«Synergie entre les complexes de transcription et de maturation des ARN messagers»

rticle «Synergie entre les complexes de transcription et de maturation des RN messagers» mélie Parent et Martin Bisaillon M/S : médecine sciences, vol. 22, n 6-7, 2006, p. 626-632. Pour citer cet article, utiliser l'information suivante : RI: http://id.erudit.org/iderudit/013504ar Note : les règles d'écriture des références bibliographiques peuvent varier selon les différents domaines du savoir. Ce document est protégé par la loi sur le droit d'auteur. L'utilisation des services d'érudit (y compris la reproduction) est assujettie à sa politique d'utilisation que vous pouvez consulter à l'ri https://apropos.erudit.org/fr/usagers/politique-dutilisation/ Érudit est un consortium interuniversitaire sans but lucratif composé de l'niversité de Montréal, l'niversité Laval et l'niversité du Québec à Montréal. Il a pour mission la promotion et la valorisation de la recherche. Érudit offre des services d'édition numérique de documents scientifiques depuis 1998. Pour communiquer avec les responsables d'érudit : info@erudit.org Document téléchargé le 11 January 2016 06:43

MEDECINE/SCIENCES 2006 ; 22 : 626-32 > Chez les eucaryotes, les RN messagers (RNm) subissent de nombreuses modifications co-transcriptionnelles qui conduisent à leur maturation avant d être transportés dans le cytoplasme pour être traduits efficacement en différentes protéines. Parmi ces modifications, on trouve l ajout d une structure coiffe à l extrémité 5 des RNm, l épissage des séquences non codantes (introns) et la synthèse d une queue de polyadénosines à l extrémité 3. Malgré les découvertes distinctes de ces processus, il a été démontré qu il existe une coopérativité entre ces différentes étapes de maturation et de transcription. Chacune de celles-ci mobilise de nombreux facteurs protéiques qui englobent un vaste réseau d interactions. De par ses contributions considérables avec les multiples complexes de maturation, le domaine carboxyterminal de l RN polymérase II fait partie intégrante de ce réseau d interactions. Le niveau de complexité de ces interactions demeure toutefois important. De ce fait, de nouveaux liens intermoléculaires seront sans doute mis en évidence dans un avenir rapproché. < Chez les eucaryotes, les RN pré-messagers (RN pré-m) transcrits par l RN polymérase II (RN pol II) subissent plusieurs modifications co-transcriptionnelles avant d être transportés sous forme mature (RN messager [RNm]) dans le cytoplasme pour y être traduits efficacement en différentes protéines. Chacune de ces modifications met en jeu de nombreux facteurs protéiques qui agissent au sein d un vaste réseau d interactions. On trouve, tout d abord, l ajout d une structure coiffe à l extrémité 5 des RNm, l épissage des séquences non codantes (introns) et la synthèse d une queue de polyadénosines (queue de poly[]) à l extrémité 3. Bien que chacune de ces étapes puisse être étudiée de façon indépendante, les données actuelles démontrent clairement que les modifications auxquelles elles conduisent sont fortement interconnectées et qu elles influencent les fonctions particulières et l efficacité de chacune d elles. Puisque ces processus de modification ont lieu de façon coordonnée Synergie entre les complexes de transcription et de maturation des RN messagers mélie Parent, Martin Bisaillon avec la transcription, l RN polymérase II (RN pol II) joue également un rôle clé dans la régulation de ces événements. Maturation de l RNm Synthèse de la structure coiffe La maturation des RN pré-m est un événement qui joue un rôle critique dans l expression des gènes eucaryotes. Elle débute tout d abord par l ajout d une structure coiffe, m7 pppn-, à l extrémité 5 des acides ribonucléiques néosynthétisés. La coiffe est constituée d un résidu guanosine méthylé en position N7 qui est relié au premier nucléotide retrouvé en 5 de l RNm via une liaison 5-5 triphosphate (Figure 1) [1]. Mentionnons que chez les eucaryotes, les nucléotides adjacents à la coiffe ( m7 pppnpn-) peuvent également être méthylés à hauteur de la position 2 de leur groupement ribose. Ces structures sont alors désignées coiffe 0 ( m7 pppnpn-), coiffe 1 ( m7 ppp m2 NpN-) ou coiffe 2 ( m7 ppp m2 Np m2 N-) selon le nombre de nucléotides méthylés [2]. Bien que le rôle spécifique de ces méthylations sur les nucléotides adjacents à la coiffe demeure inconnu, certaines informations suggèrent que leur présence pourrait accroître la liaison des ribopolymères aux ribosomes [2]. rticle reçu le 1 er octobre 2005, accepté le 16 février 2006. Département de Biochimie, Faculté de Médecine, niversité de Sherbrooke, 3001, 12 e venue Nord, Sherbrooke, Québec, J1H 5N4 Canada. martin.bisaillon@usherbrooke.ca 626

La formation de la structure coiffe est catalysée par une succession de trois réactions enzymatiques qui ont lieu dans le noyau cellulaire. Cellesci impliquent donc l action d une RN triphosphatase (RTase), d une RN guanylyltransférase (Tase) et d une RN (guanine-7)-méthyltransférase (MTase) (Figure 1B) [3, 4]. La coiffe est une structure fondamentale chez les eucaryotes où elle exerce un rôle critique dans le métabolisme de leur RNm. On la trouve en action dans le prolongement du temps de demi vie des RNm puisqu elle fait office de barrière aux exonucléases qui agissent dans la direction 5 ->3 [4-6]. L excision de séquences introniques (processus d épissage) est également facilitée par l intermédiaire du complexe CBP20- CBP80 (cap binding protein 20 et 80) lié à la structure coiffe qui permet le recrutement du complexe d épissage [5]. Notons que la liaison de l hétérodimère à la coiffe contribue également à créer un encombrement stérique important qui constitue un obstacle aux nucléases [4]. Il a été montré que ce même intermédiaire toujours lié à la coiffe participe au transport des RN matures du noyau vers le cytoplasme pour assurer leur traduction [4-6]. Enfin, la structure coiffe est d une importance cruciale pour la traduction des protéines. En effet, le facteur eif-4 E, un constituant important du complexe de traduction eif-4f, interagit avec le groupement méthyle du résidu guanosine de la coiffe. Cette interaction joue un rôle critique dans le recrutement des RNm aux ribosomes, favorisant de ce fait l amorce de la formation du complexe de traduction et une synthèse protéique efficace [4, 6-8]. Mécanisme d épissage Les transcrits d RN nouvellement synthétisés présentent des séquences codantes (exons) qui sont interrompues par de nombreuses séquences non codantes (introns). n processus général nommé épissage permet d éliminer ces dernières par la réalisation de deux étapes de trans-estérification. Les exons d une séquence codante peuvent ainsi se joindre entre eux pour donner naissance à un RN à maturité qui pourra être traduit en une protéine dont la fonction sera précise (Figure 2) [4, 9, 10]. Dans le cas de l épissage alternatif, la sélection de différentes combinaisons d exons (par l exclusion de certains exons en plus des introns) à partir d un même gène conduit à la formation de plusieurs profils d RNm bien spécifiques. Lors de la traduction, ces profils dicteront l apparition de différents isoformes protéiques dont la fonction leur sera propre. Il s agit donc d un moyen de régulation génétique important chez les eucaryotes en plus de contribuer à leur diversité protéomique [9]. Ces processus sont rendus possibles grâce à un complexe macromoléculaire nommé spliceosome dont l assemblage regroupe cinq sous-complexes. La création de ces souscomplexes fait appel à de petites ribonucléoprotéines nucléaires snrnp (, 2, 4, 5, 6) (small nuclear ribonucleoprotein) de même que de nombreuses protéines accessoires telles que SF1, 2F et les protéines de la famille SR (sérine/arginine-riches) (Figure 2B) [3, 4, 9]. insi, les nombreuses réorganisations qui ont lieu entre ces facteurs entraînent l apparition du complexe catalytique capable d excision intronique et de ligation exonique. Mécanisme de polyadénylation La dernière étape de la maturation des RN pré-m suppose une maturation de leur extrémité 3. Pour ce faire, un clivage endonucléolytique se produit à cette extrémité, laissant ensuite la place à l ajout d une queue de poly() (Figure 3B) REVES SYNTHÈSE Structure moléculaire de la coiffe Coiffe Synthèse nucléaire de la structure coiffe CH 3 O N + C N H 7 C 6 1 HC 5 8 9 RN triphosphatase 4 3 2 1 N C N C NH 2 O O O O P O P O P O 2HC CH O O Base-1 2 O - O - O - 1' 4' 4' 1' RN guanylyltransférase 2' 2' HO OH (étape réversible) 2 O O CH 3 O=P O CH uanosine Pont 2 méthylé triphosphate 5-5 O - O 4' 1' RN (guanine-7) 2' méthyltransférase 3 RNm O O CH 3 O=P O O - B P P P g b a P P P P P P P P P CH 3 P P P P P CH 3 20-30nt 20-30nt 20-30nt SM 20-30nt RN pré-m RN pré-m RN pré-m RN pré-m Figure 1. Synthèse de la structure coiffe.. Structure moléculaire de la coiffe. La structure coiffe est composée d un résidu guanosine méthylé en position N7 et lié via un pont 5-5 triphosphate au nucléotide situé à l extrémité 5 de l RNm. Dans le cytoplasme de certains eucaryotes, un groupement méthyle peut être ajouté à la position 2 des riboses trouvés dans les nucléotides adjacents à la coiffe. B. Synthèse nucléaire de la structure coiffe. Le phosphate-g trouvé à l extrémité 5 de l RN pré-m est initialement hydrolysé par l RN triphosphatase. Par la suite, l RN guanilyltransférase transforme une molécule de TP en MP pour ensuite la transférer à l extrémité diphosphorylée de l RN pré-m. Il y a alors formation d un pont 5-5 triphosphate. La synthèse de la coiffe se termine par la méthylation du résidu guanosine en position N7 par l RN (guanine-7) méthyltransférase via l intermédiaire du composé S-adénosyl-L-méthyonine (SM). 627

[4, 11,12]. Trois séquences regroupées sous l appellation de signal de polyadénylation dirigent l apparition de la queue de poly() (Figure 3) [4, 11, 13] ainsi qu un minimum de six facteurs polymériques qui doivent être recrutés dans le noyau : CPSF, CstF, CFI et CFII, l RN polymérase II (RN pol II) et la poly() polymérase (PP) [4, 11, 13]. Plusieurs rôles sont associés à la présence de ce segment d adénosines. Entre autres, il participe au transport de l RNm du noyau vers le cytoplasme tout comme la structure coiffe. Il contribue également à stabiliser l RNm en procurant une protection de l extrémité 3 contre une dégradation précoce par des nucléases. Enfin, l efficacité du démarrage de la traduction est également augmentée à la suite de l adoption d une conformation circulaire de l RNm par la présence de la queue poly() [11]. Interactions entre les processus de maturation de l RNm Certes, les processus de synthèse de la structure coiffe, d épissage et de polyadénylation ont été découverts isolé- Mécanisme général 2'OH (PY) n Site 100nt d'épissage en Trans-estérification 1 OH (PY) n Point Élément d'embranchement en d'épissage riche Site pyrimidine en + (PY) n Trans-estérification 2 B Coiffe Coiffe Mécanisme spécifique d'épissage Coiffe n Coiffe n 5 4 4 Complexe B 2 6 Coiffe 1 Complexe E 5 6 2 SF1 (PY)n 2 Pré-spliceosome 5 Complexe C 2 65 2F (Py)n 65 (Py)n 4 35 35 n 3 35 2 65 Complexe (PY)n 2F n n Réactions de Trans-estérification Figure 2. Épissage.. Mécanisme général. 1. L épissage est dirigé par des séquences consensus qui sont situées à la jonction exon/intron (site d épissage en 5 ) et à la jonction intron/exon (site d épissage en 3 ). u site d épissage en 5, on trouve la séquence R (barre verticale : site d épissage; nucléotides soulignés : séquence invariable; R : purine). n point d embranchement constitué d une séquence dont le résidu adénosine est hautement conservé : YNCRY (Y : pyrimidine ; N : nucléotide aléatoire) et qui est suivi d un élément riche en pyrimidine est présent environ 100 nucléotides avant le site d épissage en 3. Le site d épissage en 3 de l intron est caractérisé par le motif Y RNNN. 2. Le clivage de séquences non codantes est un processus nucléaire réalisé par deux étapes de trans-estérifications. insi, la liaison 3-5 phosphodiester du résidu guanosine présent au site d épissage en 5 subit une attaque nucléophile par le résidu adénosine hautement conservé trouvé au point d embranchement. Il y a alors formation d une interaction covalente entre ces deux nucléotides permettant à l intron d adopter la forme d un lasso. L extrémité 3 libre de l exon en amont de l intron à épisser réalise la deuxième trans-estérification par l attaque nucléophile de la liaison 3-5 phosphodiester du résidu guanosine au site d épissage en 3. Il y a alors détachement de l intron déjà sous forme de lasso et liaison entre les deux exons adjacents. B. Mécanisme spécifique. Les deux étapes de trans-estérification sont rendues possibles grâce à un complexe catalytique macromoléculaire nommé spliceosome. Le spliceosome est constitué de cinq petites ribonucléoprotéines nucléaires snrnp (small nuclear ribonucleoprotein). Chacune d elles est constituée d un petit RN nucléaire associé à plusieurs protéines pour former les snrnp, 2, 4, 5 et 6. De nombreuses protéines accessoires sont également présentes dans le spliceosome dont les protéines SF1 et le dimère 2F. La formation du spliceosome sous forme active doit préalablement se réaliser afin de permettre l excision intronique via les deux étapes de trans-estérification. Pour ce faire, un assemblage en cinq étapes est nécessaire. Il débute par la formation du complexe E où il y a appariement de au site d épissage en 5, de SF1 au résidu adénosine très conservé à hauteur du point d embranchement, de 2F-65 à l élément riche en pyrimidine et de 2F-35 au site d épissage en 3. Par la suite, le pré-spliceosome est formé par la délocalisation de SF1 après la liaison de 2 au point d embranchement. Cette association n inclut toutefois pas le résidu adénosine afin qu il soit disponible pour la première attaque nucléophile. Le complexe apparaît grâce à la réorganisation du pré-spliceosome qui implique la formation d interactions entre les facteurs, 2 et 2F. Cela contribue au rapprochement des exons favorisant leur éventuelle liaison. L arrivée du tri-snrnp 4/5/6 au sein des séquences consensus d épissage entraîne la formation du quatrième complexe, le complexe B. Sa présence permet de libérer le point d embranchement de même que le site d épissage en 3. Finalement, le complexe catalytique, ou complexe C, est formé par l association de 6 et 2 au site d épissage en 5 déclenchant le départ de et 4. Les étapes de trans-estérification peuvent alors avoir lieu. 628

ment, cependant des systèmes d analyses in vitro ont mis en évidence une synergie entre ces différentes étapes de maturation [4]. La première se manifeste par l interaction fonctionnelle entre la structure coiffe et l épissage de l intron qui lui est immédiatement adjacent. Cette interaction a lieu via le complexe protéique CBP20-CBP80 lié à la coiffe. L hétérodimère interagit avec les snrnp et 6 (Figure 2B) retrouvé au niveau de certains sous-complexes (complexe E et complexe C) du spliceosome, augmentant leur stabilité à l RN [4]. Ceci a pour conséquence d accentuer la rapidité de formation de ces complexes et, du coup, d accélérer le clivage de l intron. Toutes ces interactions ont un impact majeur sur l épissage de la totalité de l RN pré-m. En effet, il a été montré que l absence du complexe CBP80 d un extrait nucléaire cause une inhibition marquée de l excision de tous les introns des RN non matures. L efficacité de l épissage global est, de ce fait, fortement influencée par la présence de la coiffe [4] (Figure 4). Toutefois, il existe encore peu de données susceptibles d éclairer la relation entre la structure coiffe et le processus de maturation de l extrémité 3 de l RN pré-m. Malgré tout, on constate bien une association entre le complexe CBP20-CBP80 et certains facteurs participant au clivage endonucléolytique [14]. Cette affinité a pour objectif premier d augmenter l efficacité du clivage par la stabilisation de CPSF et de CstF à l RN. On retrouve toutefois une influence positive sur l élongation de la queue de poly() qui demeure modeste (Figure 4) [4, 14]. En effet, la délétion du complexe CBP20-CBP80 REVES Signal de polyadénylation Hexanucléotide Site de clivage Motif riche en ou / Coiffe C / 10-30nt 20-40nt B Mécanisme spécifique Complexe de clivage 73 Coiffe 100 77 50 / 30 160 64 PP Coiffe CFI CFII C 2 Clivage CPSF 1 3 Polyadénylation 73 100 160 30 PP PBII n SYNTHÈSE Coiffe CPSF 100 73 30 160 PP CFII CFI C / CstF 50 77 64 Figure 3. Polyadénylation.. Signal de polyadénylation. La formation de la queue de polyadénosines est dirigée par le signal de polyadénylation composé de trois séquences. On retrouve ainsi un hexanucléotide hautement conservé,, situé à 10-30 bases du site de clivage, un motif riche en ou en / (downstream element : DSE) positionné 20-40 bases en aval du site de clivage et le site de clivage, lui-même constitué du dinucléotide C. La position exacte de ce dernier site est déterminée par la distance existant entre l hexanucléotide et la séquence riche en ou en /. L étendue de la distance est également une indication de la longueur que peut atteindre la queue poly() pour chaque RNm. Celle-ci varie normalement de 200 à 300 résidus adénosines. B. Mécanisme spécifique. 1. fin de permettre une polyadénylation complète, un minimum de six facteurs polymériques doivent être recrutés dans le noyau. On retrouve tout d abord le facteur protéique CPSF (cleavage/polyadenylation specific factor) qui participe à la fois à la réaction de clivage et à celle de polyadénylation. Il est constitué de quatre sous-unités nommées selon leur poids moléculaire respectif : CPSF-160, CPSF-100, CPSF-73 et CPSF- 30. Le facteur CstF, constitué des sous-unités CstF-77, CstF-64 et CstF-50, est pour sa part engagé dans l activité de clivage sans que sa présence ne soit obligatoire lors de la polyadénylation. Les facteurs CFI et CFII (cleavage factors I and II) sont essentiels pour le processus de clivage puisqu ils possèdent chacun une activité endonucléolitique. L extrémité carboxyterminale (CTD) de l RN polymérase II (Pol II) fait également partie de la machinerie de polyadénylation. L enzyme responsable de la synthèse de la queue poly(), la poly() polymérase (PP), est généralement requise pour obtenir un complexe de clivage actif. Notons que son activité de polymérisation est strictement exclusive à l incorporation d adénosines sur n importe quel substrat d RN. Cependant, après le clivage du substrat, l élongation de la queue poly() peut avoir lieu mais seulement en présence du complexe protéique CPSF. Pour augmenter la vitesse d élongation tout en régulant la longueur de la queue poly(), la protéine de liaison à la queue poly(), PB II (poly()-binding protein II), interagit avec ce segment d adénosines. 2. Le processus de maturation nucléaire de l extrémité 3 de l RN pré-m débute par la formation du complexe de clivage. Pour ce faire, il y a liaison de CPSF et CstF à l hexanucléotide et à la séquence riche en ou en /. CFI et II sont ensuite recrutés au site de clivage. Le complexe est complété par la triple association de PP à CPSF, CstF et CFI. La coupure de l RN entraîne la dégradation éventuelle du produit de clivage en 3 par des exonucléases cellulaires de même que la libération des facteurs CstF, CFI et CFII. L activité de polyadénylation de PP débute alors très lentement à l extrémité 3 de l RN pré-m jusqu à l arrivée de PB II. insi, à chaque groupe de 10 résidus adénosines nouvellement synthétisés, PB II s y apparie, causant l accélération de la processivité de la polymérase. ne fois la longueur maximale de la queue poly() atteinte, l activité de PP ralentit et s arrête complètement avec la dissociation du complexe PP-CPSF. 629

a montré une faible diminution au niveau de l efficacité de l élongation de la queue de poly() sans en affecter les complexes de polyadénylation [14]. Enfin, il faut noter que la protéine PB I (poly()-binding protein I) associée à la queue de poly() peut interagir avec le polypeptide eif4, un composé important du complexe de traduction eif4f qui lie la structure coiffe. Cette interaction joue un rôle primordial dans la circularisation des RNm afin d accroître leur stabilité en protégeant leurs extrémités contre les exonucléases cellulaires. De plus, cette circularisation permet de stimuler la traduction des RNm en favorisant le recyclage rapide des ribosomes près du codon déclencheur de la traduction [15]. Les facteurs participant à l épissage et à la maturation de l extrémité 3 peuvent également avoir une influence positive l un par rapport à l autre. Dans un premier temps, le clivage d un intron situé immédiatement en amont du signal de polyadénylation augmentera l efficacité d excision et d ajout d une queue de poly() en raison de l apparition d interactions entre le spliceosome et le complexe de polyadénylation. Celles-ci seront reflétées principalement par l association entre les facteurs snrnp et CPSF [16]. Certaines observations laissent également croire que cette même ribonucléoprotéine aurait une affinité pour des séquences du site de polyadénylation. De plus, notons que PP peut contribuer à stimuler l épissage de ce même intron en stabilisant le facteur accessoire (2F- 65) associé au segment riche en pyrimidine du site d épissage (Figure 4) [16]. Relation existant entre la transcription et la maturation de l RNm Domaine carboxyterminal de l RN polymérase II La synthèse des RNm est réalisée uniquement par l RN pol II dont la grosse sous-unité (Rpb1) possède un domaine carboxyterminal (CTD) qui participe à la coordination des étapes nécessaires à la maturation des RN pré-m [17, 18]. Le CTD est composé de nombreuses répétitions de la séquence consensus YSPTSPS dont le nombre varie d un organisme à l autre (26 chez les levures et 52 chez les mammifères) [1, 4, 17]. Par ailleurs, la proportion de phosphorylation du CTD diffère durant les divers stades de la transcription. C est ainsi que lors de la formation du complexe de pré-déclenchement et durant l étape préliminaire de la transcription, le CTD est sous une forme hypophosphorylée. L RN pol II est alors nommée RN pol II. près la synthèse des 20 à 30 premiers nucléotides de l RN pré-m, l activité de la polymérase ralentit pour faire place à la phosphorylation du CTD dans les sérines-2 et -5 de la séquence consensus YSPTSPS. On est alors en présence de l RN pol IIO [1, 17-19]. Transcription et structure coiffe La synthèse de la structure coiffe est un processus de maturation qui est directement couplé à la transcription. En effet, la Tase et la MTase sont toutes deux recrutées à l RN pol II en raison de leur capacité à interagir avec sa portion CTD hyperphosphorylée [1, 3, 17]. Cette association pour la Tase, qui a lieu avec les phosphosérines en position 5 de l heptapeptide YSPTSPS, a pour effet d activer l enzyme à la suite de l apparition d un changement de conformation. Cela résulte outre le fait de stimuler la formation de l intermédiaire Tase-MP en une augmentation de l affinité du substrat TP pour la Tase [17]. Chez les levures, il a été montré que l activité de la Tase est stimulée à la suite de la formation d une interaction avec la Rtase. Cette stimulation permet à la tase de former efficacement le lien covalent enzyme-mp en augmentant l affinité de la protéine pour le substrat TP [20]. Chez les mammifères, les activités de la Tase et de la RTase sont présentes sur le même polypeptide. Le besoin de coordonner l activité de la Tase via la RTase n est donc pas nécessaire [1]. ne fois la synthèse de la coiffe terminée, il y a déphosphorylation partielle des sérines-5 entraînant le départ du complexe RTase- Tase du CTD. La MTase demeure, pour sa part, accrochée au CTD et migre avec la polymérase jusqu à la formation de l extrémité 3 de l RN pré-m. Cela laisse supposer une participation de la protéine durant les processus de transcription et/ou de terminaison [3, 17, 20]. Des études génétiques effectuées chez la levure suggèrent que la protéine kinase kin28 est probablement requise pour le recrutement des enzymes participant à la synthèse de la structure coiffe au niveau de l RN pol II [21]. Bien que d autres kinases possèdent la capacité de phosphoryler le domaine CTD de l RN pol II in vitro, les études génétiques utilisant divers mutants thermosensibles suggèrent fortement que kin28 est utilisée de façon exclusive lors de la phosphorylation des sérines-5 du domaine CTD. Enfin, notons que d autres évidences génétiques et physiques démontrent que la protéine hspt5, impliquée dans l élongation transcriptionnelle, interagit avec la Tase [22]. Cette interaction a pour effet de stimuler spécifiquement l activité Tase. 73 50 77 / 160 PP C CFI CFII Coiffe 35 2 65 CBP80 CBP20 100 30 (PY)n 2F 2F (PY)n Figure 4. Interaction entre les processus de maturation de l RNm. Les facteurs protéiques engagés dans chacun des processus de maturation peuvent interagir entre eux. En effet, la coiffe régule l assemblage progressif du spliceosome dans l intron qui lui est immédiatement adjacent. Le complexe CBP20-CBP80 lié à la coiffe interagit avec, augmentant sa stabilité à l RN. Cela permet une formation plus rapide du complexe E. CBP20-CBP80 aurait également un impact sur la formation du complexe catalytique C puisqu il interagit avec le facteur riboprotéique 6. Ce même complexe interagit aussi avec le facteur CFI du processus de polyadénylation, participant de ce fait à la stimulation du clivage de l extrémité 3 de l RN pré-m. La poly() polymérase contribue, pour sa part, à stimuler l épissage de l intron directement en amont du signal de polyadénylation en stabilisant 2F-65. Les sites fonctionnels d épissage de ce même intron peuvent également favoriser le processus de polyadénylation de l extrémité 3 de l RN pré-m. 0 Exon 9 35 65 2 630

Transcription et épissage Chez les métazoaires, certains gènes regroupent des séquences introniques qui sont éliminées par le processus d épissage des transcrits d RN nouvellement synthétisés. fin d augmenter l efficacité et la précision de ce processus, la présence du domaine CTD est d une importance marquée. En effet, des expériences in vivo ont démontré que l utilisation d une polymérase tronquée au niveau du domaine CTD conduit à la synthèse d un RN pré-m dont l épissage ne peut être réalisé [23]. De plus, la forme phosphorylée de la polymérase semble également avoir un impact positif au niveau de l efficacité de l épissage puisqu elle est responsable de l initiation de la formation du spliceosome actif [23]. Toutes ces informations suggèrent que le CTD est un domaine crucial pour cibler efficacement les facteurs d épissage au site de transcription [21]. Enfin, notons que des anticorps dirigés contre le CTD ont la capacité d inhiber l épissage in vitro. Des études récentes ont démontré qu un groupe de protéines désignées SCF (facteurs associés au domaine CTD) seraient sans doute responsables du lien unissant la transcription au processus d épissage [24]. Ces facteurs contiennent des régions très similaires aux domaines retrouvés dans les protéines SR présentes au niveau du spliceosome. De plus, il a récemment été démontré que les facteurs SCF interagissent avec le domaine CTD de l RN pol II [25]. Enfin, notons que la protéine SCF8 semble interagir spécifiquement avec le domaine CTD phosphorylé. Des travaux de localisation démontrent clairement que la protéine se retrouve au site de transcription [26]. Toutes ces données appuient le rôle des protéines SCF dans l établissement de liens entre la transcription et l épissage. ne autre protéine, la protéine p52, pourrait également constituer un élément important permettant de relier l épissage et la transcription [27]. Cette protéine constitue un activateur puissant de la transcription. Cette capacité semble résulter de l interaction entre la protéine et des activateurs de transcription ainsi qu avec des facteurs généraux de la transcription. Des études récentes démontrent que la protéine p52 interagit également avec certaines protéines SR telles que SF/SF2 et peut influencer l efficacité de l épissage dans un modèle in vitro [28]. Ces propriétés suggèrent donc que la protéine p52 peut contribuer au lien entre la transcription et l épissage. Transcription et polyadénylation Il y a plusieurs années, certaines analyses ont conduit à la prédiction de l existence d un lien entre les processus de transcription et de polyadénylation puisque des études ont montré que l étape de terminaison de la transcription par l RN pol II était dépendante du signal de poly(). ujourd hui, ces perspectives ont été confirmées grâce à différentes expériences utilisant des mutants de délétion de l RN pol II. insi, ces travaux ont démontré que les RNm synthétisés par une RN pol II ne possédant pas de domaine CTD ne sont pas efficacement polyadénylés. L RN pol II est donc intimement couplée à la maturation de l extrémité 3 de l RN pré-m. De ce fait, le recrutement des facteurs de polyadénylation s effectue au site de transcription via le domaine CTD. Ces facteurs se concentrent alors localement, rendant la polyadénylation plus efficace [3]. Le recrutement peut débuter très tôt lors de la transcription. En effet, trois des quatre sousunités du complexe CPSF sont transférées à l RN pol II après l amorce de la transcription et y demeurent associées tout au long de l élongation [3]. De plus, lors de la formation du complexe de clivage, le CTD contribue à le rendre catalytiquement actif. Il faut toutefois mentionner que le niveau de phosphorylation du CTD n a aucune influence sur l activité du complexe [3]. L existence d un lien entre l RN pol II et la polyadénylation suggère fortement que l étape de clivage endonucléolytique de l extrémité 3 des RNm survient rapidement à la suite de la transcription du signal de polyadénylation. En fait, des travaux récents démontrent la présence de séquences -riches situées près du site de polyadénylation et qui favorisent l arrêt transitoire de l RN pol II [29]. Cette pause pourrait ainsi permettre aux facteurs impliqués dans la polyadénylation d agir rapidement avant que l RN pol II poursuive la transcription des séquences situées en aval du site de polyadénylation. Conclusions Notre compréhension des détails moléculaires et mécanistiques de chacune des étapes de la synthèse et de la maturation de l RNpré-m à l RNm a grandement évolué grâce à l étude approfondie de chacune de ces étapes. Bien que chaque activité puisse se dérouler indépendamment in vitro, elles sont appelées à se déployer de façon coordonnée in vivo. Le niveau de complexité de ces interactions demeure toutefois important. Pour cette raison, de nouveaux liens intermoléculaires seront sans doute mis en évidence dans un proche avenir. Des analyses thermodynamiques des diverses réactions permettraient, sans doute, d accroître nos connaissances sur les événements de maturation. Mentionnons également que le domaine CTD de l RN pol II joue un rôle important dans plusieurs étapes de la transcription de même qu au stade de la maturation post-transcriptionnelle (édition). ne caractérisation plus approfondie de son fonctionnement moléculaire devrait donc mener à une meilleure compréhension des mécanismes de régulation de la trancription et de la maturation des RNm. SMMRY Synergy between transcription and mrn processing events Processing of eukaryotic pre-mrns is an important step for the translation of proteins. These processing events include the addition of a cap structure at the 5 terminus of the pre-mrn, the splicing out of introns and the acquisition of a polyadenosine tail at the 3 terminus of the pre-mrn. It has now become apparent that the RN processing events can significantly influence each other. RN polymerase II appears as a key player in these processes, cooperating with numerous processing factors that are involved in capping, splicing, and polyadenylation. More specifically, the carboxyterminal domain of the large subunit of the enzyme plays a critical role in coordination of the processing events. The number of interactions between the various RN processing events identified so far reflects the complexity of these reactions. s more studies focus on these interactions, additional links and cellular partners will undoubtedly be discovered. REVES SYNTHÈSE 631

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Bisaillon n nouvel éclairage sur notre monde Parutions récentes Être superficiel, c est aussi être profond Marcel Maltais Éditions MultiMondes, 2006, 15 x 23 cm, reliure souple, 256 pages, ISBN 2-89544-085-9, 29,95 $ tlas des plantes des villages du Nunavik Marcel Blondeau et Claude Roy, avec la collaboration d lain Cuerrier et de l Institut culturel vataq Éditions MultiMondes, 2004,12,5 x 18 cm, reliure souple, 644 pages, ISBN 2-89544-051-4, 34,95 $ 930, rue Pouliot, Sainte-Foy (Québec) 1V 3N9 Canada Tél. : (418) 651-3885, 1 800 840-3029 Téléc. : (418) 651-6822, 1 888 303-5931 multimondes@multim.com Projets inachevés Volume I: 1911-1936 La lancée utobiographie de Pierre Dansereau, Éditions MultiMondes, 2005, 20 x 21,5 cm, reliure souple, 160 pages, ISBN 2-89544-073-5, 29,95 $ Vivre les changements climatiques Quoi de neuf? Claude Villeneuve et François Richard, Éditions MultiMondes, 2005, 21 x 21 cm, reliure souple, 420 pages, ISBN 2-89544-074-3, 34,95 $ Baleines et phoques Biologie et écologie Pierre-Henry Fontaine, Éditions MultiMondes, 2005,15 x 22,5 cm, reliure spirale, 452 pages, ISBN 2-89544-076-X, 34,95 $ 632