Le tableau suivant définit les habilitations pour les différents types de prélèvements :

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1 Chapitre E Réalisation des prélèvements E.1 - Habilitation du personnel Le tableau suivant définit les habilitations pour les différents types de prélèvements : PRELEVEMENT / PRELEVEUR Techniciens de laboratoire* Infirmiers Pharmaciens biologistes Médecins Prélèvements sanguins veineux et capillaires au laboratoire Prélèvements sanguins veineux et capillaires à domicile ** Tests dynamiques sans injection Tests dynamiques avec injection Prélèvements bactériologiques, parasitologiques et mycologiques * Technicien de laboratoire disposant du certificat de capacité de prélèvements sanguins. ** Si le technicien dispose de l'afgsu II (Attestation de Formations aux Gestes et Soins d'urgence de niveau II), il est apte à réaliser des prélèvements sanguins à domicile, en clinique, centres de soins 1

2 E.2 - Prélèvements sanguins avant tout type de prélèvement Vérifier l identité du patient Faire décliner par le patient son nom, prénom et date de naissance, nom de jeune fille si groupe sanguin, vérifier la concordance avec le dossier informatique Vérifier la prescription Vérifier la conformité de la prescription médicale Vérifier le dossier informatique Vérifier les analyses prescrites et celles enregistrées, vérifier le prescripteur enregistré Conditions de prélèvement et renseignements particuliers S assurer de la conformité des conditions de prélèvement en tenant compte du manuel de prélèvement du laboratoire SAINT NICOLAS ainsi que celui de CERBA Choix du matériel Choisir le matériel adapté au type de prélèvement et au patient Désinfection des mains Lavage des mains ou désinfection hydro alcoolique Réalisation du prélèvement. Mettre des gants à usage unique (Impératif si portage de BMR ou peau lésée du préleveur)? SI NON PAS OBLIGATOIRE. Poser le garrot propre au-dessus du coude (serré < 3min). Placer le bras en position basse et faire serrer le poing. Repérer les veines par palpation. Procéder à l asepsie du site à piquer(ne plus y toucher). Réaliser une ponction veineuse franche. Desserrer le garrot dès que le sang s écoule dans le tube. Attendre le remplissage du tube pour mettre le suivant 2

3 . Homogénéiser le tube dès le retrait par plusieurs retournements retirer le garrot. Après avoir enlevé le dernier tube, retirer l aiguille et appliquer un coton sec sur le point de ponction, faire maintenir une pression pendant une minute par le patient. Eliminer immédiatement l ensemble du matériel dans des collecteurs adaptés NE JAMAIS RECAPUCHONNER UNE AIGUILLE. Identifier vos tubes sur le lieu du prélèvement. Mettre un pansement Veuillez à respecter les conditions recommandées de prélèvement et de transport Ordre de prélèvement des tubes NB : pour le tube citraté (bouchon bleu) le volume à prélever doit être respecté (jusqu à l indicateur de remplissage). Recommandations CLSI (NCCLS) Déc.2003, Doc. H1-A5, Vol.23 N 33 et GEHT 2007 Un non-respect de cette recommandation constitue un critère de non-conformité et enregistré comme tel dans le logiciel qualité Kalilab du laboratoire et peut entrainer le non-exécution des actes. 3

4 Un prélèvement de qualité Un bon prélèvement Au bon moment Pour le bon patient Pour de bons résultats Notre but commun Confort, sécurité patient, Sécurité préleveur REALISATION DE PRELEVEMENT PAR PONCTION ARTERIELLE = GAZOMETRIE ARTERIELLE Vérifier l identité du patient Faire décliner par le patient son nom, prénom et date de naissance puis vérifier la concordance Avec le dossier informatique Vérifier la prescription Vérifier la conformité de l ordonnance Vérifier le dossier informatique Vérifier les analyses prescrites et celles enregistrées, vérifier le prescripteur enregistré Conditions de prélèvement et renseignements particuliers Vérifier les conditions de prélèvement et les renseignements obligatoires : notion de ventilation (sous O2 ou non et quantité) Choix du matériel de prélèvement Seringue spécifique héparinée Désinfection des mains Lavage des mains avec un savon désinfectant ou utilisation d une solution hydro alcoolique Le prélèvement s effectue sur l artère radiale au niveau du poignet face antérieure (Repérage grâce au pouls) 4

5 . Mettre des gants. Pratiquer une asepsie de la peau avec une solution type bétadine dermique. Effectuer des gestes circulaires. Immobiliser l artère entre deux doigts et le plus près du poignet pour éviter que l artère bouge. Introduire l aiguille à la perpendiculaire de la surface de la peau et sur l axe de l artère maintenue entre les deux doigts. Le sang artériel rouge vif monte dans la seringue. La seringue doit être rempli jusqu au mandrin pour éviter l air. Retirer l aiguille et comprimer le point de ponction pendant 5 à 10 mn avec une compresse stérile sèche. Purger les bulles d air et mettre le bouchon en maintenant la seringue verticale. Eliminer l aiguille dans le collecteur adapté. Bien agiter la seringue par retournements Identification des échantillons Identifier les échantillons avec les étiquettes du dossier informatique ou de façon manuscrite (nom, prénom et date de naissance) Acheminement La réalisation de l analyse doit s effectuer dans un délai maximal de 30 min Conserver l échantillon dans un réfrigérant le temps du transport E.3 Prélèvements microbiologiques Vérifier l identité du patient Faire décliner par le patient son nom, prénom et date de naissance puis vérifier la concordance Vérifier la prescription Vérifier le dossier informatique Vérifier les analyses prescrites et celles enregistrées, vérifier le prescripteur enregistré Conditions de prélèvement et renseignements particuliers Site de prélèvement, but de l analyse : étiologie immunodépression, voyage, etc. Choix du matériel de prélèvement. Gants à usage unique. Ecouvillons sans gel pour examen direct. Ecouvillons fins sans gel tige métallique en dacron. Milieux de transport spécifiques pour recherche de chlamydiae par PCR fournis par CERBA. Spéculums stériles à usage unique 5

6 E Prélèvement cervico-vaginal Germes banals Gonocoque Mycoplasme Chlamydiae Herpes Nature du prélèvement vaginal col endocol endocol Vulvo vaginal Nombre d écouvillons avec milieu de transport 1 1 Nombre d écouvillons Secs 1 Nombre d écouvillons spécifiques La patiente devra éviter toute toilette intime avant le prélèvement Préparation du patient Renseignements cliniques Matériel Protocole Eviter un rapport sexuel 24 h avant le prélèvement si possible Eviter le prélèvement pendant la période Menstruelle sauf avis contraire du prescripteur. symptômes (démangeaisons, aspect) et chez le conjoint. des grossesses. secrétions vaginales. traitement antibiotique (noter la posologie et la durée du traitement). 2 écouvillons 1 rouge (sec) et un bleu avec (milieu de transport.. spéculum à usage unique. gants à usage unique. Installation de la patiente. Pose du spéculum. prélever au niveau du cul-de-sac, endocol, paroi vaginale 6

7 E.3.2 Prélèvement urétral Matériel à utiliser Germes banaux Gonocoque Mycoplasme Chlamydiae Ecouvillon avec Milieu de transport 1 1 Ecouvillon sans gel 1 Milieux PCR Chlamydiae 1 Ecouvillon fin sans gel 1 Préparation du patient. Si possible pas de traitement antibiotique (si non posologie et duré du traitement). ne pas uriner dans les 2 heures précédant le prélèvement Matériel. 2 écouvillons fins + 1 milieu de transport normal. 1 kit chlamydiae Gono/PCR Protocole. Prélever au niveau du méat urinaire 2 écouvillons fins dont l un est placé dans un milieu de transport. Pour la recherche de chlamydiae et Gono : introduire l écouvillon spécifique dans l urètre de 2 à 3 cm en effectuant 3 à 4 rotations pour recueillir le maximum de cellules. Cet écouvillon sera ensuite placé dans un milieu spécifique. 7

8 E.3.3 Plaie, escarre, pus profond, etc. Préparation du patient. si possible en dehors de tout traitement antibiotique. prendre les précautions d asepsie pour éviter de contaminer le prélèvement par les bactéries se trouvant normalement sur la peau. Matériel Protocole. 1 écouvillon avec milieu de transport. 1 écouvillon sec. mettre des gants à usage unique. passer les écouvillons sur toute la zone à prélever. identifier les écouvillons avec nom, prénom Et site anatomique du prélèvement Délai de conservation < 2 heures entre C Délai de rendu de résultats 48 à 72 heures E.3.4 Prélèvements ORL S i t e s d e s p r é l è v e m e n t s p o s s i b l e s GORGE amygdales OREILLES conduit auditif externe NEZ PHARYNX Préparation du patient Matériel Protocole. si possible en dehors de toute antibiothérapie. prendre des précautions d asepsie pour éviter toute contamination. 1 écouvillon avec milieu de transport. 1 écouvillon sec. mettre des gants à usage unique. prélever au niveau des zones inflammatoires ou nécrotiques. à la périphérie des fausses membranes, sur les amygdales. éviter de toucher la langue, la luette et la paroi postérieure du pharynx Délai de conservation < 2 heures entre C Délai de rendu de résultats 48 à 72 h 8

9 E.3.5 Réalisation des prélèvements Mycologiques Vérifier l identité du patient Faire décliner par le patient son nom, prénom et date de naissance puis vérifier la concordance Vérifier la prescription Vérifier la concordance entre la prescription écrite et l identité du patient. Vérifier le dossier informatique Vérifier les analyses prescrites et celles enregistrées, vérifier le prescripteur enregistré Conditions de prélèvement et renseignements particuliers Site de prélèvement, but de l analyse : étiologie immunodépression, voyage, etc. E Choix du matériel de prélèvement. Boite de pétri. Ecouvillons sans gel. Vaccinostyle. Eau physiologique. Gants à usage unique E Technique de prélèvement La technique du prélèvement est adaptée à la symptomatologie clinique afin que l échantillon soit recueilli au sein de la zone infectée ou le champignon est vivant. Site anatomique du prélèvement LESION CUTANEE Délai de transport au laboratoire Délai de rendu de résultats Réalisation du prélèvement Après asepsie des mains et port des gants à usage unique Gratter avec au vaccinostyle en périphérie de la lésion (bourrelet), récupérer les squames dans une boîte de pétri. S il n y pas de squames, passer un écouvillon préalablement humidifié avec du sérum physiologique stérile Plusieurs heures entre15-25 C Environ 4 semaines ONGLES (ONYXIS) Délai de transport au laboratoire Délai de rendu de résultats Après asepsie des mains et port de gants à usage unique, Couper la partie atteinte périphérique et la jeter. Gratter à la frontière zone saine / zone atteinte (ou limer si l ongle est trop dur), recueillir la poudre au niveau du lit de l ongle dans la boîte de pétri. Plusieurs heures entre C Environ 4 semaines 9

10 Après asepsie des mains et port des gants à usage unique CUIR CHEVELU Prélever au niveau de la zone d alopécie (sans cheveux), les squames, cheveux cassés, croûtes. Mettre dans une boite de pétri. Si pas de squames, gratter puis écouvillonner avec un écouvillon humidifié avec du sérum physiologique stérile. Délai de transport au laboratoire Délai de rendu de résultats < à 2 h à température ambiante Délai maximal 24 h entre C si analyse différée Environ 4 semaines POILS (FOLICULITES) Après asepsie des mains et port des gants à usage unique Prélever au vaccinostyle, écouvillonner si suintant Délai de transport au laboratoire < à 2 h à température ambiante (15.25 C) Délai de rendu de résultats Délai maximal 24 h entre C si analyse différée Environ 4 semaines Après asepsie des mains et port des gants à usage unique PLIS (INTER-ORTEILS, INGUINAL) Prélever à la périphérie de la lésion par grattage. Si nécessaire utiliser un écouvillon humidifié Avec du sérum physiologique stérile Délai de transport au laboratoire Délai de rendu des résultats Délai maximal : 24 heures entre c si analyse différée Environ 4 semaines DOIGT (PERI ONYXIS) Après asepsie des mains et port des gants à usage unique Couper toute la partie de l ongle avec des ciseaux. Si présence de pus sur le pourtour de l ongle, presser la lésion et prélever à l aide de 2 écouvillons. Délai de transport au laboratoire Délai de rendu de résultats < à 2 heures entre C Délai maximal si analyse différée : 24 h entre C Environ 4 semaines 10

11 E.4 - Précautions universelles E.4.1 Cadre d application Elles sont à prendre via-à- vis de tous :. Les patients. Les sangs. Les produits biologiques ou tissus contenant ou en contact avec le sang. Les matériels souillés E.4.2 Mesures universelles. Ne pas recapuchonner les aiguilles. Ne pas adapter les aiguilles à la main. Déposer immédiatement après usage les objets piquants ou tranchants dans les conteneurs adaptés. Mettre les gants s il y a un risque de contact avec des liquides biologiques. Le port des gants doit être systématique en cas de lésions sur les mains même minimes. Se laver les mains avant et après chaque soin et après chaque acte technique et/ou les désinfecter avec une solution hydro alcoolique E.5 - Conduite à tenir en cas d AES CONDUITE A TENIR EN CAS d ACCIDENT D EXPOSITION AU SANG Les facteurs de transmission d agents microbiologiques dépendent :. De la nature de l AES : une coupure ou une piqûre représente un risque de séroconversion 10 fois supérieur à une projection sur une peau lésée.. De l importance du risque cumulé : plus le patient est infecté plus le risque est grand. La quantité de l inoculum : Un AES comporte un risque d autant plus grand que : Le volume et la quantité du microorganisme sont importants Le délai entre l utilisation de l aiguille et la piqûre accidentelle est court. Le temps de contact sur une muqueuse ou une peau lésée est long.. De la gravité potentielle : une contamination par le VIH ne doit pas faire oublier que les patients infectés par ce virus sont souvent porteurs du VHB et du VHC. 11

12 Service dermatologique M. TRUCHETET Tél. de Bel Air Tél. Médecine du Travail (Yutz-Thionville) Conduite à tenir en cas d'aes pour les préleveurs externes Conduite à tenir en cas d'aes pour les préleveurs internes du laboratoire 12

13 E.6 - Conduite à tenir an cas d incident de prélèvement Incident ou Accident Cause probable Conduite à tenir Rassurer le patient Arrêter le prélèvement et faire comprimer par le patient le point de ponction Mettre rapidement un pansement si le patient est inconscient. Malaise du patient conscient Anxiété, jeûne. Incliner le dossier du fauteuil De manière à ce qu il soit le plus allongé possible et relever les jambes du patient de manière à ce qu elles soient plus hautes que sa tête. Eviter la perte de connaissance en attirant l attention du patient Attendre que le patient se sente le mieux possible et noter l incident sur la fiche de transmission Hématome au point de prélèvement Garrot trop serré, veine trop délicate, piqûre hésitante Rassurer le patient. Compresser le point de prélèvement Poser une compresse alcoolisée. Perte de connaissance du patient Anxiété, jeûne + cause médicale Arrêter le prélèvement. Incliner le dossier du fauteuil de manière à ce que le patient soit le plus allongé possible et relever les jambes du patient de façon à ce qu elles soient plus hautes que la tête Attendre que le patient revienne entièrement à lui ou si nécessaire appeler le 15 Noter l incident sur la fiche de transmission. 13

14 E.7 - Elimination des déchets L élimination des déchets d activités de soins à risque infectieux(dasri) est soumise à la réglementation. D après l article R du code de la santé publique, il y a obligation de trier les déchets d activités de soins à la source dès leur production. Les DASRI sont les déchets infectieux issus des activités de diagnostic dans les domaines de médecine humaine ou vétérinaire. Sont également considérés comme DASRI les matériels coupants, tranchants ou piquants et les déchets anatomiques humains. Les DASRI doivent être séparés des autres déchets dès leur production et placés dans les containers spécifiques répondant aux dispositions de l arrêté du 24 novembre 2003 modifié, relatif aux emballages des déchets d activité de soins à risques infectieux. Toute personne qui produit des déchets définis à l article R.44-1 est tenue de les éliminer Les emballages des DASRI sont à usage unique.ces emballages doivent pouvoir être fermés temporairement en cours d utilisation et doivent être fermés définitivement avant leur enlèvement. L arrêté du modifié et la norme NF X précisent les caractéristiques de chaque emballage. D une façon générale ces emballages doivent : - être résistants et imperméables - avoir une couleur dominante jaune - avoir un repère horizontal indiquant la limite de remplissage - porter le symbole de danger biologique - porter le nom du producteur 14