Applications de la Cytométrie trie en Flux

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1 Marseille 27 novembre 2008 Applications de la Cytométrie trie en Flux RECHERCHE BIOLOGIQUE et CLINIQUE Aude Barani Plateforme Régionale R de Cytométrie trie pour la Microbiologie PRECYM UMS2196 COM (OSU), Case 901, Bât. TPR1 (F-G) 163 Av. de Luminy,, Marseille cedex 9 Tel : (+33) aude.barani@univmed.fr univmed.fr

2 Applications de la Cytométrie trie en Flux Routine Immunophénotypages notypages (immunologie, hématologie) h Expressions quantitatives (Surface, intracellulaire) Quantification du contenu en ADN (cancérologie, cytogénétique) tique) Cycle cellulaire Viabilité Recherche Caryotype Flux Calcique Stress Oxydatif PH intracellulaire et potentiel de membrane Fluidité membranaire Apoptose Cycle cellulaire, prolifération ration

3 Sondes fluorescentes Les fluorochromes utilisés Spécifiques d un d organite ou d un d composé cellulaire 1-Ions Indicateurs de Ca 2+ ratiométrique Ex Em 475 Em UV (+ Ca2+ 2+ Fura 2 Ex 340 Ex ) Em 510 Vis Indo 1 Fluo 3 Ex 488 Em 525 Em 400 (+ Ca 2+ ) Indicateurs de Mg UV Mag-Fura2, Mag-Indo1 Indo1 Vis Mag-Fluo4 Fluo4 Indicateurs de Zn 2+ UV FuraZin1, IndoZin1 Vis FluoZin2. Autres Indicateurs d ions d métalliquesm Intensité de fluorescence haute = rouge > orange > jaune > verte > bleu = faible FLA3000G laser scanner (Fuji Photo Film Co.) λex 473 nm λem 520 nm Indicateurs de Na +, K +, Cl -

4 Sondes fluorescentes Le flux calcique Marquage de cellules T primaires avec du Fluo4 Fluorochrome perméant, λex. 494nm, λem. 516nm ; laser 488nm, FL1 Non ratiométrique : Intensité de fluorescence varie avec [Ca 2+ ] lié Contrôle positif : mesure du calcium présent dans le milieu Iono 0.1µg/ml Ionomycine : ionophore déclenchant l ouverture de l ensemble des canaux calciques FL1-H: FL1 FLUO HBSS - 37 C HBSS - RT Baseline (60 ) Response Time: Time ( sec.) Resolution Source Pierre Grenot, CIML

5 Sondes fluorescentes Le flux calcique Autres contrôles : mesure du calcium présent dans le milieu Thaps 10 µm +EGTA 2.5mM ph8 EGTA +thaps EGTA +thap +iono 0.1 µg/ml FL1-H: FL1 Fitc Time: Time ( sec.) Time: Time ( sec.) Time: Time ( sec.) Time: Time ( sec.) Thapsigargine EGTA Pas de Ca 2+ ext libre Détection du [Ca 2+ ]i relargue tout [Ca 2+ ]i Chélateur Pas de [Ca 2+ ]e libre Détection du [Ca 2+ ]i [Ca 2+ ]i et [Ca 2+ ]e restant Le mieux étant bien sur de ne pas mettre de Ca 2+ dans le milieu pour caractériser l intra!! Source Pierre Grenot, CIML

6 Sondes fluorescentes Le flux calcique Pour augmenter la sensibilité FlowJo Médiane d I fluo Iono 0.1µg/ml 250K Fluo-4 (488nm) Ca 2+ lié <B-FITC-A> 200K 150K 100K 50K I fluo <B-FITC-A> 150K 100K 50K Time Time 250K Fura red (488nm) Ca 2+ lié <B-PerCP-A> 200K 150K 100K 50K Time I Fura <B-PerCP-A> 60K 50K 40K Time Ratio amplifie les variations Ratio I fluo /I fura AlgParm Time Source Pierre Grenot, CIML

7 Sondes fluorescentes Le flux calcique Caractérisation d un mutant CD3 Effet d une délétion partielle d une voie de transduction (CD3) FL1-H Iono 0.1µg/ml Cellule T Mutant CD Time: Time ( sec.) Source Pierre Grenot, CIML

8 Sondes fluorescentes Le flux calcique Potentialisation de la réponse calcique : crosslinking d anticorps rα-ham a-tcr Anti Hamster hamα CD4 250K CD4 200K cellule T B-FITC FITC-A: FLUO-4 150K 100K 50K Median of I fluo B-FITC-A: FLUO-4 100K 80K 60K 40K 20K Time Time Source Pierre Grenot, CIML

9 Sondes fluorescentes Les fluorochromes utilisés 2-Acides Nucléiques Perméants : - marquage de cellules non fixées Imperméants : - marquage de cellules fixées - identification des cellules mortes Colorants classiques : Intercalants Bases A-TA Bases C-GC Bromure d Ethidiumd Iodure de Propidium Acridine Orange ADN/ARN ARN DAPI semi-perm perméant,, ADN Hoechst(s) perméant ant,, ADN imperméant imperméant perméant 7-amino-actinomycinDactinomycinD (7AAD) peu perméant, ADN Colorants cyanines : SYTOX (bleu, vert orange) imperméant Dimers Cyanine SYTO Cyanine imperméant ant,, très s haute affinité perméant Ces familles deux familles de colorants couvrent l ensemble l des spectres d excitation d et d éd émission

10 Cycle cellulaire et prolifération ration 2n M G2 4n Mitose Division M G0/G1 S Croissance G1 G2 Préparation à la division 2n 4n G0 S Réplication Synthèse D après Source Barani A.E. et al.

11 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Analyse en cytométrie en flux de l incorporation de 5-bromodeoxyuridin (BrdU) Lignée leucémie lymphoblastique aigüe humaine Incubation avec le BrdU Détection de l incorporation avec un anti-brdu-fitc Ajout Iodure de Propidium pour l analyse du cycle Seules les cellules en phase S auront incorporé le BrdU Ainsi on peut individualiser les différentes phases du cycle cellulaire (G0/G1, S, G2/M)

12 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Analyse du cycle cellulaire avec l Iodure de Propidium (PI, laser 488nm, FL3) Marquage PI L6E9 (lignée musculaire) R1 Analyse (ModFit 3.0) du marquage PI des L6E % 36.96% 10.50% Analyse (ModFit 3.0) du marquage PI de Myoblastes 28.59% 63.53% 7.66% Source Barani A.E. et al.

13 Cycle cellulaire et prolifération ration Analyses de cycles cellulaires Anomalies du cycle cellulaire, détermination de la ploïdie Cellules normales Cellules tumorales G0/G1 S G2+M

14 Cycle cellulaire et prolifération ration Analyses de cycles cellulaires Contenu en ADN de plantes analysé en cytométrie en flux Medicago trunculata (luzerne tronquée) S.J. Ochatt, Medicago trunculata handbook, Flow Cytometry (ploidy determination, cell cycle analysis, DNA content per nucleus)

15 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Analyse du cycle cellulaire dans la moelle osseuse de souris Population hétérogène marquée avec des anticorps ERMP12 (CD34like) et ERMP20 (CD59like) identification de 5 sous-populations marquage DAPI pour évaluer leur contenu en ADN red670 FITC Exclusion des doublets (réalisée sur le DAPI) Sélection sur la base de la taille (FSC) et complexité (SSC)

16 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Analyse du cycle cellulaire avec l Acridine Orange (laser 488nm) Permet l analyse l simultanée e du contenu en ADN et en ARN des cellules: intercalé à l ADN signal fluorescent vert (FL1) fixé à l ARN signal fluorescent rouge (FL2) Profils de marquage à l AO L6E9 FL1-A A (ADN ADN) FL3 1-A 1 (ARN) Barani et al. Exp. Cell Res. (2003)

17 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Profils de marquage à l AO Satellite Cells (G0) Myoblastes L6E9 FL1-A (ADN ADN) FL3 1-A 1 (ARN) Barani et al. Exp. Cell Res. (2003)

18 Cycle cellulaire et prolifération ration Cycle cellulaire Acridine Orange = Discrimination cellules quiescentes (G0) / cellules lules en prolifération ration (G1) Analyse des signaux ARN Analyse des signaux ADN RNA content Nombre de cellules 39 ± ± 56 SCs Myoblastes Nombre de cellules 175 ± 14 L6E9 FL31-H Quiescence activité transcriptionelle peu importante => un faible contenu en ARN est discriminant FL1-A SCs ont un faible contenu en ARN => cellules quiescentes (Go) en fin d extraction Barani et al. J. Appl. Physiol (2003)

19 Cycle cellulaire et prolifération ration Suivi de la prolifération ration cellulaire : marquage au CFSE CarboxyFluorescein diacetate Succinimidyl Ester (ou CFDA SE) Caractéristiques du fluorochrome Famille des traceurs - fluorescence (λ( ex. 495nm, λ em.. 525nm), laser 488nm, FL1 - peu cytotoxique - stable à long terme - utilisable in vitro et in vivo Diffusion passive acetate CFSE incolore non fluorescent Estérases intracellulaires Amine-réactif Très fluorescent couplage Amines des protéines intracellulaire Reste présent au long des divisions cellulaires Distribution équivalente de la fluorescence cytoplasme entre les cellules filles

20 Cycle cellulaire et prolifération ration Analyse du marquage au CFSE Suivi de la prolifération au cours du temps Suivi de la prolifération lymphocytaire dans le sang périphérique humain J0 : cellules arrêtée en génération parentale (mitomycin) Stimulation de la prolifération (phytohemagglutinin) J5 :pics représentant les générations successives Source

21 Cycle cellulaire et prolifération ration Suivi de la prolifération cellulaire : marquage membranaire au PKH26 PKHs : Fluorochromes s intercalant dans les lipides des membranes cellulaires Caractéristiques du PKH 26 - fluorescence rouge (λ( ex. 551nm, λ em.. 567nm) - demi-vie in vivo (>100 jours) - peu cytotoxique - stable à long terme Utilisable in vitro et in vivo Mesure de la prolifération ration de sous-populations cellulaires distinctes, présentes dans une population hétérogh rogène

22 Cycle cellulaire et prolifération ration Analyse du marquage au PKH26 J0 J3 J5 J7 Indice de Prolifération ration (PI) Suivi de l indice l de prolifération ration au cours du temps Expansion totale de la population initiale. Activité proliférative rative de la population cellulaire totale Facteur multiplicatif de la population cellulaire Calcul des paramètres cinétiques de la prolifération de cellules en culture Barani et al. Exp. Cell Res. (2003)

23 Cycle cellulaire et prolifération ration Analyse du marquage au PKH26 Calcul des paramètres cinétiques de la prolifération des mdc en culture 20 Ak = Ao x PI et At = Ao x 2 k Indice de Prolifération ration temps (hrs) 200 k = nombre de générations Ao = nombre initial de cellules Ak = somme des aires de chaque génération Temps de Latence : temps correspondant à PI = 1 Temps de Génération G T : At = Ao x 2 k k = Ln PI / Ln 2 T = t / k Animaux Latence (heures) Temps de Génération G (heures) L6E ± ± 2.3 Jeune 22.2 ± 5.9 Adulte 49.0 ± ± ± 2.8 Vieux 40.0 ± ± 2.2 * Barani et al. J. Appl. Physiol (2003) * : P < 0.05, différent des jeunes : P < 0.08, différent des jeunes : P = 0.05, différent des jeunes et des adultes (contraste)

24 Fusion cellulaire PKH et fusion cellulaire Fusion monocytes-cellules cellules tumorales : une cause de métastasem En présence de milieu conditionné (Con-A) Fusion des Monocytes : Multinucleated Giant Cells (MGC) PKH 2 : monocytes PKH 26 : monocytes SSC FSC PKH 2 : TALL FL2 / PKH 26 Spötl et al., Cytometry (1995) FL1 / PKH 2 Fusion TALL / monocytes : Hybrides PKH 26 : monocytes

25 Autres utilisations de colorants membranaires Migration cellulaire & interactions cell.-cell. dans le maintien de l homéostasie normale (Hendrikx et al., Exp Hematol 1996, 24: ; Tomasetto et al., J Cell Biol 1993, 122: ) Optimisation de thérapies basées sur la cellules (Verfaillie et al., Blood 1995, 86: ) Cytotoxicité médiée par la cellule (Hatam et al., Cytometry 1994, 16:59-68) Localisation, migration, interactions et communications cellulaires (Hugo et al., Nature 1992, 360: , Lansdrop et al., Exp Hematol 1993, 21: )

26 Sondes fluorescentes Les fluorochromes utilisés 3-Mitochondries spécifiques MitoTracker : Vert, orange, rouge et infrarouge Fixables, sélectifs s des mitochondries, perméants Rhodamine 123 cationique, perméante ante,, séquestrs questrée e dans les mitochondries actives. Ne fixe pas le RE Carbocyanines DioC 6 (3) colore les mitochondries + RS Masse mitochondriale : Fluorochrome s accumulant quelque soit le potentiel de membrane 4-Senseurs de ph MitoFluor (Green, Red589) Non-Fixables Fixables,, sélectifs s des mitochondries MitoTracker (Red580, Deep red 633) Nonyl Acridine Orange Sensibles au potentiel de membrane ( Ψ)( ) Indicateurs de ph RedoxSensor Red CC-1 JC-1 monomère (faible Ψ) JC-1 aggrégé ( Ψ) Mesure de ratio SNARF-1 Ex 488 Sensibles aux compartiment acides Em 580 acide Em <620 basique Lysosensor acidotropiques : accumulent dans les organelles acides

27 Les grandes étapes du déroulement d de l Apoptosel Déroulement de modifications caractéristiques Induction T0 Condensation T2h Fragmentation T6h Ψm Annexine.V Texture de la chromatine Pré-G1 TUNEL Corps apoptotiques Gènes prédictifs(caspases, famille Bcl-2) Mise en évidence des différentes étapes du processus DiOC6 chute précoce du potentiel membranaire mitochondrial Annexine.V altérations de la membrane plasmique (stade précoce-intermédiaire) TUNEL fragmentation internucléosomale de l'adn (stade tardif) Caspase-3 : Expression des formes précurseur et activée Activité protéolytique (substrats fluorogènes mimant le site de clivage)

28 Apoptose Annexine V Détection des altérations de la membrane plasmique Distribution des phospholipides Cellule normale : asymétrique Cellule apoptotique : translocation PS à l extérieure (stade précoce-intermédiaire) Phospholipides anioniques Phospholipides neutres Annexine V protéine Ca2 + dépendante forte affinité pour résidus PS Cellules Normales Apoptotiques Nécrotiques AnnexineV PI Lignée e U937 - Déclencheur VP16 autofluorescence T0 T2h T6h PI 3% 9% 30% 22% 0% 30% 0% 44% 18% Boudard D, Communication St Victor /Loire, 2003 Annexine.V-FITC

29 Apoptose TUNEL + TdT ADN fragmenté Addition de dutp biotinylés aux extrémités 3 OH libres de l ADN + steptavidine-fitc Technique TUNEL: les témoinst Boudard D, Communication St Victor /Loire, 2002 Témoin (-) : sans TdT + dutp biotinylés + streptavidine.fitc Témoin (+) : addition de DNase + TdT + dutp biotinylés + streptavidine.fitc

30 Apoptose TUNEL Modèle U937 ± VP16 : cytogrammes de TUNEL Témoin négatif à To 3% à T2h 5 % à T4h 20% à T6h 36% Boudard D, Communication St Victor /Loire, 2002

31 Apoptose Potentiel membranaire mitochondrial (DIOC6)( Modèle U937 ± VP16 - T4h 1) Cellules viables 2) Cellules en cours d apoptose 3) Cellules apoptotiques Boudard D, Communication St Victor /Loire, 2002

32 Cellules Hématopoïétiques Clusters de différenciation des cellules hématopoh matopoïétiques Progéniteur lymphoïde commun CD34 HLA-DR CD33 CD45 CD7 CD2+ CD3+ CD5+CD7+ CD45+/- CD34 CD22 CD19+ CD10++ CD2+ CD3+ CD5+CD7+ CD4 ou CD8 CD19 CD10 CD20 CD22 CD45 CD34+ HLADR+ CD33+ CD117 CD71 CD36 CD235 CD36 CD235 GlycoA CD71 CD34 HLADR CD33+ CD38+ CD34 HLADR CD33 CD117 CD41/61 CD36 CD42 FacteurVIII CD34 DRfaible CD33- CD38- CD33 CD13 CD15 CD33 CD13++ CD10 CD15 CD34 HLADR CD33 CD117 HLADR CD33 CD4 CD36 HLADR CD33 CD13+/- CD4 CD36 CD14 CD15 CD11

33 Multicouleurs Analyses multicouleurs Mise en évidence des cellules Natural Killer (NK) D origine lymphocytaire Interviennent dans les réponses anti-virales et anti-tumorales Elles sont classiquement définies comme NK1.1+ CD3-3 sous-groupes identifiés sur la base de l expression CD27/CD11b : CD11b-/CD27+ (immature) CD11b+/CD27+ (mature) CD11b+/CD27- (senescent) Rate de souris Traitement à la collagénase (enrichissement cellules dendritiques/macrophages) Lyse des globules rouges (Hayakawa et al, J Immunol 2006) Marquage 8 couleurs Laser 488nm (Bleu) Ly6C-FITC, NK1.1-PE CD11b PercP-Cy5.5 Cy5.5, CD27-biotin (+Strepta PE-Cy7 Cy7) Laser 405nm (Violet) Violet viability dye (ViviD), B220 (Pacific Orange) Laser 633nm (Rouge) CD127-Alexa647, CD3-CD19 APC-Cy7 Source Pierre Grenot, CIML

34 Multicouleurs Les cellules Natural Killer (NK) A partir d une population hétérogène complexe Exclusion des doublets sur les paramètres Sélection des cellules vivantes de taille de complexité viabilité Source Pierre Grenot, CIML

35 Multicouleurs Les cellules Natural Killer (NK) A partir de la population hétérogène dont on a exclu les doublets et les cellules mortes, Cellules NKT CD3/CD19+ NK1.1+ Analyse du marquage NK spécifique NK1.1+ CD3- CD19- Cellules NK CD3/CD19- NK1.1+ Cellules B collantes / NK1.1+ Macrophages CD3/CD19++ Cellules Non-T-NK NK-B Cellules T CD3/CD19+ NK1.1- NK1.1- Cellules B CD3/CD19++ CD3/CD19- NK1.1- Source Pierre Grenot, CIML

36 Multicouleurs Les cellules Natural Killer (NK) Identification des sous-groupes de cellules NK sur la base de l expression CD27/CD11b CD11b-/CD27+ (immature) CD11b+/CD27+ (mature) CD11b+/CD27- (senescent) Hayakawa et al, J immunol 2006) La majorité des cellules NK de la rate sont en différenciation terminale ou sénescentes Cette population représente un évènement rare : indispensable de réaliser des acquisitions suffisantes pour avoir des représentations statistiques correctes Source Pierre Grenot, CIML

37 CELLULES SOUCHES Sang Système Nerveux Os Moelle Osseuse Vaisseaux Muscle Foie Pancréas as Peau Coeur Rein Les cellules souches sont des cellules multipotentes : elles pourraient être chez l adulte une source cellulaire permettant la reconstruction de multiples tissus Holden C. and Vogel G., Science, 296:2126, 2002

38 Cellules Souches

39 Cellules souches Mise en évidence des SP Mise en évidence des SP (moelle osseuse de souris) Marquage au Hoechst (laser UV ou violet) Ré-émission : bleu ET rouge Représentation bidimensionnelle S-G2M Acquisition: évènements dans la fenêtre d analyse PI- Cellules souches AVEC PI AVEC FENETRE Hoechst bleu G0-G1 Hoechst bleu Red blood cells + debris Hoechst rouge Hoechst rouge Détection : capables d effluer le Hoechst Possibilité de typer ces cellules sur le premier laser Goodell M.A. et al., The Goodell Laboratory :

40 Cellules souches Mise en évidence des SP Mise en évidence de l efflux A549 (ABCG2++) (canaux responsables de l efflux) + PI + PI + Cyclo A + PI + Vérapamil Hoechst Bleu Region % Gated X Geo Mean R R Region % Gated X Geo Mean R R Region % Gated X Geo Mean R R Hoechst Rouge Source Barani et al.

41 Cellules souches Mise en évidence des SP Les cellules SP ont été mises en évidences dans de multiples tissus chez l adulte Coeur Poumon Intestin grêle Moelle Osseuse Muscle squelettique Cerveau Asakura et al., Exp.Hematol., 30: 1339, 2002 Hoechst Red

42 Cellules souches SP Muscle Hematopoietic Adipocytes Osteoblastes Endotheliales Seale P., Rudnicki M.A., Dev. Biol., 218: 115, 2000

43 Cellules Souches Mise en évidence de cellules souches murines Cellules souches et progéniteurs Progéniteurs myéloïdes Eosinophiles Neutrophiles Macrophages Monocytes Lymphocytes T et B (Lin-) Lin-/Sca-/c-Kit+ Plaquettes / Mégacaryocytes Globules Rouges Source Sandrine Sarrazin, CIML

44 Maintenant, c est à vous. Cellules souches neurales transgéniques Cellules souches du cerveau responsables de tumeurs

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