Calcitonine INTÉRÊT DU DOSAGE RÉSUMÉ ET EXPLICATION. Essai immunoenzymatique pour la quantification de la calcitonine dans le sérum humain



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Transcription:

Essai immunoenzymatique pour la quantification de la calcitonine dans le sérum humain Préparation des réactifs, standards et contrôles q Diluer la Solution Concentrée de Tampon de Lavage 1/20 avec de l'eau déionisée. Stocker à température ambiante. q q Protocole de Dosage Résumé du Dosage EIA de la Microvue Reconstituer le Standard A avec 2,0 ml d'eau déionisée. Reconstituer les standards B-F et les contrôles avec 1 ml de tampon de reconstitution (RGT 3), 10 minutes avant l'utilisation. Pipeter 100 μl, d'étalons, de contrôles et d'échantillons dans les puits. Pipeter 50 μl d'anticorps biotinylé et 50 µl d'anticorps marqué à l'enzyme dans les puits. Incuber 4 heures ± 30 minutes sous agitation (170 ± 10 tr/min) à 22-28 C dans le noir. Pipeter 150 μl de Substrat Pipeter 100 μl de la solution d'arrêt (lire les résultats dans un délai de 10 minutes) LAVER 5 fois avec la solution de lavage 1X Incuber 30 minutes ± 5 minutes sous agitation (170 ± 10 tr/min) à 22-28 C dans le noir. Relever la Densité Optique à 450 nm et une fois de plus à 405 nm. Analyser les résultats de l'essai à l'aide d'une interpolation par splines cubiques, à ajustement de courbe à 4 paramètres ou point à point INTÉRÊT DU DOSAGE L essai immunoenzymatique pour la quantification de la calcitonine MicroVue est destiné à la détermination quantitative de la calcitonine dans le sérum humain. Ce dosage est destiné à être utilisé dans le cadre des diagnostics in vitro. RÉSUMÉ ET EXPLICATION La calcitonine, une hormone polypeptidique constituée de 32 acides aminés, est essentiellement sécrétée par les cellules parafolliculaires C de la glande thyroïde. Son principal effet biologique est d inhiber la résorption osseuse ostéoclastique. Cette propriété a conduit à l utilisation de la calcitonine pour des pathologies caractérisées par une augmentation de la résorption osseuse, telle que la maladie de Paget, ainsi que pour le traitement de certains patients atteints d ostéoporose. Le syndrome clinique le plus apparent associé à l hypersécrétion irrégulière de calcitonine est le carcinome médullaire de la thyroïde(cmt). Le CMT est une tumeur des cellules C de la glande thyroïde, qui produisent la calcitonine. Même s il représente que 5 à 10 % de l ensemble des cancers de la thyroïde, il s avère souvent fatal. Il peut survenir de manière sporadique, ou sous une forme familiale transmise comme un trait dominant autosomique. Le CMT est d une grande importance clinique en raison de sa distribution familiale. Il se prête en outre à un diagnostic précoce par la présence de calcitonine dans le sérum et peut être complètement guéri dans le cas d une maladie subclinique 1. Fréquemment associée à d autres caractéristiques cliniques, cette dernière est fortement susceptible d être traitée chirurgicalement. Cette tumeur à caractère rare peut se produire dans un schéma héréditaire 1,3,4 sous forme de néoplasie endocrine multiple de type II. Ces tumeurs produisent habituellement des concentrations de calcitonine élevées dans le sérum, révélées par diagnostic. Par conséquent, le dosage immunologique de calcitonine sérique peut servir à diagnostiquer la présence d un CMT, avec un degré exceptionnel de précision et de spécificité. Cependant, un pourcentage minime mais croissant de patients présente des taux d hormones basales qui ne se distinguent pas de la normale 1. Certains de ces sujets sont encore en phase précoce de néoplasie ou d hyperplasie des cellules C, qui se prêtent pour la plupart à des soins chirurgicaux. Pour identifier ces patients, il est impératif d effectuer des tests provoquant la sécrétion de calcitonine pour exclure les faux négatifs dus à la détermination de la calcitonine basale uniquement. La plupart des tumeurs répondent par une augmentation du taux de calcitonine à l administration ou de calcium 5 pentagastrine 6 ou d un mélange des deux 7. Il est cependant à noter que l un ou l autre de ces agents risque toujours de fournir des résultats erronés. Il est donc conseillé d envisager l utilisation de ces deux agents pour effectuer des tests de diagnostic en cas de manifestations cliniques. Par ailleurs, les dosages de calcitonine peuvent également s avérer utiles dans le cadre du suivi de l efficacité de la thérapie chez les patients atteints de tumeurs produisant de la calcitonine. La présence de multiples formes de calcitonine immunoréactive chez des sujets normaux comme chez des patients souffrant d un CMT a été observée 8. Les poids moléculaires de ces diverses formes de calcitonine varient de 3 400 (monomérique) à 70 000 daltons (polymérique). Il est également à noter que les maladies néoplasiques d autres cellules neuroendocrines peuvent accroître le taux de calcitonine. Le cancer pulmonaire à petites cellules en constitue le meilleur exemple. D autres tumeurs (telles que les carcinoïdes et les tumeurs des cellules des îlots pancréatiques, par exemple), peuvent également provoquer l augmentation de la calcitonine sérique. Une élévation du taux de calcitonine sérique a également été observée dans les cas d insuffisance rénale, aiguë et chronique, d hypercalciurie et d hypercalcémie. 1470FR02 (2012/10)

PRINCIPE DU TEST Le dosage immunoenzymatique pour la quantification de la calcitonine MicroVue dans le sérum humain est une procédure en deux étapes qui utilise (1) une microplaque recouverte de streptavidine et d un anticorps monoclonal de souris biotinylé qui fixe spécifiquement la calcitonine humaine 11-23, (2) un anticorps monoclonal de souris anti-calcitonine humaine conjugué à de l HRP (21-32), et (3) un substrat chromogéne. Lors de l étape 1, les étalons, les contrôles et les échantillons sont ajoutés dans les puits préalablement recouverts de streptavidine. Un anticorps monoclonal primaire biotinylé (qui se lie uniquement à la séquence 11 à 23 de la calcitonine) et un autre anticorps monoclonal secondaire anti-calcitonine humaine conjugué à la peroxydase du raifort (HRP) (21-32)) sont ajoutés à chaque puits de test. La calcitonine présente dans les étalons, les contrôles ou les échantillons est capturée dans les puits des microplaques en permettant à l anticorps primaire biotinylé de se lier à la streptavidine immobilisée sur la plaque ; elle est simultanément détectée par l anticorps secondaire marqué à l HPR. À la fin de l incubation, les composants libres sont retirés du puits par lavage. Lors de l étape 2, un substrat enzymatique chromogène est ajouté dans chacun des puits. Le conjugué HRP lié réagit avec le substrat pour former une couleur bleue. Après incubation, la réaction enzymatique est chimiquement interrompue, la couleur vire au jaune et l intensité de la couleur est mesurée à l aide d un spectrophotomètre à 450 nm. L intensité de la couleur est proportionnelle à la concentration de la calcitonine présente dans les échantillons, les standards et les contrôles. RÉACTIFS ET MATÉRIEL FOURNIS L essai immunoenzymatique pour la quantification de la calcitonine contient les éléments suivants : A Standards de calcitonine - F Réf. CAL A CAL F 1 x 2 ml (CAL A) 1 x 1 ml (CAL B F) Lyophilisé. Chaque étalon contient de la calcitonine humaine synthétique purifiée avec une concentration de protéine assignée dans une solution BSA, calibrée selon la norme OMS 2 e IS 89/620. L étalon zéro est une solution de BSA. L Contrôle de calcitonine 1 Réf. CTRL 1 1 ml (lyophilisée) Une fois reconstituée, contient de la calcitonine humaine synthétique (1-32) dans une solution de BSA. H Contrôle de calcitonine 2 Réf. CTRL 2 1 ml (lyophilisée) Une fois reconstituée, contient de la calcitonine humaine synthétique (1-32) dans une solution de BSA. Microplaque Réf. PLA 12 x 8 puits Bandes à 8 puits revêtues de streptavidine dans une poche en aluminium rescellable Solution d arrêt Réf. SOLN 20 ml Contient 1N (3 %) d acide sulfurique (H 2 SO 4 ) Concentré de lavage 20X Réf. RGT A 30 ml Contient une solution saline avec agent de surface actif Substrat TMB Réf. RGT B 20 ml Prêt à l emploi. Contient du 3,3,5,5 -tétraméthylbenzidine (TMB) et du peroxyde d hydrogène (H 2 O 2 ) Anticorps anti-calcitonine biotinylé Réf. RGT 1 7 ml Contient un anticorps monoclonal anti-calcitonine humaine (11-23) biotinylé Anticorps de la calcitonine marqué à l enzyme Réf. RGT 2 7 ml Contient un anticorps monoclonal anti-calcitonine humaine (21-32) conjugué à de la peroxydase du raifort Solution de reconstitution Réf. RGT 3 Contient de l EDTA 10 ml MATÉRIEL NÉCESSAIRE MAIS NON FOURNI Minuteur (60 minutes) Plaques à usage unique, plaque de dilution à 96 puits et/ou tubes à essais et portoirs Récipient pour la dilution de tampon de lavage Bouteille de lavage ou tout autre équipement de lavage homologué Micropipettes et embouts Multipette ajustable (8 ou 12 canaux) ou pipetteur automatique Pipettes de 1 ml, 5 ml et 10 ml Réservoirs de réactif pour ajouter des anticorps, des solutions de substrat et d arrêt à la plaque (utiliser des réservoirs vides et propres pour chaque réactif) Lecteur de microplaque capable de lire une densité optique A 450 et A 405 entre 0,0 et 4,0 Eau désionisée ou distillée Agitateur orbital/rotateur d une capacité de 170 ± 10 tr/min MISES EN GARDE ET PRÉCAUTIONS 1. Réservé au diagnostic in vitro. 2. La calcitonine est une molécule très labile. Effectuer le dosage immédiatement après la reconstitution ou la décongélation de tous les étalons, contrôles et échantillons de patients. 3. Traiter tous les échantillons comme des produits potentiellement dangereux. Observer les précautions standard lors de la manipulation de ce kit et des échantillons de patients. 10 4. Porter des vêtements, des gants, un masque et des lunettes de protection lors de la manipulation de ce kit. 5. Utiliser ensemble tous les réactifs avant la date d expiration indiquée sur l étiquette de la boîte. 6. Les réactifs provenant des divers numéros de lots ne sont pas interchangeables. 7. Suivre les recommandations pour la conservation des réactifs. 8. Ne pas utiliser les bandes revêtues si leur emballage est abîmé. 9. La solution d arrêt est une solution corrosive susceptible de provoquer des irritations. Ne pas ingérer. Éviter tout contact avec les yeux, la peau et les vêtements. En cas de contact, rincer immédiatement à l eau. En cas d ingestion, appeler un médecin. 1470FR02 (2012/10) 2

10. L utilisation de multipettes ou de pipetteurs automatiques est recommandée pour limiter le temps de distribution des réactifs. 11. Pour obtenir une mesure précise des échantillons, pipeter avec précaution les échantillons et les standards en utilisant du matériel calibré. 12. Pour obtenir des résultats précis, il est indispensable de recueillir et de conserver correctement les échantillons (voir MANIPULATION ET PRÉPARATION DES ÉCHANTILLONS). 13. Éviter toute contamination microbienne ou croisée des échantillons et des réactifs. 14. Doser chaque échantillon en double. 15. Ne pas utiliser le même puits pour plusieurs tests. 16. Toute modification du temps ou de la température d incubation indiqués dans le protocole de dosage peut entraîner des résultats erronés. 17. Le substrat TMB doit être protégé de la lumière et de tout contact avec du métal ou du caoutchouc pendant le stockage et l incubation. Éviter tout contact avec les yeux, la peau et les vêtements. En cas de contact, rincer immédiatement à l eau. 18. Ne pas laisser les puits sécher pendant le dosage. 19. Lors du retrait de liquide des puits, ne pas gratter ni toucher le fond des puits. 20. Pour éviter la formation d aérosol pendant le lavage, aspirer le liquide de lavage dans une bouteille contenant de l eau de javel. 21. Utiliser une bouteille de lavage ou un système de remplissage automatique pour laver les microplaques (PROTOCOLE DE DOSAGE, étape 5). Pour un résultat optimal, ne pas utiliser de multipette pour le lavage de la microplaque. 22. Éliminer les réactifs non utilisés et leurs flacons selon la réglementation en vigueur. 23. Pour plus d informations, consulter la fiche technique sur le site quidel.com. CONSERVATION Tous les réactifs, excepté les standards, les contrôles du kit et le concentré de lavage sont prêts à l emploi. Stocker tous les composants du kit à une température comprise entre 2 et 8 C, excepté le concentré de lavage et la solution d arrêt, qui doivent être conservés à température ambiante jusqu à la dilution pour éviter la précipitation. PRÉPARATION DU RÉACTIF Amener tous les réactifs et le matériel à température ambiante avant utilisation. Après utilisation, conserver les réactifs et le matériel inutilisés à la température requise (voir CONSERVATION). Bandes de puits Déterminer le nombre de bandes nécessaires pour le dosage. Quidel recommande de doser en double les blancs, les standards et les contrôles. Refermer avec soin la pochette contenant le reste des bandes et la conserver à 2 8 C. Placer les bandes destinées au dosage sur le support. Solution de lavage (RGT A) Mélanger la solution de lavage concentrée 20X en inversant à plusieurs reprises le flacon. Si la solution de lavage concentrée a été conservée à 2 8 C, une formation de cristaux peut être observée. Pour dissoudre ces cristaux, réchauffer le flacon dans un bain-marie à 37 C jusqu à dissolution et mélanger soigneusement. Préparer la solution de lavage en diluant le contenu entier de la bouteille de concentré de lavage 20X (30 ml) dans 570 ml d eau distillée ou désionisée. Bien mélanger. La solution de lavage reste stable pour 90 jours lorsqu elle est conservée dans un contenant propre à température ambiante. Standards et contrôles Reconstituer l étalon A (standard zéro standard) avec 2,0 ml d eau distillée ou déminéralisée et mélanger. Pour chaque standard (CAL B à F) et pour les contrôles 1 et 2 de la trousse, reconstituer chaque flacon à l aide de 1,0 ml de solution de reconstitution (RGT 3) et mélanger. Laisser les flacons reposer 10 minutes et bien mélanger en retournant doucement le flacon pour assurer une reconstitution complète. La calcitonine est une molécule très labile. Utiliser les standards et les contrôles immédiatement après la reconstitution. Congeler (-20 C) les standards et les contrôles restants dès que possible après usage. Les standards et les contrôles restent stables à -20 C pendant 6 semaines après la reconstitution avec un maximum de 3 cycles de congélation/décongélation, à condition que les recommandations soient respectées. Solutions d anticorps (facultatif) Si cela est souhaité, mélanger des volumes égaux d anticorps biotinylé (RGT 1) et d anticorps marqué à l enzyme (RGT 2) dans une bouteille propre de couleur ambrée, en veillant à préparer suffisamment de solution pour le dosage. Ajouter ensuite 100 μl d anticorps mélangé dans chaque puits. Cette méthode alternative consiste à remplacer les étapes 3 et 4 du Protocole de dosage, suivi par l incubation dans l agitateur orbital. COLLECTE ET STOCKAGE DES ÉCHANTILLONS Manipuler et éliminer les échantillons selon les précautions standard. Collecte des échantillons ATTENTION : Traiter tous les échantillons comme potentiellement infectieux. Suivre les précautions standard. Ne pas utiliser d échantillons contaminés ou mal conservés. Sérum Le dosage de la calcitonine doit être effectué avec du sérum. Les échantillons sur sérum doivent être recueillis selon une technique aseptique standard. 11 Après avoir laissé le sang se coaguler, séparer rapidement le sérum avec une centrifugeuse réfrigérée de préférence, et conserver à une température inférieure ou égale à -20 C. Éviter les échantillons fortement hémolysés ou lipémiques. 1470FR02 (2012/10) 3

PROTOCOLE DE DOSAGE Lire le protocole dans son intégralité avant de commencer le dosage. Voir MISES EN GARDE ET PRÉCAUTIONS et PRÉPARATION DES RÉACTIFS. 1. Placer suffisamment de bandes revêtues de streptavidine dans un conteneur pour traiter les six (6) échantillons standards de calcitonine [A F, concentration exacte indiquée sur l étiquette du flacon], standards du kit et échantillons des patients. 2. Pipeter 100 µl standard, de contrôle ou d échantillon dans le puits désigné ou déterminé. Congeler (-20 C) les standards et les contrôles restants dès que possible après usage. 3. Ajouter ou délivrer 50 µl d anticorps biotinylé (RGT 1) dans chaque puits contenant le standard, le contrôle ou l échantillon. 4. Ajouter ou délivrer 50 μl d anticorps marqué à l enzyme (RGT 2) dans chacun de ces puits. Couvrir la/les microplaque(s) d une feuille d aluminium ou d un plateau pour éviter toute exposition à la lumière. Placer dans un agitateur orbital ou un rotateur à 170 ± 10 tr/min à température ambiante (22 à 28 C ) pendant 4 heures ± 30 minutes. 5. Laver les micropuits en suivant la procédure suivante : a. Aspirer le contenu de chaque puits. b. Ajouter environ 350 µl de solution de lavage dans chaque puits, à l aide d une bouteille de lavage ou d un système automatique. c. Aspirer le contenu de chaque puits. d. Répéter les étapes a à c quatre (4) fois de plus pour cinq (5) lavages au total. 6. Ajouter ou délivrer 150 µl de substrat TMB (RGT B) dans chaque puits de test lavé. 7. Après avoir installé un couvercle approprié pour empêcher l exposition à la lumière, placer la/les microplaque(s) dans un agitateur orbital ou un rotateur à 170 ± 10 tr/min à température ambiante (22 à 28 C ) pendant 30 minutes ± 5 minutes. 8. Ajouter ou délivrer 100 µl de solution d arrêt dans tous les puits pour arrêter la réaction enzymatique. 9. Tapoter doucement la plaque pour permettre un développement uniforme de la coloration. 10. Lire l absorption à 450 nm de chaque puits dans les 10 minutes qui suivent l addition de la solution d arrêt (étape 8), en faisant une correction pour les blancs selon le système spectrophotométrique utilisé. Lire de nouveau la plaque à 405 nm, en faisant une correction de blanc conformément au système spectrophotométrique utilisé (correction de blanc : 250 µl d eau distillée ou désionisée). REMARQUE : La deuxième lecture est destinée à étendre la validité analytique de la courbe standard à la valeur représentée par le standard le plus haut, qui est d environ 1 000 pg/ml. En conséquence, les échantillons de patients avec une calcitonine > 300 pg/ml peuvent être quantifiés contre une courbe standard consistant en des valeurs allant complètement jusqu à la concentration équivalente au standard le plus haut utilisant la valeur 405 nm, loin de la longueur d onde de l absorbance maximale. En général, il est conseillé de lire les échantillons de patients et de contrôles avec un lecteur réglé sur 450 nm pour les concentrations de calcitonine jusqu à 300 pg/ml. Les concentrations en calcitonine supérieures à 300 pg/ml doivent être interpolées avec une lecture à 405 nm. Les échantillons de patients dont les valeurs sont supérieures à celles du standard le plus élevé (standard F) doivent être dilués avec le standard A et dosés à nouveau. Multiplier le résultat par le facteur de dilution. 11. Lire la concentration des échantillons et des contrôles à partir de la courbe standard. 12. Éliminer le reste des échantillons, substrats et bandes utilisées (voir MISES EN GARDE ET PRÉCAUTIONS). CONTRÔLE DE QUALITÉ Le certificat d analyse inclus dans ce kit est spécifique au lot et doit être utilisé pour vérifier si les résultats obtenus dans votre laboratoire sont semblables à ceux qui ont été obtenus par Quidel Corporation. Les densités optiques sont mentionnées uniquement à titre indicatif. Les résultats obtenus dans votre laboratoire peuvent être différents. Des plages de contrôle de la qualité sont fournies. Les valeurs de contrôle sont destinées à vérifier la validité de la courbe standard et des résultats obtenus pour les échantillons. Chaque laboratoire doit établir ses propres critères de validation. Si les valeurs obtenues NE sont PAS dans les limites acceptables du laboratoire, les résultats seront considérés comme douteux, et un redosage des échantillons devra être effectué. INTERPRÉTATION DES RÉSULTATS Utilisation de la courbe standard En utilisant les valeurs d absorbance finales obtenues à l étape 10 du Protocole de dosage, construire une courbe standard à l aide d une interpolation par splines cubiques, à ajustement de courbe à 4 paramètres ou point à point pour quantifier la concentration de calcitonine. La plupart des logiciels de lecture de plaques et des ordinateurs peuvent effectuer ces calculs. Les données peuvent être mises en graphe manuellement. Pour les valeurs de 450 nm, construire une courbe standard à l aide des cinq premiers standard fournis, c està-dire les standard A E. Pour les valeurs de 405 nm, construire une deuxième courbe standard à l aide des trois standards présentant les concentrations les plus hautes, c est-à-dire D F. Les valeurs des échantillons de test peuvent être directement relevées sur la droite d ajustement de la courbe standard. 1470FR02 (2012/10) 4

Tableau 1. Données d échantillon à 450 nm Moyenne A450 pg/ml Standard A 0,0085 0 Standard B 0,0615 10 Standard C 0,190 30 Standard D 0,590 100 Standard E 1,891 300 Contrôle 1 0,125 20,6 Contrôle 2 2,560 * patient 1 0,037 4,7 patient 2 0,101 16,3 patient 3 0,404 68,7 patient 4 2,184 * * La concentration de lecture étant supérieure à 300 pg/ml, il est conseillé d utiliser les données obtenues à 405 nm (voir le Tableau 2 ci-dessous). Tableau 2. Données d échantillon à 405 nm Moyenne A405 pg/ml Standard A 0,005 0 Standard D 0,193 100 Standard E 0,599 300 Standard F 1,904 1 000 Contrôle 1 0,045 ** Contrôle 2 0,815 403 patient 1 0,018 ** patient 2 0,037 ** patient 3 0,131 ** patient 4 0,693 345 ** Pour les échantillons d une valeur inférieure à 300 pg/ml, il est recommandé d utiliser les données obtenues à 450 nm (voir le Tableau 1 ci-dessus). Cette méthode devrait donner des résultats avec une sensibilité du dosage optimale. LIMITES DE LA PROCÉDURE Le kit de dosage EIA de la calcitonine Microvue n a présenté aucun «effet crochet a haut dosage» avec des échantillons enrichis avec 1 000 000 pg/ml de calcitonine pure intacte (1-32). Il est toutefois conseillé de diluer les échantillons dont les niveaux de calcitonine sont supérieurs à l étalon le plus élevé et de les doser à nouveau pour obtenir des valeurs correctes. Comme tout analyte utilisé en complément à un diagnostic, les résultats de calcitonine doivent être interprétés avec soin en association avec les présentations cliniques globales et tout autre test diagnostique de support. VALEURS OBSERVÉES Le sérum de cinquante-neuf (59) donneurs de sexe féminin et cinquante-deux (52) donneurs de sexe masculin apparemment sains a été testé avec le kit d essai immunoenzymatique calcitonine MicroVue. Les résultats sont présentés ci-dessous. n Moyenne + 2 écarts types Fourchette Sexe féminin 59 0,07 12,97 0,1 10,9 Sexe masculin 52 0,68 30,26 0,2 27,7 PERFORMANCES DU TEST PRÉCISION Soixante-dix-sept (77) échantillons de patients présentant des valeurs de calcitonine comprises entre 0,8 et 3,113 pg/ml ont été testés selon la procédure ELISA de Microvue et un test immunoradiométrique de calcitonine (trousse IRMA). L analyse de régression linéaire fournit les statistiques suivantes : MicroVue Elisa = kir IRMA 0,940 + 6,55 pg/ml r = 0,993 n = 123 Ensuite, cinquante et un (51) échantillons de patients présentant des valeurs de calcitonine comprises entre moins de 0,7 et 2 240 pg/ml ont été testés selon la procédure ELISA de Microvue et un dosage immunologique par chimioluminescence de calcitonine [ou ImmunoChemiluminescentMetricAssay (ICMA)]. L analyse de régression linéaire fournit les statistiques suivantes : MicroVue Elisa = kir IRMA 1,094-6,13 pg/ml r = 0,995 n = 123 Limites LD : La limite de détection (LD) pour le dosage EIA de la calcitonine est 1,0 pg/ml, définie comme la valeur unique la plus petite pouvant être distinguée de zéro à l intervalle de confiance de 95 %. Précision La précision intra-essais a été déterminée à partir de 20 dosages réitérés pour chacun des 3 échantillons. moyenne n Variation intra-essais A 24,3 20 5,7 B 94,9 20 4,3 C 403 20 2,8 La précision inter-essais a été calculée à partir de données de deux échantillons, obtenues après 15 dosages effectués par trois techniciens sur deux lots de réactifs différents au cours d une période de trois semaines. moyenne n Variation inter-essais A 16,5 15 7,4 B 64,5 15 7,4 C 340 15 6,1 REMARQUE : Le comportement de la moyenne et de l écart type des concentrations de calcitonine calculé pour les échantillons de sérum peut varier d un laboratoire à l autre. Il est donc recommandé que chaque laboratoire calcule les valeurs de concentration moyenne en calcitonine et d écart type des échantillons. 1470FR02 (2012/10) 5

Linéarité La linéarité a été réalisée en diluant des échantillons de sérum avec le standard A (standard zéro). Les résultats sont indiqués ci-après : A B C D E F Facteur de dilution attendue observée Récupération Non dilué - 343-1/2 172 168 98 1/4 85,8 81,3 95 1/8 42,9 40,3 94 Non dilué - 271-1/2 136 131 97 1/4 67,8 70 103 1/8 33,9 34,3 101 Non dilué - 265-1/2 133 134 101 1/4 66 70,4 106 1/8 33,1 32,5 98 Non dilué - >1 000-1/2-1 060-1/4 530 504 95 1/8 265 271 102 Non dilué - 231-1/2 116 116 100 1/4 57,8 58,8 102 1/8 28,9 27,1 94 1/16 14,4 12,1 84 Non dilué - >1 000-1/2-997 - 1/4 499 429 86 1/8 249 223 89 1/16 125 119 95 Spécificité et réactivité croisée Chaque réactif mixte a été enrichi dans un échantillon contenant de la calcitonine. Le taux de calcitonine est mesuré avant et après l enrichissement. Aucun des réactifs mixtes n interfère avec ce test dosage EIA de la calcitonine. Les petites variations de calcitonine mesurées sont largement dans les limites des statistiques sur la précision intra-essai. Les résultats sont fournis ci-après : Réactif mixte PTH (1-84) Peptide lié au gène de la calcitonine de saumon TSH Concentration en réactif mixte sans réactif mixte avec réactif mixte Modificatio n de la calcitonine % Réactivité croisée 100 000 pg/ml 186 194 8 0,00800 % 30 000 pg/ml 186 200 14 0,04667 % 10 000 pg/ml 186 194 8 0,08000 % 1 000 000 pg/ml 200 202 2 0,00020 % 100 000 pg/ml 200 204 4 0,00400 % 1 000 000 pg/ml 191 194 3 0,00030 % 100 000 pg/ml 191 199 8 0,00800 % 5 000 uiu/ml 198 203 5 0,00061 % 500 uiu/ml 198 193 0 0,00000 % 50 uiu/ml 198 199 1 0,01220 % Effet cinétique du dosage Pour déterminer s il existe un effet cinétique systématique entre le début et la fin du dosage, trois groupes d échantillons patients enrichis sélectionnés pour représenter les valeurs significatives de la concentration en calcitonine, ont été placés par ordre le long d une microplaque ou de 96 puits [avec 12 bandes de 8 puits]. Récupération maximale Une récupération maximale a été réalisée en ajoutant diverses quantités de calcitonine à quatre sérums de patients différents et en comparant les valeurs observées et les valeurs attendues. Les résultats sont fournis ci-dessous : de sérum A B C D endogène Calcitonin e ajoutée attendue observée Récupération 0 - - - - 0 100 100 110 110 0 200 200 217 109 9,7 - - - - 8,7 100 109 106 97 7,8 200 208 207 100 0 - - - - 0 100 100 104 104 0 200 200 205 103 5,7 - - - - 5,1 126 131 119 91 4,6 220 225 203 90 1470FR02 (2012/10) 6

ASSISTANCE À LA CLIENTÈLE Pour tout service en dehors des États-Unis, contacter le distributeur local. Des informations sur Quidel, ses produits et ses distributeurs figurent sur notre site, à l adresse suivante : quidel.com. RÉFÉRENCES 1. Deftos, L.J. 1990. Calcitonin. Dans : Murray, J.F. (ed) Primer on the Metabolic Bone Diseases and Disorders of Mineral Metabolism. American Society for Bone and Mineral Research, Kelseyville; William Byrd Press, Richmond, pp. 53-55. 2. Deftos, L.J., Weisman, M.H., Williams, G.H., Karpf, D.B., Frumar, A.M., Davidson, B.H., Parthemore, J.G., Judd, H.L. 1980. Influence of age and sex on plasma calcitonin in human beings. N. Eng. J. Med. 302:1351-1353. 3. Travis, J.C. 1980. Clinical Radioimmunoassay. State-ofthe-Art. Dans : Travis, J.C. (ed) Scientific News Letters, Inc., Radioassay; Legend Assay Publishers, Anaheim, CA. 4. Austin, L.A. and Heath, H. 1981. Medical Progress, Calcitonin physiology and pathophysiology. N. Eng. J. Med. 304:269-278. 5. Parthemore, J.G., Bronzert, G.R., Deftos, L.J. 1974. A short calcium infusion in the diagnosis of medullary thyroid carcinoma. J. Clin. Endocrinol. Metab. 39:108-111. 6. Hennedssy, J.F., Wells, S.A., Ontjes, D.S., Cooper, C.W. 1974. A comparison of pentagastrin injection and calcium infusion as provocative agents for the detection of medullary carcinoma of the thyroid. J. Clin. Endocrinol. Metab. 39:487-495. 7. Wells, S.A., Baylin, S.B., Linehan, W.M., Farrell R.E., Cox E.B., Cooper C.W. 1978. Provocative agents and the diagnosis of medullary carcinoma of the thyroid gland. Ann. Surg. 188:139-141. 8. Body, J.J. and Heath, H. 1983. Estimates of circulating monomeric calcitonin: physiological studies in normal and thyroidectomized man. J. Clin. Endocrinol. Metab. 57:897-903. 9. Tiegs, R.D., Body, J.J., Barta, J.M., Heath, H. 1986. Secretion and metabolism of monomeric human calcitonin: effects of age, sex and thyroid damage. J Bone Min. Res. 1:339-349. 10. U.S. Department of Health and Human Services Centers for Disease Control and Prevention and National Institutes of Health. 2007. Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories (BMBL) 5th Edition. Washington: U.S. Government PrintingOffice. http://www.cdc.gov/od/ohs/biosfty/bmbl5/bmbl5toc.htm. 11. Centers for Disease Control. Recommendations for prevention of HIV transmission in health-care settings. MMWR 1987;36 (suppl. No. 2S):001. GLOSSAIRE Intérêt du dosage 8043 Trousse de dosage EIA de la calcitonine Fabriqué pour : MDSS GmbH Schiffgraben 41 30175 Hannover, Germany 1470FR02 (2012/10) 7