus 4/7 Négatif Positif Hepatitis A Virus Négatif Positif Hepatitis C Virus Négatif Positif Hepatitis E Virus Négatif Positif Murray Valley Encephalitis Virus Négatif Positif St. Louis Encephalitis Virus Négatif Positif Usutu Virus Négatif Positif Yellow Fever Virus Négatif Positif Zika Virus Négatif Positif 22 23

13 11.3 Précision Les données de précision pour le ont été déterminées comme étant la variabilité intra-essai (variabilité au sein d une expérience), la variabilité inter-essai (variabilité entre différentes expériences) et la variabilité inter-lot (variabilité entre différents lots de production). Les données de variabilité sont exprimées en termes de valeur moyenne, d écarttype, de variance et de coefficient de variation, sur la base des valeurs de cycle seuil (C t ). La variabilité intra-essai, la variabilité inter-essai et la variabilité inter-lot d au moins six réplicats par échantillon ont été analysées. La variance totale a été calculée en combinant les trois analyses. Tableau 4: Les données de précision du kit Système spécifique de la Dengue Valeurs C t moyennes Ecarttype Coefficient of Variation (%) Variabilité intra-essai Variabilité inter-essai Variabilité inter-lot Variance totale Tableau 5: Les données de précision du contrôle interne du kit RealStar Dengue RT-PCR Kit Limitations et précautions L utilisation de ces produits est limitée au personnel compétent et formé aux techniques de PCR en temps réel et aux procédures de diagnostic in vitro. Le respect des bonnes pratiques de laboratoire est essentiel pour garantir le bon fonctionnement de ce test. Une attention particulière doit être apportée à la préparation des échantillons afin de préserver la pureté des composants du kit. Tous les réactifs doivent faire l objet d une surveillance étroite afin d éviter impuretés et contaminations. Tout réactif suspect doit être éliminé. Il est nécessaire de respecter les procédures de prélèvement, de transport, de conservation et de traitment des échantillons afin d assurer les performances optimales du test. Ce test n est pas destiné à être utilisé directement sur l échantillon. Des méthodes appropriées d extraction des acides nucléiques doivent être employées avant son utilisation. La présence d inhibiteurs de RT-PCR est susceptible d entraîner des résultats faussement négatifs ou erronés. De potentielles mutations dans les zones cibles du génome du virus couvertes par l amorce et/ou les sondes du test peuvent empêcher la détection de pathogènes. Le est un test de diagnostic. En conséquence, ses résultats doivent être interprétés en prenant en considération l ensembles des symptômes cliniques et des résultats obtenus en laboratoire. IC Valeurs C t moyennes Ecarttype Coefficient of Variation (%) 13. Contrôle de qualité Variabilité intra-essai Variabilité inter-essai Variabilité inter-lot Variance totale Conformément au système de management de la qualité d altona Diagnostics GmbH, certifié ISO EN 13485, chaque lot du est testé selon des spécifications prédéfinies afin de garantir une qualité constante des produits

14 14. Assistance technique Pour le support client, merci de contacter notre support technique: 16. Explications des symboles téléphone: +49-(0) Dispositif medical de diagnostic in vitro Référence produit 15. Marques déposées et responsabilité Numéro de lot RealStar (altona Diagnostics GmbH); Mx 3005P (Stratagene); ABI Prism (Applied Biosystems); HighPure, LightCycler (Roche); Rotor-Gene, QIAamp (QIAGEN); VERSANT (Siemens), CFX96 (BIO-RAD). Les noms et marques déposés cités dans ce document, même si non mentionnés comme tels, ne doivent pas être considérés comme non protégés par la loi. Le est un test de diagnostic in vitro, marqué CE conformément à la Directive européenne 98/79/CE relative aux dispositifs de diagnostic in vitro. Produit distribué dans certains pays uniquement. Contient la quantité suffisante pour réaliser n tests (rxns) Limites de température Version Utiliser avant Attention 2015 altona Diagnostics GmbH; tous droits réservés. Lire les instructions d utilisation Fabricant 26 27

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