Bordetella pertussis et Bordetella parapertussis



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Adhésines Adhésion cellules trachéales ciliées Sécrétions toxines Destruction et élimination des cellules ciliées, accumulation mucus, réaction inflammatoire

Bordetella pertusis et parapertusis Diagnostic direct Recherche de la bactérie dans les échantillons cliniques Culture Immunofluorescence PCR Dosage ac Hly Diagnostic indirect Dosage d agglutinines Anticorps anti toxines par immunoempreinte ou immunoenzymologie Indispensable Résurgence chez le nourrisson non vacciné Existence de formes graves Diagnostic rapide Antibiothérapie adaptée précoce Mesures prophylactiques

Devant un tableau typique de quintes de toux (chant du coq) ou une toux prolongée > 8 jours (durée moyenne 50 jours) Toux parfois émétisante Chez l enfant le nourrisson l adulte Devant un tableau atypique chez le nourrisson Apnées Cyanoses Accès hypoxique Existence de cas similaires ou d une toux non fébrile de plus de 8 jours dans l entourage du patient.

A réaliser tôt dans la maladie phase catharrhale Recueil des sécrétions rhinopharyngées profondes Par aspiration douce Àl aide d une sonde molle et fine Possible sur «piège à cellules» Acheminement rapide au laboratoire Pas de milieu de transport commercialisé.

Culture sur milieu de Bordet Gengou au sang Au sang de cheval le plus frais possible (+ chocolat et Mc conkey) Incubation à35 36 en aérobiose, en atmosphère humide Apparition en 3 7 jours de colonies hémolytiques Incubation minimale 7 jours Identification difficile en routine car limitée à Aspect des colonies: 0.2 mm de, luisantes, grisâtre Petit coccobacille à Gram négatif, immobile, asporulés, isolés ou associé en paire (phase I) ou forme longue et filamenteuse après repiquage successifs (phase II et III) Oxydase + Identification confirmée par IF anti B.pertussis ou anti B.parapertussis.

Rapide IF directe sur lame Identification par un antisérum spécifique et fluorescent des bactéries présentes dans les sécrétions nasopharyngées Manque de Se Manque de Spécificité Choix de l Ac primordial Technique non recommandée

Amplification d une portion du gène codant pour la toxine de pertussis (PCR classique ou en temps réel). Rapide Spécifique de B. pertussis Plus Se que culture Diagnostic possible chez patients vaccinés, sous antibiothérapie préalable, stades tardifs Mais Délicate àréaliser Onéreuse Non remboursée Nécessite un labo spécialisé et le personnel adéquat PCR classique

Diagnostic microbiologique % de positivité Avantages Inconvénients Culture 34 Isolement Souche Diag de certitude PCR 91 Rapide Sensible Spécifique Longue,peu Se Labo spécialisé Uniquement Labo spécialisé Sérologie 63 Réalisation facile Intérêt /classe Ig Diag rétrospectif

Diagnostic rétrospectif Nécessité de 2 sérums prélevés à4 semaines d intervalle (précoce en phase de toux) Méthode la plus couramment utilisée mais performances variables selon technique utilisée Rarement utile chez le nourrisson car Ac souvent tardive et jusqu à 6 mois : présence d Ac maternels Utilisation d un test sérologique rapide Analyse comparative sérum pré partum/sérum précoce de la mère au début maladie nourrisson.

Dosages d agglutinines Rapide Remboursé Simple Faible cout Sensible uniquement pour sujets infectés ayant été vaccinés dans l enfance Plus recommandé Dosage immunoenzymatique ou par immunoempreinte Plus sensible et plus spécifiques Utilisation d Ag purifiés PT (B.pertussis) Adénylcyclase hémolysine: AC Hly (B. pertussis et B. parapertussis + B. bronchoseptica) Test immunoempreinte Test immunoenzymatique (ELISA)

Infection si: Augmentation (infecté pour la première fois) ou diminution (infectés vaccinés dans l enfance) du taux d AC dans le sérum tardif IgA ou IgG anti PT les plus spécifiques IgA anti PT signe l infection mais dans 30% des cas uniquement IgG anti PT > 125 unités ELISA sur un seul sérum > 3 semaines après début toux et > 1 an (3 ans) vaccination Séroconversion précoce chez la mère