DIPLÔME UNIVERSITAIRE DE GENIE GENETIQUE Le Diplôme Universitaire de Génie Génétique est obtenu par la validation de 3 modules parmi 4 proposés : Outre l assiduité, l évaluation individuelle est réalisée à l issue de chaque stage sur la base : D un rapport de stage portant sur les expérimentations réalisées au cours du stage. D un examen écrit spécifique portant sur le programme théorique et expérimental. Durée et Prix selon les stages choisis (voir catalogue) : PCR quantitative en temps réel Du 12 au 14 septembre 2011 (20h/2.5j) 1103 Techniques d étude des interactions protéine-protéine Du 14 au 18 novembre 2011 (32h/4.5j) 2016 Transfert de gènes dans les cellules eucaryotes Du 18 au 21 octobre 2011 (32h/4j) 2016 Purification et analyse des protéines Du 6 au 10 juin 2011 (35h/5j) 2142
PURIFICATION ET ANALYSE DES PROTEINES DU 6 AU 10 JUIN 2011 DUREE 5 JOURS / 35 HEURES 2142 Ingénieurs, chercheurs, techniciens. Laboratoires de recherche, industries pharmaceutiques. Ce OBJECTIFS : Ce stage a pour objectif de permettre aux stagiaires d acquérir et de mettre en œuvre les techniques d analyse et de purification des protéines. Les parties théoriques et pratiques alternent dans la journée. 2h30 par jour Introduction et généralités sur les protéines Outils d analyse bioinformatique des séquences et des structures protéiques Vecteurs de surexpression de protéines dans différents organismes Extraction et solubilisation de protéines membranaires et de corps d inclusion (utilisation des détergents) Stratégies et méthodes de purification Méthodes chromatographiques filtration sur gel, chromatographie échangeuses d ions, d affinité, hydrophobe, en phase inverse Analyse protéomique par spectrométrie de masse 4h30 par jour Application des outils bioinformatiques à la purification de protéines modèles Mise en œuvre des principales techniques de purification Chromatographie d affinité Chromatographie échangeuse d ions Gel filtration Exploitation et analyse des résultats expérimentaux Techniques de concentration et de conservation des protéines ENCADREMENT : Dr T. de CALDAS, Dr A. MEJEAN, Dr N.DEMONT-CAULET decaldas.therese@ijm.univ-paris-diderot.fr / annick-mejean@enscp.fr / demont@versailles.inra.fr DOCUMENTS : Résumés des conférences, planches d illustration l Université Compte-rendu des expériences et examen écrit pour les stagiaires postulant pour le Diplôme d Université de «Génie génétique».
PCR QUANTITATIVE EN TEMPS REEL DU 12 AU 14 SEPTEMBRE 2011 DUREE 2,5 JOURS / 20 HEURES 1103 OBJECTIFS : Cette formation a pour objectif de former les stagiaires aux notions théoriques récentes et aux différentes techniques utilisées dans les laboratoires pour mettre en œuvre des technologies complexes de PCR ou RT-PCR : choix des oligonucléotides, applications aux diagnostics ou à la recherche fondamentale. 4h La réaction de polymérisation en chaîne (RPC) : aspects théoriques Aspects techniques : choix des amorces et conditions de réactions RT-RPC RPC quantitative RPC en temps réel : principes et applications HRM High Resolution Melting Curve Exemples d applications au diagnostic 16h RT-RPC en temps réel RPC en temps réel : quantification de cibles et identification de mutations connues Choix d amorces pour la RPC par analyse informatique et visite des principaux sites WEB HRM High Resolution Melting Curve ENCADREMENT : Pr C. LE VAN KIM, Dr Ch. ROUILLAC-LE SCIELLOUR caroline.le-van-kim@inserm.fr / clesciellour@chi-poissy-st-germain.fr DOCUMENTS : Résumé des notions théoriques, conditions et méthodes de l expérimentation pratique. l Université. Compte-rendu des expériences et examen écrit pour les stagiaires postulant pour le Diplôme d Université de «Génie génétique».
Ce.TRANSFERT DE GENES DANS LES CELLULES EUCARYOTES DU 18 AU 21 OCTOBRE 2011 DUREE 4 JOURS / 32 HEURES 2016 OBJECTIFS : Cette formation a pour objectif de former les stagiaires (débutants) aux différentes techniques utilisées dans les laboratoires pour le transfert de gènes dans les cellules eucaryotes : transfection, électroporation 1h30/jour Promoteurs eucaryotes, structure, fonctionnement - Généralités Les techniques de transfert de gènes, adaptation aux différents types cellulaires - Les différentes méthodes de transfection - Vectorologies virales et non virales Stabilisation de gènes - Les différents marqueurs de sélection - Stratégies de maintien des clones stables Gènes rapporteurs et méthodes de mesure 6h30/jour Optimisation et comparaison de l'électroporation de deux lignée cellulaires : une non adhérente (Jurkat) et une adhérente (C2C12) Optimisation et comparaison de transfection de deux lignée adhérentes (Hela et C2C12) à la lipofectamine ou par Coprécipitation au Phosphate de Calcium Utilisation de différents gènes rapporteurs (GFP et Luciférase) Analyse d une sélection de 3 clones de lignée inductible (Tet-on) Etudes d une voie de transduction du signal NFkB ENCADREMENT : Dr S. PICHON, Dr A. LILIENBAUM sabrina.pichon@univ-paris-diderot.fr, alain.lilienbaum@univ-parisdiderot.fr DOCUMENTS : Résumé des notions théoriques, conditions et méthodes de l expérimentation pratique. l Université. Compte-rendu des expériences et examen écrit pour les stagiaires postulant pour le Diplôme d Université de «Génie génétique».
TECHNIQUES D ETUDES DES INTERACTIONS PROTEINE - PROTEINE DU 14 AU 18 NOVEMBRE 2011 DUREE 4,5 JOURS / 32 HEURES 2016 OBJECTIFS : Ce stage pratique a pour objectif de familiariser les stagiaires avec les techniques d analyse des interactions «protéine-protéine». Les stagiaires exploreront des interactions protéiques à travers l application de plusieurs techniques. Les analyses expérimentales s effectueront à la fois dans des systèmes in vitro à l aide de technologie comme la résonance plasmonique de surface (BIAcore) et dans des systèmes cellulaires. 1h30 par jour Les différents types d interactions protéine-protéine Analyse d une interaction protéine-protéine - les méthodes utilisées : le double hybride dans la levure, la coimmunolocalisation, le FRET, la co-immunoprécipitation et le pontage moléculaire, la capture par «GST-pulldown» - l analyse quantitative en temps réel : la résonance plasmonique de surface Recherche de partenaires protéiques - par crible en double hybride dans la levure - approche protéomique 6h30 par jour Interaction protéine-protéine en système cellulaire - co-immunoprécipitation : biotinylation, pontage moléculaire par «cross-linker» et immunoprécipitation de protéines de surface cellulaire - co-immunolocalisation : marquage fluorescent de protéines cellulaires Interaction protéine-protéine en système in vitro - La résonance plasmonique de surface : système BIAcore Interaction antigène-anticorps Analyse en temps réel de l interaction entre deux protéines ENCADREMENT : Pr C. Le Van KIM et Dr W. EL NEMER caroline.le-van-kim@inserm.fr / wassim.el-nemer@inserm.fr DOCUMENTS : Résumé des notions théoriques, conditions et méthodes de l expérimentation pratique. l Université. Compte-rendu des expériences et examen écrit pour les stagiaires postulant pour le Diplôme d Université de «Génie génétique».