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D autre part, certaines études comme celle de WeilMalherbe & Bone (1951, Biochem. J. 49, 339 347) ont montré que la cinétique de l hexokinase en absence ou en présence du glucose6 phosphate (G6P) donne des résultats répondant à une représentation de LineweaverBurk de la figure 2. Cependant d autres travaux comme ceux de Vowels & Easterby (1979, Biochim. Biophys. Acta 566, 283 295) avaient montré un résultat inverse, représenté par la figure 3. Fig. 2. Fig. 3. 1. Déterminer les valeurs de Km et de Vmax pour ces deux enzymes et en déduire leurs efficacités catalytiques (Vmax/Km) sur le glucose. Comparer les résultats relatifs aux deux deux enzymes. Quelles conclusions déduisezvous? 2. Sachant que la concentration intracellulaire hépatique de glucose est de 5 mm (glycémie normale), calculer en pourcentage de Vmax, les vitesses initiales des réactions catalysées par les deux enzymes. Quelle serait l influence d une augmentation importante de la glycémie? Indiquer laquelle de ces deux enzymes est susceptible d intervenir efficacement en cas d élévation de la concentration en glucose au delà de 5 mm. Justifier votre réponse. 3. Interpréter les effets du glucose6phosphate sur l hexokinase aux niveaux de la catalyse enzymatique et du métabolisme du glucose relatés par les figures 2 et 3. Qu en déduisez vous à propos du fonctionnement de l hexokinase. QUESTION 2 La βgalactosidase (EC 3.2.1.23) est une hydrolase dont le rôle est d'hydrolyser des β galactosides en monosaccharides. Son absence (ou sa présence à faibles concentrations) dans l'intestin est derrière l intolérance au lactose (incapacité à digérer le lactose chez l'homme). Une déficience au niveau du gène GLB1 provoque la mucopolysaccharidose de type IV (MPS4), la galactosialidose ou la gangliosidose GM1. A ph 7,7 et 25 C, les cinétiques d'hydrolyse de l'o nitrophénylgalactoside (S) par la bétagalactosidase de la bactérie Escherichia coli ont été étudiés en absence ou en présence de l'un des inhibiteurs suivants: onitrophénylbétadthiogalactoside (ONPTG 3. 10 4 M), maltose (0,26 M) et mélibiose (0,17 M). 2

Les mesures de vitesses initiales, v (absorbance à 410 nm par minute, A. min 1 ) pour chacune de ces expériences ont permis d avoir des cinétiques représentées par les courbes de LineweaverBurk (1/v = f(1/(s)) correspondant aux figures 1, 2 et 3. 1. A partir des représentations graphiques tracées en absence ou en présence de l'inhibiteur (I), préciser les types d'inhibition exercés exercées par les trois inhibiteurs vis à vis du substrat (S = ONPG). Calculer les constantes cinétiques Vmax (en absence d'inhibiteur), Vmax' (en présence d'inhibiteur), Km (en absence d'inhibiteur) et et Km' (en présence d'inhibiteur). Discuter l'effet de chaque inhibiteur sur l'activité enzymatique et la liaison entre l'enzyme (E), le substrat (S) et l'inhibiteur (I). 2. Calculer les constantes d'inhibition pour chaque inhibiteur (Ki et Ki') et comparer l'affinité de l'enzyme pour chaque inhibiteur Données : A, D et G représentent les points d intersection des courbes avec l axe des ordonnées obtenus en absence des inhibiteurs. E et H représentent les points d intersection des courbes avec l axe des ordonnées obtenus respectivement en présence des inhibiteurs maltose et mélibiose. C, F et I représentent les points d intersection des courbes avec l axe des abscisses obtenus en absence des inhibiteurs. B et J représentent les points d intersection des courbes avec l axe des abscisses obtenus respectivement en présence des inhibiteurs ONPTG et mélibiose. A = D = G = 6 A 1. min, B = 5. 10 3 M 1, C = F = I = 10. 10 3 M 1, E = 12 A 1. min, H = 12,19 A 1.min, J = 20. 10 3 M 1 QUESTION 3 La phospholipase A2 trouvée dans les venins de serpents et d abeilles, coupe la liaison ester en position 2 des 1,2diacylphosphoglycérides des membranes plasmiques, libérant un acide gras et un lysophospholipide. La réaction catalysée par la phospholipase A2 implique la présence d'ions 3

calcium (Ca ++ ). L étude de l interaction enzymesubstrat a permis d aboutir aux complexes montrés dans les figures 1 et 2 ci dessous. Donner une interpréter de ces illustrations structurales. Fig. 1 Fig.2 Réponses brèves QUESTION 1 Réponse 1. Km (mm) Vmax (µm/min) Vmax/Km Glucokinase 9,47 4,76 0,50 Hexokinase 5,1 0,98 0,19 L hexokinase possède plus d affinité pour le glucose, car possédant un Km faible. Par contre le glucokinase a une vitesse plus élevée par rapport à celle de l hexokinase. Ainsi, la glucokinase peut phosphoryler environ 5 fois plus de glucose par min par rapport à l hexokinase. Cette dernière ne peut aller qu à 0,98 µm de glucose phosphorylé par minute et dans les conditions optimales. La spécificité de la glucokinase pour le glucose (Vmax/Km) est plus élevée par rapport à l hexokinase. Réponse 2. v à (Glucose) = 5 mm (en pourcentage de Vmax). Pour la glucokinase : Avec (Glucose) = 5 mm, 1/(Glucose) = 0,20 mm 1, ce qui correspond à 1/v = 0,6 µm 1. min et donc v = 1,67 µm/min, soit environ 35% de Vmax. 4

Pour l hexokinase : Avec (Glucose) = 5 mm, 1/(Glucose) = 0,20 mm 1, ce qui correspond à 1/v = 2 µm 1. min et donc v = 0,50 µm/min, soit environ 50% de Vmax. Influence d une augmentation importante de la glycémie. Avec des concentrations élevées en glucose (exemple 20 mm), l hexokinase aura presque atteint sa vitesse maximale et ne pourra pas phosphoryler plus de glucose. Par contre, la glucokinase n aura pas encore atteint sa vitesse maximale et continue à phosphoryler le glucose. Enzyme susceptible d intervenir efficacement lors de l élévation de la glycémie. Glucokinase Réponse 3. Figure 2 : pour l hexokinase, le produit glucose6phosphate est inhibiteur non compétitif visàvis du glucose. Il agit sur le même site que le substrat et sur un autre site sur l enzyme ne fixant pas le substrat, car il forme un complexe ternaire avec l enzyme. Figure 3 : pour l hexokinase, le produit glucose6phosphate est inhibiteur compétitif visàvis du glucose. Il agit sur le même site que le substrat. Il forme uniquement un complexe binaire avec l enzyme. L inhibition non compétitive du glucose6phosphate (produit final de la réaction) montre que le glucose se fixe bien sur un autre site que le site actif. Il s agit d un site régulateur. Ce résultat démontre que l Hexokinase est une enzyme régulatrice (enzyme allostérique). Lien web : http://www.takween.com/enzymologie/enzymesmetabolismeexercices.html QUESTION 2 Réponse 1. Inhibition visàvis du substrat (ONPG) ONPTG : inhibiteur compétitif, Maltose : inhibiteur non compétitif, Mélibiose : inhibiteur incompétitif. ONPG Sans inhibiteur ONPTG (3.10 4 M) Maltose (0,26 M) Mélibiose (0,17 M) K m (M) V max (A.min 1 ) K m (M) V max (A.min 1 ) K I (M) K I (M) 1.10 4 0,167 2.10 4 0,167 3.10 4 1.10 4 0,082 0,25 0,25 0,5.10 4 0,082 0,164 5

Réponse 2. Pour ONPTG (inhibiteur compétitif) : Km = Km x (1+(I)/Ki), soit 2.10 4 = 1.10 4 x [1+ (3.10 4 )/Ki] ce qui donne Ki = 3.10 4 M Pour le maltose (inhibiteur non compétitif) : Vmax = Vmax/(1+(I)/Ki), ce qui donne Ki = 0,25 M Pour le mélibiose (inhibiteur incompétitif) : Vmax = Vmax/(1+(I)/Ki), ce qui donne Ki = 0,164 M L affinité de l enzyme pur les inhibiteurs est décroissante dans l ordre ONPTG (Ki = 3.10 4 M), Mélibiose (Ki = 0,164 M) et Maltose (Ki = Ki = 0,25 M) Lien web : http://www.takween.com/enzymologie/enzymescatalyseexercices.html QUESTION 3 Les figures 1 et 2 montrent que la phospholipase A2 est une enzyme à Ca++. La figure 1 montre que le contact de l enzyme (phospholipase A2) avec la membrane plasmique est réalisé à l aide de deux types d acides aminés de l enzyme dont des acides aminés polaires comme la lysine (ici K10 et K115) pouvant engager des liaisons ioniques avec la membre et des acides aminés apolaires comme la valine (ici V3), la leucine (ici L19) et la phénylalanine (ici F23 et F63) qui engare des interactions hydrophobes avec les lipides de la membrane plasmique. La figure 2 montre que l'extrêmité hydrophile du phospholipide est dirigée vers le Ca++ alors que la partie hydrophobe (chaines carbonnées d'acides gras) est orientée vers les résidus aromatiques des acides aminés de l'enzyme (Tyr, Trp, Phe). Cette structure montre l'importance des interactions hydrophobes dans la fixation et l'orientation des phospholipides, substrats de la phospholipase A2. Lien web : http://www.takween.com/enzymologie/phospholipaseexamen.html Contact: baaziz@uca.ma 6