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B3 Nommer le DNFB et définir son rôle? Dinitrofluorobenzène permet de caractériser le N donne des DNP-aa B4 Schématiser les données précédentes en les complétant par celles apportées par l action de la carboxypeptidase : Pour le peptide 1 Pour le peptide 2 1 2 3 4 5 la--------------------val Y = yr sp,cys et Y à placer 0.6 X = rg 1 2 3 4 5 Y = yr ly--------------------la Cys, X et Y à placer 0.6 B5 Rôle de la trypsine? COUPURE de type N après R ou LYS Conséquences sur le peptide 1 (donner toutes les Conséquences sur le peptide 2 (donner toutes les Pas de coupure pas d arg 1 rg et 3 4 5 X = rg 1 2 rg et 4 5 B6 Rôle de la chymotrypsine? COUPURE de type N après YR, PHE Conséquences sur le peptide 1 (donner toutes les 1 yr et 3 4 5 Y = yr 1 2 yr et 4 5 Conséquences sur le peptide 2 (donner toutes les 1 2 3 yr et la B7 Rôle de la Protéinase V8? COUPURE de type N après sp, lu Conséquences sur le peptide 1 (donner toutes les 1 sp et 3 4 5 1 2 sp et 4 5 B8 Récapitulatif séquences du peptide 1 (donner toutes les Conséquences sur le peptide 2 (donner toutes les Pas de coupure pas de sp séquences du peptide 2 (donner toutes les la sp yr Cys Val la yr sp Cys Val ly rg Cys yr la ly Cys rg yr la

C - L étude du séquençage du peptide donne : Hydrolyses Peptide DNFB DNP-la etdnp-ly Carboxypeptidase Val et la rypsine 2 peptides dont un est un dipeptide positif au réactif des phénols Chymotrypsine?? Protéinase V8 2 peptides dont un est un tripeptide positif au réactif des phénols C1 Déduire des résultats précédents (question et B) la séquence du peptide. Montrer l action de la chymotrypsine par une flèche la sp yr Cys Val la yr sp Cys Val ly rg Cys yr la non ly rg Cys yr la non la sp yr Cys Val non la yr sp Cys Val oui ly Cys rg yr la ly Cys rg yr la = pont disulfure entre les deux cystéines = coupure avec la chymotrypsine 2.6 (La question D peut être traitée indépendamment de la séquence de 1 et 2). D En utilisant les données suivantes et celles apportées par l hydrolyse HCl 6N à 110 C et le fait que contrairement à 1, le peptide 2 est positif au réactif de sacchaguchi et que les peptides 1 et 2 sont tous les deux positifs aux réactifs des phénols, confirmer l ordre d élution des peptides 1 et 2 de la question. pk αnh2 = 8 pk αcooh= 3 Pk R de sp = 4 Pk R de Cys =10 pk R de l acide aminé X = 11 pk R de l acide aminé Y = 13 Y est donc la yr X est donc l rg 3 4 8 10 13 αcooh 0 - - - - - R de sp 0 0 - - - - αnh2 + + + 0 0 0 R de Cys 0 0 0 0 - - R de yr 0 0 0 0 0 - Peptide + 0 - -- --- ---- phi = 3,5 3 8 10 11 13 αcooh 0 - - - - - -αnh2 + + 0 0 0 0 R de Cys 0 0 0 - - - R de rg + + + + 0 0 R de yr 0 0 0 0 0 - Peptide ++ + 0 - -- --- phi = 9 3

Question 2 : Etude d un mrn ( 8 points - : 5 mn, B : 5 mn, C : 10 mn) - Un DN codant la synthèse d une protéine P est isolé puis manipulé afin de déterminer par la méthode de Maxan et ilbert le séquençage d un morceau du gène codant pour cette protéine. Compléter le schéma suivant résumant la préparation du DN en vue du séquençage. *Orienter les brins de DN. DN Etape 1 4 polynucléotide kinase Que réalise-t-on à l étape 1? On phosphoryle les extrémités 5 OH avec 32P Etape 2 Que réalise-t-on à l étape 2? On hydrolyse le DN Comment appelle-t-on l agent permettant ce résultat? Une enzyme de restriction Que peut-on préciser? Hydrolyse avec formation de bouts collants + Etape 3 Citer une technique simple permettant cette purification en une seule manipulation : Centrifugation en gradient de densité en présence de Chlorure de césium Etape 4 Citer une technique simple permettant cette séparation : Chauffage pour séparer les deux brins (casse les liaisons hydrogène entre les bases et C) et refroidissement brutal «trempage» du DN

B Séquençage du DN : Cocher (X) les bonnes réponses ou étapes représentatives de la méthode de séquençage de Maxam et ilbert. Les classer (N ) suivant la chronologie de la manipulation (Une réponse erronée annule une bonne réponse) N X Méthode de coupures enzymatiques Nécessité d utiliser une amorce en 3 Méthode de synthèses enzymatiques 3 X 2 échantillons sont utilisés pour couper les bases puriques et deux autres les bases pyrimidiques La séparation des DN s effectue par électrophorèse sur gel polyacrylamide en présence de SDS 2 X Utilisation de monobrin de DN marqués radioactif en 5 OH Nécessité d utiliser une amorce en 5 Utilisation de monobrin de DN non marqués radioactif 6 X Les résultats ci-dessous montre l autoradiographie du gel Utilisation de monobrin de DN marqués radioactif en 3 OH 4 X Les échantillons de DN sont séparés par électrophorèse sur gel polyacrylamide Les échantillons de DN sont séparés par chromatographie échangeuse d ions Le gel polyacrylamide est un tamis moléculaire séparant les DN en fonction de leur charge 5 X Le gel polyacrylamide est un tamis moléculaire séparant les DN en fonction de leur taille Les résultats du gel ci-dessous montre les acides nucléiques colorés par du bleu de Coomassie 1 X Méthode de coupures chimiques Les résultats du gel ci-dessous montre les acides nucléiques colorés par le bromure d éthidium La synthèse de DN nécessite une DN polymérase, du Mg++ et des dxp et des ddxp 1.2 C Résultats : Compléter les résultats ci-dessous et donner la séquence du monobrin de DN. + - Résultat du gel de séquençage par Méthode de Maxam et ilbert Sens de migration? Bases Pyrimidiques bases Puriques C C/ / 5 C Sens de lecture? 5.8