Sommaire PARTIE I LES MALADIES PARASITAIRES INTERNES... 1 PARTIE II LES MALADIES PARASITAIRES EXTERNES OU TRANSMISES PAR DES PARASITES EXTERNES...

Transcription

1

2 Sommaire Préface... Avant-propos... Introduction... VII IX X PARTIE I LES MALADIES PARASITAIRES INTERNES Les maladies parasitaires digestives La strongylose gastro-intestinale L hæmonchose La nématodirose La strongyloïdose La monieziose La coccidiose La cryptosporidiose La paramphistomose Les maladies parasitaires du poumon La dictyocaulose Les protostrongylinoses Les maladies parasitaires du foie La fasciolose ou maladie de la grande douve La dicrocœliose ou maladie de la petite douve L œstrose L œstrose ovine Les cestodoses larvaires La cysticercose La cœnurose L échinococcose PARTIE II LES MALADIES PARASITAIRES EXTERNES OU TRANSMISES PAR DES PARASITES EXTERNES La gale La teigne Les myiases L infestation par les poux v

3 21 L infestation par les tiques Maladie transmise par les tiques : la piroplasmose ou babésiose ovine PARTIE III LES DIAGNOSTICS Les diagnostics visuels Les diagnostics biologiques Les diagnostics des parasites externes PARTIE IV LES MÉDICAMENTS ANTIPARASITAIRES La posologie, un point important Identifier les causes d inefficacité Les strongylicides à action adulticide et larvicide Des strongylicides à durées d action variables Les activités des médicaments sur un ou plusieurs parasites Les douvicides selon les stades de grandes douves Les anticoccidiens Les médicaments contre les parasites externes Les délais d attente à respecter PARTIE V LES PRATIQUES DE GESTION PARASITAIRE DANS LES TROUPEAUX DE MOUTONS Le contrôle des parasites Le contrôle de Moniezia ou Taenia chez des agneaux d herbe Le contrôle des coccidies chez les agneaux de bergerie Le contrôle des strongles gastro-intestinaux Le contrôle des strongles pulmonaires Le contrôle des myiases Le contrôle des grandes douves ou Fasciola hepatica Le contrôle des petites douves ou Dicrocœlium Le contrôle des tiques Le principe de prévention agronomique et hygiénique Index Listes des tableaux, figures et photos vi

4 Les maladies parasitaires digestives 1 Les strongyloses gastro-intestinales sont provoquées par des strongles vivant dans l appareil digestif et localisés essentiellement dans la caillette et l intestin grêle. Plusieurs genres de strongles gastro-intestinaux infestent les ovins, mais certains d entre eux sont plus pathogènes que d autres avec des fréquences très différentes au cours de l année. Un des points communs des principaux strongles digestifs chez les ovins est leur développement sur les pâturages, source d infestation des moutons. Les conduites de pâturage des troupeaux de moutons selon les régions naturelles ont un rôle sur le déroulement des infestations parasitaires et le degré d infestation. Parmi les pathologies dominantes qui sont sous le vocable strongylose, on distingue quatre catégories : la strongylose gastro-intestinale due aux strongles Ostertagia, Trichostrongylus, Cooperia, Chabertia, Trichuris, Œsophagostomum ; l hæmonchose due à Hæmonchus contortus ; la nématodirose due à Nematodirus ; la strongyloïdose due à Strongyloïdes, strongles de l intestin grêle. 5

5 1 Les maladies parasitaires digestives La strongylose gastro-intestinale La maladie les symptômes La strongylose gastro-intestinale peut être provoquée par un ou plusieurs strongles dans l appareil digestif. La maladie se développe au pâturage, elle est due principalement aux Ostertagia et aux Hæmonchus (cf. hæmonchose) dans la caillette ou aux Cooperia et Nematodirus (cf. nématodirose) dans l intestin grêle (tableau 1.1). Les autres strongles ne sont présents chez les ovins qu épisodiquement et les manifestations cliniques sont très peu fréquentes. À l exception de l hæmonchose et de la nématodirose, qui sont abordées séparément, la strongylose gastro-intestinale regroupe l infestation par tous les parasites, dont les strongles dominants sont Ostertagia, Cooperia, Trichostrongylus. Tableau 1.1 Principaux strongles gastro-intestinaux des moutons Caillette Intestin grêle Cæcum-côlon Ostertagia Cooperia Œsophagostomum Hæmonchus Trichostrongylus Chabertia Trichostrongylus Nematodirus Trichuris Bunostomum Strongyloïdes La strongylose se développe surtout après une infestation massive sur une courte durée. À l inverse, lorsque l infestation est peu importante chez des moutons en bon état corporel, il n y a pas de symptôme. Ce sont les agneaux d herbe en primo-infestation et les moutons déficients, en mauvais état corporel, qui seront concernés par la maladie. La conduite de pâturage est l un des paramètres qui favorisent l infestation des moutons, en particulier pour les agneaux et pour les brebis épuisées par la lactation. Toutefois, la maladie peut se développer quelques semaines après un traitement antiparasitaire. Ce phénomène s explique par l élimination médicale des strongles qui induit une perte de l immunité acquise par le mouton, puis par une réinfestation importante aussitôt après. La strongylose peut se manifester suite à l accumulation de strongles dans la caillette pendant le pâturage, souvent en grand nombre en fin d été et en automne. Cette infestation est d autant plus importante qu il y a à cette 1 6

6 1 période une forte contamination des prairies par des larves infestantes et un pâturage sur de faibles hauteurs d herbe. La strongylose gastro-intestinale peut avoir des manifestations cliniques à divers moments de la période de pâturage, voire pendant l hiver suite à un affaiblissement de la brebis. La strongylose est causée bien souvent par la migration des stades larvaires d Ostertagia dans la caillette. Deux types de maladies appelées ostertagioses sont à distinguer : L ostertagiose de type I est due aux migrations des larves d Ostertagia dans la muqueuse de la caillette pendant la période estivale. La pénétration de la larve infestante (stade larvaire L3) dans la muqueuse, puis sa sortie après deux transformations (stades larvaires L4 et immatures L5) pour continuer son évolution au stade adulte à l intérieur de la lumière de la caillette, provoquent des lésions de la paroi (lésions nodulaires). Lorsque la quantité de larves ingérées est élevée, les nombreux nodules constitués de cellules non fonctionnelles pour la fonction digestive entravent les capacités physiologiques de la caillette du mouton. Chez les jeunes ovins, l ostertagiose de type I sévit de juin à octobre au cours de la saison de pâture, mais peut aussi se manifester à la fin de la première saison d herbe. Elle se caractérise souvent sur l ensemble d un lot de moutons par de la diarrhée, une perte de poids et d état corporel. La mortalité est variable. L ostertagiose de type II apparaît de février à mai, sur des animaux en bergerie ou élevés en plein air, après l ingestion massive de larves infestantes en fin de saison de pâture. Cette forme de la maladie est due au «désenkystement» et à la sortie simultanée des larves d Ostertagia de la muqueuse de la caillette, après une période d hypobiose pendant l hiver. La maladie se manifeste par de la diarrhée intermittente, un manque d appétit, une perte de poids et d état corporel ainsi qu une anémie importante. Elle débute souvent avec les modifications hormonales au moment de l agnelage d hiver et au début de printemps. L ostertagiose de type II est aggravée lorsque la maladie est associée à la fasciolose. Les symptômes se caractérisent par de la diarrhée, un amaigrissement rapide et important. Bien souvent, les moutons se déplacent avec difficulté ; ils perdent l appétit. La maladie peut évoluer vers la mort si le diagnostic et le traitement ne sont pas réalisés précocement. La strongylose gastro-intestinale La biologie Les strongles gastro-intestinaux excrètent des œufs qui, rejetés avec les crottes, contaminent le pâturage. L œuf ne peut se développer que dans le milieu extérieur (photo 1.1). Il est protégé par une coque qui lui permet de résister un certain temps dans les crottes. L évolution de l œuf en larve infestante ou L3 nécessite trois transformations (L1, L2, L3) liées à la température, l humidité et l oxygénation (figure 1.1). Le froid, la neige conservent relativement bien les larves infestantes et même les œufs. Par contre, la chaleur et la sécheresse leur sont préjudiciables. La survie moyenne sur les pâturages est de 6 à 8 mois en automne-hiver. La transformation des larves infestantes en ver adulte se déroule par mues successives dans le tube digestif pour la plupart des strongles. Pour Ostertagia, le plus répandu dans la plupart des régions françaises, la larve migre dans la muqueuse de la caillette (photo 1.2), et dans l intestin grêle pour Cooperia. La migration est rapide (4 à 5 jours) d avril à octobre, puis de novembre à mars les larves s enkystent ; elles sont en vie ralentie, appelée aussi 7

7 1 Les maladies parasitaires digestives Photo 1.1 Œuf de strongles gastro-intestinaux. Source : Pfizer Cycle évolutif des strongles gastro-intestinaux Œuf Sur Ia prairie Larve L 1 Larve L 2 Larve L 3 ou larve infestante qui attend le mouton Larve L 4 Dans le corps du mouton Larve L 5 Adultes Mâle Femelle Œufs rejetés par les crottes Figure 1.1 Cycle évolutif des strongles gastro-intestinaux. 8

8 1 Photo 1.2 Larve infestante de strongles gastro-intestinaux. Source : Pfizer phase d hypobiose, pendant 3 à 4 mois dans la muqueuse. La reprise d activité des larves amène habituellement une sortie progressive de la muqueuse de la caillette. Le réveil des larves et la sortie de la muqueuse de la caillette sont accélérés par la modification de l état physiologique de la brebis lors de l agnelage. Les larves évoluent au stade adulte qui va excréter des œufs de strongles dans les crottes (photo 1.3). Chez certains animaux la sortie brutale des larves provoque la maladie, la strongylose gastro-intestinale, suite à des agnelages de fin d hiver, avec parfois peu d œufs de parasites par gramme de matières fécales. La strongylose gastro-intestinale Photo 1.3 Ostertagia adultes, strongles de la caillette. Source : Pfizer 9

9 1 Les maladies parasitaires digestives Certains strongles pondent plus d œufs que d autres. Ostertagia est peu prolifique par rapport aux strongles Cooperia dans l intestin grêle, ce qui complique tout diagnostic à partir des matières fécales. Il n est pas possible d identifier le genre de strongles présents à partir des œufs excrétés, excepté ceux de Nematodirus et de Strongyloïdes. L infestation naturelle Le déroulement de l infestation parasitaire des moutons s effectue selon les pratiques de conduite des troupeaux en zone herbagère, en zone sèche et en zone de montagne. Pâturage des moutons en zone herbagère Les prairies sont l endroit où les moutons s infestent en broutant l herbe. Les principales parasitoses des moutons sont présentées sur la figure 1.2. Les pâturages sont contaminés d une année à l autre. Le froid hivernal ne détruit pas en totalité les larves infestantes de strongles digestifs. Toutes les prairies pâturées par les ovins durant l année sont contaminées par la présence de larves infestantes de strongles digestifs. Pendant la période hivernale, la population larvaire sur les prairies pâturées l année précédente baisse. À la mise à l herbe en mars-avril, les prairies sont encore contaminées. J F M A M J J A S O N D Agnelage Lutte Lutte Agnelage Acariens Strongles digestifs Hæmonchus Œstres Strongles pulmonaires Grande douve Acariens Figure 1.2 Conduite de troupeaux de moutons en zone herbagère, infestation parasitaire. Source : C. Mage 10

10 II Les maladies parasitaires externes ou transmises par des parasites externes 27688_MalMoutons.indd :38 AM

11 Les maladies parasitaires externes ou transmises par des parasites externes 19 Les myiases La maladie les symptômes Les myiases Le terme myiase désigne une affection provoquée par des larves de certaines mouches carnassières qui se développent à la surface ou dans les couches superficielles de la peau. Les mouches appartiennent à plusieurs espèces : Lucilia, Wohlfartia principalement et Calliphora et Phormia. L infestation est fréquente pendant les périodes chaudes de l été. Elle se caractérise par la présence d asticots dans divers endroits du corps du mouton, dans les blessures fraîches, dans l orifice du rectum, de la vulve, de la verge, du fourreau, entre les onglons (photo 19.1) L infestation par les asticots peut s accompagner de perte d appétit, de perte d état corporel, de toxémie, et même de mortalité suite à des affections secondaires. Lors de myiases cutanées, les larves en dévorant la peau détachent la laine qui tombe en découvrant la plaie. Les cavités creusées par les larves peuvent être impressionnantes. Photo 19.1 Myiase due à Lucilia sericata. Source : C. Mage Lors de myiase à Wohlfartia magnifica, les lésions sont essentiellement sur les zones non lainées : les orifices des organes génitaux, l entrée du conduit auriculaire, la base des cornes, et parfois sur les plaies du corps

12 19 Les maladies parasitaires externes ou transmises par des parasites externes La myiase des espaces interdigités appelée aussi podomyiase constitue la localisation la plus fréquente. Les insectes sont attirés par l espace interdigité des deux onglons, mais l infestation peut se faire consécutivement à une inflammation d origine traumatique ou d origine infectieuse (piétin, panaris interdigité). Après la colonisation des larves de Wohlfartia, le pied se déforme, devient tuméfié et la boiterie est importante. Les deux doigts sont écartés. Plus l infestation est ancienne, plus les tissus sont lésés en profondeur avec présence de nombreuses galeries. Les lésions et l inflammation sont considérables et les surinfections locales accroissent les dommages tissulaires. La myiase vulvaire et du fourreau est favorisée par les écoulements et les tuméfactions locales (chaleurs et période de post-partum chez les agnelles et les brebis). Chez les agnelles, la douleur et le prurit sont intenses, générant mordillement et grattage. Chez les mâles, les larves sont déposées à l orifice du fourreau et colonisent rapidement la cavité. La verge peut présenter des lésions graves. La queue coupée courte dans certaines races est un facteur très favorable à l infestation. La myiase auriculaire se développe à l entrée du conduit de l oreille. La présence du contenu plus ou moins crasseux semble être l un des lieux de prédilection pour la ponte. Elle se développe aussi sur le pavillon de l oreille à partir des plaies provoquées par l irritation locale créée par le frottement des boucles d identification. Cette localisation de myiase est un endroit où il y a de nouvelles colonisations après le traitement. Lors de myiases à Lucilia sericata, les asticots ne sont retrouvés qu au niveau de zones enlainées (toison), lésées préalablement soit par des traumatismes, soit par suite de macération locale (essentiellement vers les épaules) au niveau du garrot, sur le dos et la croupe. Ces myiases peuvent être une complication fréquente du syndrome «pourriture de la toison» (due à la multiplication locale de bactéries Pseudomonas aeruginosa) et de la maladie des laines jaunes. Biologie Les agents de myiases externes des moutons sont des insectes de la famille des Calliphoridae. Les insectes du genre Lucilia sont de coloration brillante, souvent métallique, bleue, verte, à abdomen homogène ou pourvu de bandes transversales (photo 19.2). Les femelles sont ovipares ; leurs larves de 3 e âge (L3) présentent des stigmates postérieurs superficiels. La mouche adulte mesure 6 à 11 mm. Les mouches pondent entre et œufs préférentiellement sur les plaies, les blessures des moutons, sur les cadavres ou toute matière organique en décomposition. Les larves éclosent 10 heures environ après la ponte et évoluent en 2 jours en larves de 3 e âge (L3) d une taille de 15 mm de long (photo 19.3). Les L3 tombent sur le sol et, après une pupaison de durée variant entre 4 et 24 jours, évoluent en adultes. Le cycle complet se réalise en une dizaine de jours en période estivale (figure 19.1). Lorsque la température du sol est inférieure à 7 C, la pupe de Lucilia sericata reste inactive. Par contre, elle a une activité durant la belle saison. 106

13 19 Les myiases Photo 19.2 Lucilia sericata. Source : Parasitologie ENV Nantes Photo 19.3 Larves de Lucilia. Source : J.-M. Gourreau 107

14 19 Les maladies parasitaires externes ou transmises par des parasites externes Mouche Lucilia Œufs 24h larve (asticot) 3-4 jours Pupe 5 jours Figure 19.1 Cycle évolutif de Lucilia sericata. Les insectes du genre Wohlfartia sont de couleur grisâtre, mesurent 8 à 14 mm au stade adulte et ont un abdomen clair et tacheté avec des yeux rouge brique (photo 19.4). Cette mouche ne peut se développer que sur des matières organiques en décomposition. Les larves L1 ont un pouvoir de sécrétion de substances protéolytiques et se nourrissent d abord de cellules épidermiques et de lymphe extravasée, puis de tissus plus ou moins nécrosés et d exsudats. Elles n ont pas de contact direct avec le système sanguin de l animal. Les larves de 2 e (L2) et de 3 e âge (L3) se nourrissent de la même manière que les larves L1. La durée d évolution du stade larvaire L1 au stade larvaire L3 varie avec la quantité de nutriments disponibles pour les larves. En moyenne, l évolution se réalise en quelques jours, de 5 à 7 jours (figure 19.2). Photo 19.4 Wohlfartia magnifica. Source : J.-M. Gourreau 108

15 III Les diagnostics 27688_MalMoutons.indd :38 AM

16 24 Les diagnostics Les diagnostics biologiques La coproscopie Il s agit de la recherche des œufs ou des larves de premier stade dans les crottes. L examen s effectue à partir de prélèvements de matières fécales individuels ou sur le mélange de ceux-ci. Le volume de crottes doit être égal ou supérieur à 5 g ou 30 g selon la technique d examen pratiquée au laboratoire d analyses. Le transport au laboratoire d analyses doit être le plus rapide possible, avec un maintien au frigo (proche de 4 C) pour éviter la destruction des larves de premier stade par la chaleur. Il faut aussi éviter l éclosion de larves à partir des œufs contenus dans les matières fécales. Les résultats sont exprimés en nombre d œufs de parasites par gramme de crottes. Ils indiquent la nature de l infestation présente sur les animaux du troupeau à partir de l excrétion parasitaire. Le niveau de l excrétion d œufs ou de larves de parasites n est pas en relation avec le degré d infestation du mouton, ni avec la maladie. Le niveau d excrétion parasitaire est dépendant de l état physiologique, de l état corporel de la brebis (figures 24.1 et 24.2) et des différents parasites (figures 24.3 et 24.4). Certains strongles pathogènes (ex. : Ostertagia, œufs/gramme œufs/gramme œufs/gramme AGNELAGE LUTTE Figure 24.1 Excrétion d œufs de strongles gastro-intestinaux chez les brebis. Source : C. Mage

17 œufs/gramme ± 200 à 1000 œufs/gramme Bon état corporel note 2- > 2,5 Mauvais état corporel note 1-1,5 Figure 24.2 Excrétion d œufs de strongles gastro-intestinaux chez les brebis selon l état corporel. Source : C. Mage INFESTATION (fin pâturage) OSTERTAGIA Adultes Larves enkystées EXCRÉTION (œufs/gramme) EXEMPLE INTERPRÉTATION Méthode Mac Master 6 œufs de strongles 50 = œufs de strongles 15 = 45 Les diagnostics biologiques HÆMONCHUS Larves enkystées COOPERIA Adultes NEMATODIRUS Adultes œufs de strongles 50 = œufs de strongles 15 = 30 Figure 24.3 Diagnostic de strongles gastro-intestinaux chez la brebis (coproscopie). Source : C. Mage INFESTATION (fin juin) EXCRÉTION (œufs/gramme) EXEMPLE INTERPRÉTATION OSTERTAGIA Adultes 5000/ Méthode Mac Master 16 œufs de strongles 50 = œufs de strongles 15 = 75 Larves HÆMONCHUS Adultes COOPERIA Adultes NEMATODIRUS Adultes œufs de strongles 50 = œufs de strongles 15 = 30 Figure 24.4 Diagnostic de strongles gastro-intestinaux chez les agneaux (coproscopie). Source : C. Mage 127

18 IV Les médicaments antiparasitaires 27688_MalMoutons.indd :38 AM

19 Les médicaments antiparasitaires 26 La posologie, un point important L administration de médicaments aux moutons sous quelque forme que ce soit, doit être la plus précise possible selon le poids de l animal (figure 26.1). Plus les antiparasitaires présentent une concentration importante, plus la quantité de produit à administrer sera faible et le risque de sous-dosage sera élevé. Il faut bien évaluer le poids des moutons pour éviter tout sous-dosage du médicament. Poids (kg) ALLAITEMENT ENTRETIEN GESTATION M A M J JT A S O N D J F M Mise bas Mise en lutte Retrait du bélier Sortie pâture Mise bas La posologie, un point important Figure 26.1 Exemple d évolution du poids des brebis en production d agneaux d herbe. Source : C. Mage Lorsque l on pratique un traitement des animaux avec une posologie unique pour le lot, on doit prendre en compte le poids de l animal le plus lourd comme référence. De plus, lorsqu on procède au traitement par estimation du poids, il faut tenir compte de la variation importante du poids selon le stade physiologique par race et des écarts entre le poids minimum et le poids maximum dans un troupeau (tableau 26.1). Cette pratique peut entraîner pour de nombreux antiparasitaires un sous-dosage qui peut varier de 20 à 30 % en moyenne (tableau 26.2)

20 26 Les médicaments antiparasitaires Tableau 26.1 Exemple de variation du poids sur différents lots de brebis dans un élevage à la mise à l herbe Lots Moyenne Brebis ayant mis bas mi-janvier 65 ± 6,7 Brebis gestantes 74 ± 10,4 Brebis allaitantes depuis 15 jours 60 ± 8,01 Source : C. Mage Poids (kg) Valeurs extrêmes Tableau 26.2 Répartition du poids des moutons dans un troupeau Poids (kg) par pesées Poids des brebis dans un troupeau Inférieur Moyen Supérieur + 10 kg + 20 kg % de moutons Source : C. Mage 136

21 V Les pratiques de gestion parasitaire dans les troupeaux de moutons 27688_MalMoutons.indd :38 AM

22 37 Le contrôle des parasites Le contrôle des strongles gastro-intestinaux Contrôles parasitaires pour les zones herbagères Pour les brebis Avec des molécules à action immédiate Dans les zones herbagères, les traitements antiparasitaires peuvent être pratiqués avec des molécules à action immédiate (figure 37.1). Dans cette situation les interventions sur les brebis sont réalisées un mois à un mois et demi après la mise au pâturage. Les traitements sont renouvelés toutes les 5-6 semaines jusqu à la fin de pâturage (figure 37.2). INFESTATION Infestation Excrétion Benzimidazoles Autres Ivermectine 21 J Moxidectine Ivermectine + Closantel 35 J 56 J Moxidectine LA 120 J Figure 37.1 Action des antiparasitaires durant l infestation de strongles des moutons. Source : C. Mage

23 37 Strongles digestifs Hæmonchus Œstres Strongles pulmonaires Grande douve Acariens Acariens J F M A M J J A S O N D Strongles gastro-intestinaux Hæmonchus Strongles pulmonaires Antiparasitaires à action immédiate Œstres Grande douve Figure 37.2 Contrôle des infestations parasitaires des brebis avec des molécules à action immédiate (conduite de troupeaux de moutons en zone herbagère). Source : C. Mage Les autres parasitoses tels les œstres ou la grande douve nécessitent des interventions spécifiques, voire un diagnostic biologique pour la grande douve au préalable. Avec des molécules à action rémanente Selon la molécule retenue et sa durée d action sur les strongles, voire sur d autres parasites, la période de traitement des brebis s organise pour un meilleur profit de la gestion parasitaire. Exemple avec la moxidectine LA appliquée à la mise à l herbe qui assure une protection de l infestation, une absence d excrétion et une réduction de la contamination des prairies en été. Dans ce cas, une intervention de rentrée en bergerie peut compléter le programme de gestion des parasitoses. Seule la grande douve n est pas contrôlée et nécessite un diagnostic biologique en début d été et à l automne pour assurer le besoin de traitements appropriés (figure 37.3). Le contrôle des strongles gastro-intestinaux Exemple avec la moxidectine ou avec l association ivermectine et closantel. Les interventions sur les brebis auront une organisation de contrôle des infestations par les strongles, et les œstres pendant le pâturage en les pratiquant mi-mai et mi-août. Les durées d activité des molécules assureront un niveau parasitaire faible sans conséquences sur la santé et la productivité. Toutefois, dans le cas de traitements avec la moxidectine, des diagnostics de grande douve doivent être réalisés en début d été et à l automne pour assurer la maîtrise de l infestation par cette parasitose (figures 37.2 et 37.4). 159

24