Test en Cuve LCK 554 DBO 5

Documents pareils
pka D UN INDICATEUR COLORE

AGREGATION DE BIOCHIMIE GENIE BIOLOGIQUE

GUIDE D ENTRETIEN DE VOTRE SPA A L OXYGENE ACTIF

LABORATOIRES DE CHIMIE Techniques de dosage

(aq) sont colorées et donnent à la solution cette teinte violette, assimilable au magenta.»

Comment suivre l évolution d une transformation chimique? + S 2 O 8 = I SO 4

SUIVI CINETIQUE PAR SPECTROPHOTOMETRIE (CORRECTION)

DETERMINATION DE LA CONCENTRATION D UNE SOLUTION COLOREE

259 VOLUMETRIE ET TITRATION DOSAGE DU NaOH DANS LE DESTOP

TP n 1: Initiation au laboratoire

TRAVAUX PRATIQUESDE BIOCHIMIE L1

33-Dosage des composés phénoliques

CODEX ŒNOLOGIQUE INTERNATIONAL. SUCRE DE RAISIN (MOUTS DE RAISIN CONCENTRES RECTIFIES) (Oeno 47/2000, Oeno 419A-2011, Oeno 419B-2012)

TP : Suivi d'une réaction par spectrophotométrie

Spectrophotométrie - Dilution 1 Dilution et facteur de dilution. 1.1 Mode opératoire :

β-galactosidase A.2.1) à 37 C, en tampon phosphate de sodium 0,1 mol/l ph 7 plus 2-mercaptoéthanol 1 mmol/l et MgCl 2 1 mmol/l (tampon P)

1.2. REALISATION DES OPERATIONS DE PRELEVEMENTS ET D ANALYSES

Chapitre 7 Les solutions colorées

FICHE DE DONNEES DE SECURITE

Puissant et écologique à la fois

4. Conditionnement et conservation de l échantillon

Décrets, arrêtés, circulaires

Burette TITRONIC Titrateurs TitroLine

Peroxyacide pour l'hygiène dans les industries agroalimentaires

Demande chimique en oxygène

CHROMATOGRAPHIE SUR COUCHE MINCE

Démarrage d une station de traitement biologique par nitrification/dénitrification Sans apport initial de boue activée

AGRÉGATION DE SCIENCES DE LA VIE - SCIENCES DE LA TERRE ET DE L UNIVERS

KIT ELISA dosage immunologique anti-bsa REF : ELISA A RECEPTION DU COLIS : Vérifier la composition du colis indiquée ci-dessous en pages 1 et 2

Isolement automatisé d ADN génomique à partir de culots de cellules sanguines à l aide de l appareil Tecan Freedom EVO -HSM Workstation

C2 - DOSAGE ACIDE FAIBLE - BASE FORTE

Indicateur d'unité Voyant Marche/Arrêt

Mallette Métrologie Contrôle des spectrophotomètres

TEST ELISA (ENZYME-LINKED IMMUNOSORBENT ASSEY)

PROPOSITION TECHNIQUE ET FINANCIERE

La spectrophotométrie

TP 3 diffusion à travers une membrane

Les rôles de l oxygène en phase post fermentaire

EXERCICE II. SYNTHÈSE D UN ANESTHÉSIQUE : LA BENZOCAÏNE (9 points)

PREPARATION (NETTOYAGE, DESINFECTION ET STERILISATION) D AIGUILLES MEDICALES, DE RACCORDS, DE ROBINETS ET D AIGUILLES CHIRURGICALES A SUTURE UNIMED

TITRONIC et TitroLine. Les nouveaux titrateurs et burettes

Catalogue. Analyse de l eau en laboratoire Instruments photométriques et électrochimiques, réactifs et services

DÉTERMINATION DU POURCENTAGE EN ACIDE D UN VINAIGRE. Sommaire

Matériel de laboratoire

DOC AUG05 DR 2800

BAC BLANC SCIENCES PHYSIQUES. Durée : 3 heures 30

Chapitre 02. La lumière des étoiles. Exercices :

LE SPECTRE D ABSORPTION DES PIGMENTS CHLOROPHYLLIENS

Sérodiagnostic de la polyarthrite rhumatoïde

Dosage des sucres par CLHP dans les vins (Oeno 23/2003)

CONSTRUCTION DES COMPETENCES DU SOCLE COMMUN CONTRIBUTION DES SCIENCES PHYSIQUES

Les piscines à usage collectif Règles sanitaires. à usage collectif

Détermination de la teneur des vins en fluorures a l aide d une électrode sélective et ajouts dosés (Résolution Oeno 22/2004)

Mesure DBO/de la diminution d oxygène. La demande biochimique en oxygène (DBO) Respiration/Réduction

Détermination des métaux : méthode par spectrométrie de masse à source ionisante au plasma d argon

Exemple de cahier de laboratoire : cas du sujet 2014

Biologie Appliquée. Dosages Immunologiques TD9 Mai Stéphanie Sigaut INSERM U1141

COMPOSANTS DE LA MACHINE

Exemple du SATESE MAGE 42

MÉTHODE DE DÉSEMBOUAGE DE CIRCUITS DE CHAUFFAGE

FICHE 1 Fiche à destination des enseignants

Utilisation du logiciel ImageJ gratuit

Notes. Schéma général PRODUCTION ÉLECTROLYTIQUE Composés inorganiques, nonmétaux

TECHNIQUES: Principes de la chromatographie

GASMAN II MANUEL D UTILISATION

Une solution parfaitement adaptée

Dosage de l'azote ammoniacal

Produits pour hygiène en cuisine nettoyage de bâtiments détergents pour textiles

ACIDES BASES. Chap.5 SPIESS

Traitement de l eau par flux dynamique

Manuel SAFE-O-TRONIC access Identification électronique et système de verrouillage par NIP Item No

RAPID Salmonella/Gélose

Vitesse d une réaction chimique

EXTRAIT DU REGISTRE DES ARRETES DU PRESIDENT DE LA COMMUNAUTE URBAINE DE LYON

TPG 12 - Spectrophotométrie

EXERCICE 2 : SUIVI CINETIQUE D UNE TRANSFORMATION PAR SPECTROPHOTOMETRIE (6 points)

Tous les produits de la gamme SAF offrent des résistances :

Rapport annuel de monitoring automatisé de la qualité de l eau

MODE OPERATOIRE NORMALISE : Date d application :

Chapitre 11 Bilans thermiques

Test d immunofluorescence (IF)

PICT DOSAGE DES ANTICOAGULANTS 1. PEFAKIT PICT. Dosage chronométrique. PEFAKIT PiCT. PEFAKIT PiCT Calibrateur HNF. PEFAKIT PiCT Contrôles HNF

PH Moins 1. IDENTIFICATION DE LA SUBSTANCE/DU MÉLANGE ET DE LA SOCIÉTÉ/ENTREPRISE. Postbus ZG Herpen Pays-Bas +31 (0)

SEQUENÇAGE LI-COR DNA 4200

FiveGo. FiveGo Appareils portables ph mv / Redox Conductivité TDS Teneur en sel Oxygène dissous. Economique & fiable L accès mobile au monde du ph

CONCASSAGE, CRIBLAGE DE MATERIAUX : ENREGISTREMENT ICPE, ARRETE DE PRESCRIPTIONS GENERALES ICPE L essentiel

ALARME DOMESTIQUE FILAIRE

Nettoyage des pièces métalliques

Calcaire ou eau agressive en AEP : comment y remédier?

MC1-F

SVE 222 & PCL-442. Fascicule de Travaux Pratiques

INSCRIPTION, CLASSEMENT ET EMBALLAGE. Communication de l expert de l Afrique du Sud

10. Instruments optiques et Microscopes Photomètre/Cuve

ELISA PeliClass human IgG subclass kit REF M1551

LE RÉFRIGÉRATEUR PRÊT À INSTALLER

Oxydation par voie Humide : Expérience de Toulouse

Liquides oraux : et suspensions. Préparations liquides pour usage oral. Solutions

Étape 1 : Balancer la chimie de l'eau

LAVAGE

THEME 2. LE SPORT CHAP 1. MESURER LA MATIERE: LA MOLE

Transcription:

Test en Cuve Principe Détermination de la demande biochimique en oxygène sur 5 jours, avec inhibition de la nitrification sous l effet de 5 mg/l de thio-urée allylique. La détermination de l oxygène dissous est effectuée dans une solution alcaline à l aide d un dérivé de pyrocatéchine en présence de Fe 2+, ce qui provoque un dégagement coloré rouge. Domaine d application Eau de surface, eaux résiduelles faiblement chargées en provenance de stations d épuration communales ou industrielles avec étape de nettoyage biologique sans ensemencement supplémentaire Stabilité Les réactifs sont stables à des températures comprises entre +2 et +8 C, jusqu à la date limite indiquée sur l emballage. Perturbations Les peroxydes, les puissants oxydants, les fortes concentrations de chlore ainsi que les puissants réducteurs entraînent des résultats supérieurs ou inférieurs et perturbent l oxydation biochimique durant 5 jours. Le nitrite (NO 2 ) et le fer (Fe 2+ ) peuvent perturber la réaction à partir de 1 mg/l dans l échantillon originel. La teneur en DCO de cet échantillon ne doit pas dépasser 25 mg/l, ou 50 mg/l dans la solution à 1 : 2. Les échantillons fortement chargés en particules perturbent la détermination. Si nécessaire, pratiquer l analyse à partir de résidus homogénéisés et ensuite décantés. Ce procédé d analyse ne peut être utilisé pour les échantillons conservés ou congelés qu en combinaison avec l application (procédé simplifié d inoculation). Les résultat des mesures sont à vérifier au moyen d un contrôle de plausibilité (dilution et/ou addition de l échantillon d eau). Possible par détermination multiple pour le. Remarque importante Les eaux de surface qui ne contiennent aucune fraction d eaux résiduaires communales sont inoculées avant l analyse par un procédé simplifié (voir application). Veiller particulièrement à jeter les pipettes de transfert après usage. Les béchers doivent être lavés soigneusement à l eau très chaude et les éventuelles taches doivent être traitées avec un nettoyant approprié. Conseils de sécurité Lors des analyses, ne travailler, pour des raisons de qualité et de sécurité, qu avec des accessoires HACH LANGE d origine. CADAS 100 (LPG 186 / LPG 210) Dans le cas où le test ne serait pas encore mémorisé dans votre appareil, consulter svp les instructions de programmation disponibles auprès du responsable HACH LANGE de votre pays. F Solutions aux perturbations Les échantillons contenant des algues doivent être filtrés avant l analyse (filtre de 1,2 µm, set de filtres à diaphragme LCW 904 Rincer les filtres une fois à l eau distillée avant usage, afin d éviter les résultats supérieurs). ph/température La valeur du ph de l échantillon d eau doit se situer entre 4 et 10. La température de l échantillon d eau et de l eau de dilution doit être comprise entre 18 et 24 C. AF 554 G / Druckfarbe schwarz / 1

Mode opératoire I Valable pour tous les types de photomètre Table de données Préparation d échantillon Veuillez vous conformer aux instructions reprises au point: Remarque importante. 1. Echantillon originel Placer l axe de l agitateur magnétique dans un bécher de 100 ml. Pipetter dans le même bécher. Echantillon d eau usée 40 ml Mettre le bécher sur l agitateur magnétique et agiter durant 5 min à 500 750 tours/min, afin d oxygéner l échantillon. 2. Echantillon dilué Placer l axe de l agitateur magnétique dans un bécher de 100 ml. Pipetter dans le même bécher. Echantillon d eau usée 20 ml Eau potable non chlorée 20 ml Mettre le bécher sur l agitateur magnétique et agiter durant 5 min à 500 750 tours/min, afin d oxygéner l échantillon. Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Il faut deux cuves d analyse par l échantillon d eau usée. La cuve d analyse 1 est analysée immédiatement, la cuve d analyse 2 après 5 jours. par example A1 = mesure directe A5 = mesure après 5 jours Les deux cuves d analyse sont remplies à ras bord, l une après l autre et à l aide d une pipette de transfert, d échantillon d eau usée préparé. La cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours) est immédiatement fermée en évitant l apparition de bulles d air, pour être ensuite placée durant 5 jours dans une thermostat tempéré ou un exsiccateur thermostatique LT 20, à 20 C et à l abri de la lumière. LP2W 98/04 F 1 = 0 F 2 = 10.41 K = 0 CADAS 30/30S/50/50S 98/04 λ: 620 nm Pro.: 1 F 1 = 0 F 2 = 9.858 K = 0 ISIS 6000/9000 98/04 λ: 610 nm Pro.: 1 F 1 = 0 F 2 = 8.014 K = 0 CADAS 100 / LPG 186 98/04 λ: 620 nm F 1 = 9.63 F 2 = 0 CADAS 100 / LPG 210 98/04 λ: 620 nm F 1 = 9.63 K = 0 Mode opératoire II Valable pour tous les types de photomètre Mode opératoire: directe et après 5 jours Edition 99/02 1. Cuve d analyse1 (mesure directe) [voir les schémas A I] Poser un entonnoir sur la cuve d analyse 1 remplie. Ôter soigneusement la feuille d aluminium du DosiCap Zip et verser lentement le contenu (comprimés de réactif et perles de verre) dans la cuve d analyse 1 par l entonnoir. Enlever l entonnoir et fermer immédiatement la cuve d analyse 1 avec le DosiCap Zip en évitant la formation de bulles d air. Attention! Si le ménisque de niveau du liquide se trouve sous l ouverture de la cuve une fois l entonnoir retiré il est possible de corriger le volume manquant en ajoutant à la cuve 2 à 4 perles de verre. Agiter la cuve d analyse 1 à plusieurs reprises durant 3 min, jusqu à ce que les comprimés de réactifs soient complètement dilués. 3 min plus tard, bien nettoyer l extérieur de la cuve et procéder immédiatement à l évaluation. Noter les résultats! 2. Cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours) [voir les schémas A I] Visser la cuve d analyse 2 mise en réserve pendant 5 jours et poser l entonnoir. Ôter soigneusement la feuille d aluminium du DosiCap Zip et verser lentement le contenu (comprimés de réactif et perles de verre) dans la cuve d analyse 2 par l entonnoir. Enlever l entonnoir et fermer immédiatement la cuve d analyse 2 avec le DosiCapZip en évitant la formation de bulles d air. Attention! Si le ménisque de niveau du liquide se trouve sous l ouverture de la cuve une fois l entonnoir retiré il est possible de corriger le volume manquant en ajoutant à la cuve 2 à 4 perles de verre. Agiter la cuve d analyse 2 à plusieurs reprises durant 3 min, jusqu à ce que les comprimés de réactifs soient complètement dilués. 3 min plus tard, bien nettoyer l extérieur de la cuve et procéder immédiatement à l évaluation. Noter les résultats! Application Valable pour tous les types de photomètre DBO Ausgabe Edition 99/02 98/04 5 Procédé d inoculation simplifié pour les eaux de surface à charge biologique très faible. Le procédé s applique aux eaux de surface qui ne contiennent aucune fraction d eaux résiduaires communales. Accesoires LZC 555 BioKit LZP 065 Eprouvettes de réaction avec fermeture Préparation de la dose d inoculation Doser dans l éprouvette de réaction 1 Matériau d inoculation (LZC 555) cuillère de dosage rase Solution tampon (LZC 555) 10 ml Mélanger vigoureusement et laisser décanter pendant 20 min. Ensuite, pipetter dans l éprouvette de réaction 2 Dépôt de l éprouvette de réaction 1 0.2 ml Eau de distribution sans chlore 10 ml puis mélanger. Mode opératoire I avec le Test en Cuve La cuve d analyse 1 est remplie d échantillon ou d échantillon dilué 1 : 2 et analysée en appliquant la procédure II (1. mesure directe). Dans la cuve d analyse 2, introduire 0.2 ml de dépôt prélevé à la pipette dans l éprouvette 2 puis remplir avec l échantillon ou l échantillon dilué 1 : 2 et évaluer après 5 jours en appliquant la procédure II (2. mesure après 5 jours). Calcul du -concentration: Soustraire 0.1 mg/l au résultat affiché.

LASA 1 / plus LASA 10 / 20 1. Appuyer sur la touche Mode et vérifier le numéro de contrôle du programme: : 40 2. Insérer le filtre de programme 623 nm. 3. Choisir le test avec la touche Mode. 4. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe). introduire la cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours). Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution 1. Appuyer sur une touche. 2. Vérifier le numéro de contrôle du programme: : 40 3. Choisir le test avec la touche ou. 4. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe). introduire la cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours). Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Affichage Gamme d. mes. DBO5 0.5 12 mg/l Paramètre Affichage Gamme d. mes. DBO5 0.5 12 mg/l LASA 30 LP2W 1. Insérer le filtre 605 nm. 2. Choisir le mode»dr. Lange«. 3. Choisir le numéro du test (voir ci-dessous). 4. Le numéro de contrôle doit être 2. 5. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe), appuyer sur la touche verte et appuyer sur la touche verte et Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Test-No. Gamme d. mes. 554 0.5 12 mg/l 1. Insérer le filtre de programme 620 nm. 2. Appuyer sur la touche Tests jusqu à ce qu apparaisse l affichage (voir ci-dessous). 3. Le numéro de contrôle doit être 6. 4. Introduire la cuve pour solution zéro (valeur à blanc avec de l eau distillée) et appuyer sur la touche Null (zéro). 5. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe) et appuyer sur la touche Ergebnis (résultat). introduire la cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours) et appuyer sur la touche Ergebnis (résultat). Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Affichage Gamme d. mes. DBO5 0.5 12 mg/l AF 554 G / Druckfarbe schwarz / 2

Photomètre avec Barcode-System CADAS 200Basis, ISIS 6000 Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe). introduire la cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours). Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Gamme d. mes. 0.5 12 mg/l 1. Vérifier le numéro de contrôle du programme: : 40 (CADAS 200) : 40 (ISIS 6000) Choisir le mode»test EN CUVE«. 2. Choisir le numéro du test (voir ci-dessous). 3. Le numéro de contrôle doit être 2. 4. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe), appuyer sur la touche verte et appuyer sur la touche verte et Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Test-No. Gamme d. mes. 554 0.5 12 mg/l CADAS 100 (LPG 186) / ( LPG 210) DR 1900 1. Choisir le mode»test«. 2. Choisir le symbole (voir ci-dessous). 3. Vérifier les facteurs et la longueur d onde de mesure en mémoire Mem (LPG 186) ou le numéro de contrôle doit être 8 (LPG 210). 4. Introduire la cuve pour solution zéro (valeur à blanc avec de l eau distillée) et appuyer sur la touche NULL (zéro). 5. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe), appuyer sur la touche MESS (mesure) et appuyer sur la touche MESS (mesure) et Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution 1. Choisir»Progr. code barre«. 2. Choisir le numéro du test (voir ci-dessous). 3. Le numéro de contrôle doit être 2. 4. Introduire la cuve d analyse 1 (mesure directe), appuyer sur»mesurer«et appuyer sur»mesurer«et Calcul du -concentration A1 - A5 = mg/l Lors du calcul de la teneur en, tenir compte du facteur dilution Paramètre Test-No. Gamme d. mes. 554 0.5 12 mg/l Paramètre Symbole Gamme d. mes. 554 0.5 12 mg/l

Tableau de resultats Remarque importante: Gamme de mesure pour l échantillons, non dilués: 0.5-6.0 mg/l Gamme de mesure pour l échantillons, dilués: 1.0-12.0 mg/l No. Date Echantillon et dilution Résultat A1 Mesure directe Résultat A5 Mesure après 5 jours Résultat (mg/l) A1 - A5 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20

Mode opératoire Valable pour tous les types de photomètre Test en Cuve Cuve d analyse 1 (mesure directe) ou Cuve d analyse 2 (mesure après 5 jours). Visser la cuve. Poser l entonnoir. Mode opératoire II directe et après 5 jours A C B Ôter soigneusement la feuille d aluminium! Refermer la cuve avec le DosiCap Zip. D Verser le contenu du DosiCap Zip dans la cuve par l entonnoir. E F 3 min Nettoyer l extérieur de la cuve et évaluer. Agiter la cuve pendant 3 min jusqu à dissolution complète des comprimés de réaction. 3 min G Attendre à nouveau 3 min. H 554 I AF 554 G / Druckfarbe schwarz / 2a