PRELEVEMENTS SANGUINS

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1 Historique : 5 - Modifications techniques : : (1) Suppression du matériel pour les prélèvements artériels avec capillaire et suppression du paragraphe 1.6.4, (2) Ajout du renvoi à la procédure de gestion documentaire (PRO-027) dans le paragraphe "Références". Rédaction : Inès HAMADI (Pilote de Processus (portée) Péri- Analytique) 20/01/2018 Validation : Stéphanie DEMARS COLLE (Ingénieur Qualité) 31/01/2018 Approbation : Philippe MAREL (Responsable Qualité) 08/02/2018 Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

2 SOMMAIRE 1- CONTENU But Définitions Equipements, Fournitures, Imprimés Prélèvements de sang veineux Les différents matériels de ponction La pose du garrot et la désinfection La ponction veineuse La collecte de l échantillon de sang La fin du prélèvement Cas particulier : Utilisation de la pommade Emla Prélèvements capillaires Prélèvements de sang artériel Sang artériel Prélèvement à l aide de seringue spéciale CO Prélèvement à l aide de seringue classique Cas d hémoculture Remarques REFERENCES... 9 Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

3 1- CONTENU 1.1- But Le but de ce document est de décrire les règles à suivre lors d un prélèvement sanguin au laboratoire, à domicile ou en établissement de soins Définitions Etat de jeûne : Absence d ingestion d aliments solides ou liquides pendant au moins huit heures à l exception de faibles volumes d eau plate. Ce délai est porté à douze heures en cas de bilan lipidique. Tolérance : Le non-respect de l état de jeûne ne saurait constituer un obstacle à un examen sanguin urgent ou au dosage de certains paramètres. D autres circonstances peuvent faire l objet d une certaine tolérance Equipements, Fournitures, Imprimés Documents d accompagnement Table de préconisation d utilisation des tubes Les prélèvements au laboratoire ne peuvent se faire que dans les salles de prélèvement. Mallettes anti-choc pour les prélèvements en établissement de soins ou à domicile contenant des fiches de transmission des prélèvements, une table de préconisation de l utilisation des tubes et le matériel nécessaire pour le prélèvement. Chariots de prélèvement contenant le matériel nécessaire pour les établissements de soin. Matériel nécessaire pour le prélèvement (voir liste du matériel de prélèvement dans les salles, les mallettes, les établissements de soins ) : Garrot Aiguilles de tailles différentes pour prélèvements sous vide et pour prélèvements non sous vide Flacon d alcool à 70 Lingette chlorhexidine ou Dakin pour enfant de moins de 30 mois Bétadine alcoolique 5% Une boîte à coton Pansements ou sparadrap Tubes de prélèvement sous vide dotés de bouchons de couleurs Un dispositif règlementaire de recueil des aiguilles Une poubelle réservée à l élimination des déchets médicaux (pansements et cotons usagés) Un bac de recueil des corps de pompe réutilisables après usage Tubes pour dosages particuliers (ACD, Aprotinine ) Corps de prélèvement sous vide Unités de prélèvement à ailettes Seringues pour prélèvements non sous vide Seringues à gaz du sang Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

4 Solution hydro-alcoolique pour les mains (type Manugel) Flacons pour hémoculture Gants à usage unique non stériles Le matériel doit être réapprovisionné par les préleveurs dès que nécessaire, et les dates d ouverture et de péremption notées sur chaque flacon de désinfectant dès sa mise en service : Dakin : péremption à 15 jours après ouverture Bétadine : péremption à 1 mois après ouverture, ou dosette jetable après ouverture Alcool à 70, SHA : péremption à 3 mois après ouverture Une liste d inventaire du matériel nécessaire est présente dans les salles de prélèvement, mallettes, établissement de soins... Elle doit être vérifiée chaque mois. A cette occasion la validité des dates d ouverture et de péremption sont vérifiées. Les dispositions générales d hygiène, d identification des tubes et de préparation du prélèvement sont décrites au niveau de la procédure de prélèvements Prélèvements de sang veineux Pour effectuer la recherche d une veine, le patient pose son bras dans la gouttière. Le préleveur place le garrot et lui demande de tendre le bras en position déclive en serrant le poing. Le préleveur pratique un examen visuel et une palpation pour mettre en évidence les caractéristiques de la veine ; situation, parcours, souplesse, taille, élasticité En cas de difficulté, il est recommandé de pratiquer de la manière suivante : poser un garrot, demander au patient de contracter et relâcher sa main plusieurs fois. Masser le bras depuis le poignet en remontant vers le pli du coude. Tapoter légèrement le site de ponction envisagé. La ponction doit être franche, l écoulement de sang rapide et l agitation des tubes lente et régulière. Plusieurs sites de prélèvements sanguins sont envisageables sur chaque bras en fonction du capital veineux du patient : Au pli du coude A l avant bras Au dos de la main Les différents matériels de ponction Le choix du type de matériel et de la taille adéquate est effectué en fonction du capital veineux du patient, des habitudes du préleveur et quelquefois de l obligation analytique (stérilité). Quel que soit le dispositif choisi, l aiguille doit être choisie en fonction aussi de la quantité à prélever afin d éviter la formation de microcaillots, par suite d un écoulement trop lent. Les différents matériels de ponction sont les suivants : Corps de prélèvement et leurs aiguilles Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

5 Aiguille et seringue de taille adéquate Epicrâniennes Quel que soit le matériel choisi : Vérifier l intégrité de l emballage et la date limite d utilisation. Rejeter tout materiel non conforme. Sortir les différentes pièces de l emballage, les monter ensemble s il y a lieu. Laisser obligatoirement la protection de l aiguille en place jusqu au moment de la ponction La pose du garrot et la désinfection Un garrot est posé juste avant la ponction, à environ 10 cm en amont du site de ponction, de manière à ne pas interrompre la circulation artérielle du bras. Le retour veineux est alors comprimé mais le pouls reste palpable. Désinfecter soigneusement le site de ponction avec un antiseptique. Après désinfection, éviter de toucher ou palper le site de ponction. Attention : Un bras cyanosé est le signe d un garrot trop serré, il convient de le replacer Ne pas utiliser un antiseptique alcoolisé dans le cadre d un prélèvement pour alcoolémie et pour les enfants de moins de 30 mois Ne pas utiliser de Bétadine chez un enfant, préférer le Dakin ou les lingettes de chlorhexidine Ne pas utiliser un antiseptique iodé en cas d allergie à l iode (interrogation du patient) La ponction veineuse Quel que soit le matériel choisi, enlever, seulement à ce moment-là, le protecteur de l aiguille préalablement assemblée avec le corps de prélèvement. Tendre la peau ; le patient est en position bras tendu et poing serré. Introduire le biseau de l aiguille, chas vers le haut, dans la veine en tenant le corps de prélèvement entre le pouce et l index. L angle formé entre le bras du patient et le corps de prélèvement doit rester faible. Le dispositif de prélèvement doit être immobilisé pendant la collecte de sang La collecte de l échantillon de sang Ordre de prélèvement des tubes : Quelque soit le type de système de prélèvement choisi, l ordre de prélèvement des tubes est le suivant : (Hémoculture) Citrate SST Sec Héparine EDTA Fluorure. Avec système sous vide : Introduire le premier tube avec la main libre, le pousser en butée avec le pouce par le fond du tube en prenant appui sur la collerette du corps de prélèvement avec l index et le majeur. La partie non couverte par l étiquette doit être visible par le préleveur. Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

6 Dès que le sang arrive dans le premier tube, le patient desserre le poing. Enlever le tube en le prenant entre le pouce et l index tout en maintenant le corps de prélèvement. Sans attendre, agiter lentement le tube par retournements réguliers afin de mélanger le sang et l additif. S il y a lieu, introduire le deuxième tube puis le suivant (l'agitation d'un tube peut alors se faire pendant le remplissage du suivant). Dans le cas des enfants ou de veines difficiles : on peut utiliser les unités de prélèvement à ailettes. Piquer la veine avec l aiguille à ailettes puis utiliser le corps de pompe classiquement, après l avoir préalablement vissé à l autre extrémité de la tubulure. Penser à purger la tubulure avec un tube si nécessaire (tube citraté par ex). Reprendre l ensemble des tubes prélevés puis les homogénéiser par quelques retournements lents. Recommandations : Lors du prélèvement, attendre l arrêt de l écoulement du sang dans chaque tube. Si le tube contient un anticoagulant, celui-ci ne doit pas entrer directement en contact avec l extrémité intérieure de l aiguille. Si le sang ne s écoule pas après introduction d un tube, vérifier qu il est bien enfoncé et que le biseau de l aiguille est suffisamment introduit dans la veine. On peut corriger la position de l aiguille en la faisant pivoter légèrement ou en la tirant légèrement. Dans le cas de capital veineux déficient, il est recommandé d utiliser des aiguilles de petit calibre. Avec une aiguille montée sur seringue : La ponction doit se faire en utilisant toujours l embouchure de la seringue décentrée vers le bas, le biseau vers le haut et avec un angle de 30 au maximum. L aspiration doit être rapide et régulière. Il est recommandé de ne pas pomper (risque d hémolyse et d activation de la coagulation). Le transvasement du contenu de la seringue dans les tubes doit se faire le plus rapidement possible. Le dispositif de transfert (REF Luer femelle pré-monté et corps de prélèvement prémonté) est disponible pour remplir les tubes sans risque La fin du prélèvement Retirer le garrot Placer un coton, une compresse sur le site de ponction. Ôter lentement et avec précautions l ensemble aiguille/corps de prélèvement de la veine Comprimer ou faire comprimer par le patient le site de ponction avec le coton, la compresse pendant quelques minutes ou plus si traitement avec un anticoagulant, pour éviter un hématome. Le patient maintient son bras en position tendu Pour les patients sous anticoagulants, le bras peut être tendu vers le haut afin de diminuer le temps de compression Poser un pansement, hypoallergénique si nécessaire. Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

7 Il reste ensuite à: Homogénéiser les échantillons par de lents retournements successifs Vérifier le volume de remplissage des tubes Identifier les tubes qui ne le sont pas déjà Au laboratoire, remplir la fiche de renseignements cliniques et viser l ordonnance. A domicile, remplir la fiche de transmission. Dans les établissements de soins, indiquer heure du prélèvement et initiales du préleveur sur l ordonnance. Reporter si nécessaire tout incident sur la fiche de prélèvement ou la fiche de transmission (hors laboratoire) Transmettre les tubes et les documents de prélèvement Cas particulier : Utilisation de la pommade Emla Les patchs Emla sont disponibles en pharmacie. Bien repérer la veine avant l application du patch et le poser sur un seul des 2 bras Appliquer au moins une heure avant la prise de sang Bien enlever le résidu et si possible laisser respirer la peau (15 minutes) avant la prise de sang L anesthésie obtenue persiste 1 à 2 heures Utilisation à éviter chez les nouveaux-nés (< 3 mois) et chez les enfants porteurs de lésions cutanées et chez les personnes allergiques à la xylocaïne 1.5- Prélèvements capillaires Intéressant chez le nourrisson ou le jeune enfant. Chez l adulte, on pique habituellement la pulpe de la dernière phalange d un doigt, en veillant à ce qu il ne soit pas œdématié (dilution possible du sang), cyanosé (stase et concentration locale), traumatisé (erreur dans les numérations de leucocytes) ou froid (vasoconstriction). Chez le nourrisson, le prélèvement se fait de préférence au talon ou à la pulpe du gros orteil. Technique de prélèvement : Désinfecter la surface cutanée Laisser sécher ou essuyer avec un coton Pratiquer une piqûre franche avec un vaccinostyle stérile. Le sang doit sourdre spontanément, sans exercer de pression. S il n en est pas ainsi, il est préférable de piquer de nouveau Essuyer la première goutte de sang avec un coton hydrophile sec Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

8 Effectuer les prélèvements sur les gouttes suivantes avec une pipette, un capillaire ou un microtube, sans pression (apport de liquide interstitiel et de lymphocytes) ou laisser la goutte tomber dans un microtube qui est agité à chaque fois 1.6- Prélèvements de sang artériel Le prélèvement de sang artériel est un acte effectué par les médecins, les pharmaciens biologistes après habilitation (radial ou fémoral) et les infirmiers Sang artériel L asepsie s effectue à l alcool à 70. (1) Le prélèvement se fait à l artère radiale de préférence ou à l artère humérale. L artère radiale est moins traumatisante et donc le risque d hématome est moins important ; la ponction peut être précédée d une manœuvre d Allen. Dans tous les cas la compression artérielle est indispensable et maintenue longtemps (2 à 5 minutes). Il est recommandé de poser un pansement compressif. Le prélèvement artériel est principalement réservé à l étude du métabolisme acido-basique, aux dosages de la méthémoglobine et du monoxyde de carbone. Il peut s'effectuer sous oxygénothérapie nasale (30' après dernier réglage), sous ventilation artificielle (10' après dernier réglage) ou sans oxygène (au moins 10' après arrêt de l'oxygène). Préciser ces conditions dans le dossier patient Prélèvement à l aide de seringue spéciale CO2 Les seringues plastiques sont héparinées. Le polypropylène est imperméable à l oxygène et au CO2, les pistons disposent d un évent permettant l expulsion immédiate de l air présent dans la seringue au moment du prélèvement. L extrémité de la seringue doit être fermée immédiatement par un bouchon assurant une étanchéité parfaite Prélèvement à l aide de seringue classique (A proscrire si demande de calcium ionisé) Après prélèvement, la seringue doit être rapidement héparinée. La présence de bulles d air doit être évitée ou éliminée Cas d hémoculture Se reporter au guide de prélèvements concernant les analyses de microbiologie Remarques La conservation des échantillons est réalisée selon la Procédure «Conservation et stockage des échantillons». Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5

9 Les déchets sont traités comme des déchets contaminés et suivent la filière d évacuation décrite dans la Procédure «Elimination des déchets». Les corps de pompe réutilisables usagés sont collectés dans chaque salle puis décontaminés au laboratoire selon le Mode Opératoire «Désinfection du materiel de prélèvement». Les garrots sont changés systématiquement tous les jours et chaque fois que le préleveur le juge nécessaire (sali, souillé, dysfonctionnement...). Les salles de prélèvement sont maintenues propres durant la journée par les préleveurs. En cas de malaise, prévenir tout risque de chute : Allonger le patient en inclinant le fauteuil Mettre les pieds en l air Prévenir un biologiste Dans un établissement de soin, prévenir un membre du personnel soignant A domicile deux cas se présentent : o Le patient récupère intégralement de son malaise et aucune autre action n est justifiée o Dans le cas contraire, prévenir le médecin traitant. En cas d urgence, si le médecin traitant ne peut venir tout de suite, contacter le REFERENCES Cf. procédure de gestion documentaire. (1) Bonnes pratiques essentielles en hygiène à l usage des professionnels de santé en soins de ville. Volume XXIII-N 5-Novembre Date d application : 05/03/ / 9 Version : 5