Mildiou de l Impatiens walleriana Noms communs Nom scientifi que Impatiens walleriana Plasmopara obducens Noms communs Angl. Busy lizzy, balsam, impatiens Downy mildew (DM) Allemagne Fleißige Lieschen Falscher Mehltau France Impatience Mildiou Pays-Bas Vlijtig liesje Valse meeldauw Espagne - Mildiu Classification scientifque Classifi cation scientifi que Culture Pathogènes Règne Plantae Chromista (Chromalveolata) Division Magnoliophyta Oomycota Classe Magnoliopsida Oomycetes Ordre Geraniales Peronosporales Famille Balsaminaceae Peronosporaceae Genre Impatiens Plasmopara Espèce Impatiens walleriana Plasmopara obducens Symptômes Les feuilles commencent à jaunir et se recourbent vers le bas (d où le nom de Downy Mildew en anglais, Down=en bas), les plantes peuvent être chétives. Des touffes blanches de sporangiophores (structures contenant des spores) se développent sous les feuilles, à la différence de l oïdium pour lequel des hyphae blanches sont visibles sur la face supérieure de la feuille. Si l attaque est importante, la fl oraison et la production de graines s arrêtent, les plantes perdent leurs feuilles et peuvent mourir. Les plantes peuvent avoir une infection latente sans présenter de symptômes, la maladie se développera en cas de stress. Même si les mildious ressemblent à des champignons, ils n en sont pas. Ils ont leur propre règne, les Chromista tout comme les plantes appartiennent aux Plantae (fig 1.). Ainsi, les mildious répondent différemment aux fongicides. En cas d attaque, des traitements spécifiques doivent être appliqués (voir Contrôle). Origine et fréquence Les Impatiens walleriana sont originaires des forêts de haute altitude de Tanzanie et du Mozambique. Le mildiou de l impatiens est présent sur les espèces sauvages (i.e. I. capensis / bifl ora; I. pallida; I. nonli-tangere) en Russie et en Europe et les premières publications apparaissent aux Etats-Unis en 1942. On peut maintenant le trouver dans le monde entier. L Impatiens hawkeri (New Guinea Impatiens de Nouvelle Guinée) n est pas infectée par le Plasmopara obducens. a. b.
Fig 2. Les Photos a et b montrent une plante infectée avec le symptôme caractéristique de feuilles recourbées, jaunissantes et la formation de spores blanches portant des sporangiophores sous la feuille. Les photos c et d montrent un sporangiophore sous microscope. A noter la forme caractéristique des tiges auxquelles sont attachés les sporangiophores (sur la photo on observe un sporangiophore détaché). Les sporangiophores vont germer et libérer des zoospores qui peuvent nager jusqu à la plante hôte (voir aussi le cycle de reproduction de la maladie). Soucre : EPPO Gallery. c. d. Cycle de reproduction et épidémiologie Fig 3. Le cycle de reproduction du mildiou (adapté de Plant Pathology, 5ème édition par G.N. Agrios, Elsevier Academic Press). Les feuilles infectées produisent des sporangiophores (à droite) qui portent des sporanges. Lorsque l humidité relative est forte sur les plantes, les plantes sont mouillées, les sporanges produisent des zoospores qui peuvent nager jusqu à la plante hôte et l infecter. Ce cycle se répète plusieurs fois pendant la période de culture, il produit de nombreuses spores et c est la source principale d infection en période de culture. La période sexuée (à gauche) se caractérise par la formation d oospores qui peuvent survivre longtemps dans les tissus de la plante et dans le sol. En conditions favorables, les oospores germent et produisent un sporangium qui, comme dans le cycle végétatif, produit des zoospores qui infectent les tissus de la plante. Tous les zoospores ont besoin d eau libre ou d une humidité relative élevée pour assurer leur dispersion. En plus des zoospores, le mycelium peut aussi survivre dans les tissus de la plante (déchets végétaux) et c est aussi une source d inoculum et d infection.
Sources d infection Etat sanitaire de la serre : mauvaise désinfection/ nettoyage pendant et entre les cycles de production Abords de la serre : présence de plantes hôtes infectées, d hôtes autour des serres (mauvaises herbes/sociétés voisines/zone urbaine). Substrat et sol : les oospores (spores dormantes) peuvent survivre plusieurs années dans le sol Débris végétaux : le mycelium peut survivre dans les débris végétaux et le substrat Matériel : désinfecter les pots, couteaux, gants avant et après usage Utiliser du matériel de départ sain : plante mère (on peut avoir une infection latente sans symptômes) Introduction de nouveau matériel dans la serre : ils peuvent porter une infection latente Plantes infectées : même si cela semble évident, une seule feuille infectée peut porter de nombreuses spores qui peuvent se propager dans toute la culture. Facteurs influençant la dissémination Le climat : une forte humidité relative ainsi que le vent (le vent produit en traitant les plantes avec des produits chimiques peut aussi accélérer la dissémination) Les insectes et les animaux Les gens : en touchant les plantes L arrosage par au dessus et l eau coulant des pots peuvent assurer la dispersion des zoospores. Risques sanitaires Transport de plantes infectées sur d autres sites Perte complète de la production Apparition de nouvelles souches résistantes aux produits chimiques Contrôle Prévention : le meilleur contrôle du mildiou est de commencer propre et de finir propre! Commencer avec une serre propre et désinfectée (pas de débris végétaux) Utiliser un substrat et des contenants désinfectés (pots, couteaux ) Utiliser un matériel végétal de départ sans mildiou Vérifier toute présence de mildiou sur les végétaux nouveaux entrant dans les serres Enlever les plantes hôtes aux abords de la serre et dans la serre Enlever les débris végétaux et détruisez les correctement (ne pas en faire du compost!) Maintenir une humidité relative faible et réduire au maximum la présence d eau sur le feuillage pendant la culture car les zoospores ont besoin d eau pour se déplacer et infecter de nouvelles plantes. L arrosage par aspersion doit être évité et il faut faire très attention lorsqu on pulvérise des produits chimiques (le vent disperse les spores) En cas d infection : Supprimer et détruire les plantes infectées et celles qui les entourent le plus vite possible pour empêcher la dissémination. Désinfecter la zone touchée. Pour la procédure complète voir Comment agir Traitements chimiques -Ortiva Gold + Daconil Fix 500 (mix) -Folio Gold Pour beaucoup de fongicides, des résistances ont été identifiées sur plusieurs espèces de mildiou. Il est important d alterner les produits de famille chimique et de mode d action. La résistance aux produits chimiques se développe rapidement, la destruction des plantes touchées et la priorité numéro 1.
Méthode de test Cette méthode peut être utilisée pour mettre en évidence des infections latentes. C est une méthode simple et sûre qui peut être utilisée n importe où. Matériel nécessaire : Une boîte de pétri propre ou autre contenant. Un papier filtre ou un papier absorbant. De l eau. Des feuilles d impatiens. Méthode : Tout contenant propre pouvant être fermé peut être utilisé (boîte tupperware..) Mettre un papier filtre ou un papier absorbant au font du contenant Humidifier le papier, enlever l excès d eau Placer les feuilles d Impatiens sur le papier humide, la face supérieure au dessus Fermer le contenant pour maintenir une atmosphère humide Placer le contenant loin de la lumière directe du soleil, plutôt dans le noir. Surveiller les échantillons tous les jours, les symptômes (poudre blanche sous la feuille) sont surtout visibles après 1-3 jours mais devraient être visibles sous 7 jours Remarques : Les infections de Mildiou peuvent être latentes dans les plantes (sans symptômes). Lorsque la plante est stressée, les symptômes apparaissent. Lorsque vous prélevez un échantillon, certaines parties de la plante peuvent être touchées, d autres non. Souvent les symptômes sont visibles sur les jeunes feuilles (elles jaunissent et se recourbent). L utilisation de fongicides systémiques peut empêcher la sporulation (formation de poudre blanche) à la fois dans la plante et sur les feuilles détachées, dans le cadre de la méthode cidessus, alors que la maladie est toujours présente. Il est donc important de prélever régulièrement des échantillons et de ne jamais oublier qu avec l utilisation de fongicides, aucun symptômes n est visible. Cette méthode peut être améliorée (température, quelles feuilles sont prélevées, combien). N hésitez pas à améliorer la méthode. Comment agir La meilleure chose à faire est de commencer dans un environnement sain et propre avec du matériel végétal sain et de maintenir ces conditions pendant toute la culture. Un bon état sanitaire et une surveillance pendant la culture sont deux éléments cruciaux. Si une infection a lieu, le matériel de base devra être détruit car une lutte chimique n est jamais à 100% efficace. Les éléments infectants restant dans les débris végétaux sont une importante source de contamination, et lorsqu on utilise des traitements phytosanitaires, les risques de développer des souches résistantes sont importants. Souvenez vous qu en utilisant des traitements chimiques, l infection peut devenir latente (sans symptômes) et peut provoquer de mauvaises surprises plus tard. Symptômes suspects: Surveiller régulièrement les cultures Enlever les plantes suspectes de la culture et maintenir la zone en quarantaine (si la zone est infectée, les spores peuvent se développer en 2 jours et infecter rapidement les plantes) Prendre des échantillons de feuilles et réaliser un test mildiou Si contamination, détruisez les plantes touchées Commencer un traitement préventif/curatif pour les plantes non touchées Minimiser le stress pour les plantes le plus possible pour éviter un développement des symptômes Fig. 4 Une boîte de petri avec une feuille d Impatiens. Normalement la boîte est posée à plat, ici la boîte est verticale pour montrer l humidité et la condensation Infection trouvée : Surveiller les cultures encore plus régulièrement Enlever et détruire les plantes touchées et les plantes proches (elles peuvent être infectées sans présenter encore les symptômes) Commencer un traitement préventif/curatif pour les plantes non touchées Minimiser le stress pour les plantes autant que vous le pouvez
Bibliographie CSL Pest Risk Analysis for Plasmopara obducens. http://www.defra.gov.uk/planth/pra/pobducens.pdf Distribution map of Plasmopara obducens (2007). CABI publishing. http://www.cababstractsplus.org/dmpd/reviews.asp? action=display&openmenu=relateditems&reviewid=29 397&Year=2007# EPPO Gallery with Plasmopara obducens photo s. http://photos.eppo.org/index.php/album/125- plasmopara-obducens-plasob- HDC Factsheet 05/04 Impatiens. Horticultural Development Council, Kent UK. http://www.hdc.org.uk/ Plant pathology, 5th edition (2005). G.N. Agrios. Academic Press. Schimmelcompendium voor de Nederlandse akkeren tuinbouw [Fungi Compendium for the Dutch agriand horticulture] (2009), Syngenta Crop Protection. Notes Attention: Les informations contenues dans ce document vous sont proposées à titre de service. Tout conseil doit être considéré comme un conseil et n est pas forcément adapté à toutes les situations. Toute action prise suite à ce document peut être influencée par les conditions locales. Les informations proposées le sont par rapport à des documents disponibles dans le domaine public. Syngenta ne peut être tenu pour responsable pour tout problème suite à l utilisation des conseils donnés dans ce document. Pour plus d informations, Syngenta vous recommande de contacter le service de phytopathologie le plus proche de chez vous.