LES HELMINTHES PARASITES

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1 LES HELMINTHES PARASITES INRB avril 2009 Philippe Gillet Department of Clinical Sciences, Unit of Tropical Laboratory Medicine

2 HELMINTHES Trématodes Cestodes S. haematobium S. mansoni F. hepatica D. latum Taenia spp. H. nana (diminuta) Nématodes A. lumbricoides E. vermicularis Ancylostomidae S. stercoralis

3 Notes (1)

4 Notes (2) CARACTERISTIQUES IMPORTANTES POUR LE DIAGNOSTIC DES HELMINTHES PRARASITESP Organisme Ancylostoma duodenale Délais entre infestation et apparition des œufs dans les selles ou les urines (maturation du ver) jours Estimation de la production journalière re (œufs par femelle adulte) Estimation de l'espérance de vie de l'helminthe 1-9 ans Anisakis spp. sans objet sans objet Ascaris lumbricoides 2-3 mois ans (20 ans ) Capillaria aerophila +/- 1 an Capillaria hepatica 2-3 semaines 1-4 mois Capillaria philippinensis Clonorchis sinensis 1-4 semaines jusqu'à plus de 25 ans Diphyllobothrium latum jours jusqu à 30 ans Echinococcus granulosus sans objet sans objet sans objet Enterobius vermicularis +/- 3 semaines +/- 500 jusqu à 55 jours (mais auto infestation)

5 Notes (3)

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8 HELMINTHES Trématodes Cestodes S. haematobium S. mansoni F. hepatica D. latum Taenia spp. H. nana (diminuta) Nématodes A. lumbricoides E. vermicularis Ancylostomidae S. stercoralis

9 Trématodes : Cycles résumés Furcocercaires dans l eau, qui traversent le derme Œufs dans les selles, les urines ou les crachats Métacercaires sur des plantes aquatiques Développement des œufs dans l eau miracidium Développement Développement du dans le miracidium mollusque dans : un Sporocyste, mollusque rédies, sporocystes, cercaires rédies, cercaires Métacercaires dans des poissons Métacercaires dans des crustacés

10 Schistosoma haematobium (1) Où : Afrique, Moyen Orient, Indes. Hôtes intermédiaires : Bulinus spp. Production : œufs/jours/ ufs/jours/ adulte. Diagnostic : Sédiment urinaire. Filtration urines. Sérologie (Ac. dans sérum). s

11 Schistosoma haematobium (2) Prélèvement : Urine!!! PériodicitP riodicité!!! Min 10 ml Maxi : heures. Stress vessie. Fin de la miction Sédimentation Filtration

12 Schistosoma haematobium (3) Morphologie des œufs : µm m x µm. Symétrique, ovoïde, un pôle bien arrondi. Coque lisse, très s mince Contenu embryonné : Miracidium (parfois mobile). Gris jaune. Caractéristique ristique : Petit éperon terminal. NB : Œufs non alcoolo-acido acido résistants (colorés s en bleu au Ziehl-Neelsen).

13 S. haematobium (4) oeuf avec miracidium mobile

14 S. haematobium (5) miracidium mobile

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16 Schistosoma mansoni (1) Où : Afrique et Amérique tropicale, Moyen Orient. Hôtes intermédiaires : Biomphalaria spp. Planorbis spp. Production : œufs/jours/ ufs/jours/ adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Kato-Katz Katz (selles). Biopsie rectale. Sérologie (Ac. dans sérum). s

17 Schistosoma mansoni (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde et asymétrique. Coque lisse, très s mince. Contenu embryonné : Miracidium (parfois mobile). Gris jaune. Caractéristique ristique : Éperon latéral au- dessus du pôle arrondi. NB : Œufs alcoolo-acido acido résistants r (colorés s en Rouge au Ziehl- Neelsen).

18 Schistosoma mansoni (3)

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20 Schistosoma intercalatum (1) Où : Afrique (Congo,( R Congo, République Centrafricaine, Gabon, Nigeria, Cameroun, Burkina Faso, Mali,...) [petits foyers limités à quelques villages]. Hôtes intermédiaires : Bulinus spp. Production : œufs/jours/ ufs/jours/ adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Kato-Katz Katz (selles). Biopsie rectale. Sérologie (Ac. dans sérum). s

21 Schistosoma intercalatum (2) Morphologie des œufs : µm m x µm Symétrique, un pôle arrondi, un pôle pointu Coque lisse, très s mince. Contenu embryonné : Miracidium (parfois mobile). Transparent ou jaune clair. Caractéristique ristique : Éperon latéral au-dessus du pôle arrondi.

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23 Schistosoma japonicum (1) Où : Extrême orient (Chine, Philippine, ). (Mékong pour S. mekongi) Hôtes intermédiaires : Oncomelania spp. Production : œufs/jours/ ufs/jours/ adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Kato-Katz Katz (selles). Biopsie rectale. Sérologie (Ac. dans sérum). s

24 Schistosoma japonicum (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde. Coque lisse, très s mince. Contenu embryonné : Miracidium (parfois mobile). Transparent ou jaune clair. Caractéristiques ristiques : petit éperon latéral dans une dépression. d NB : Œufs alcoolo-acido acido résistants r (colorés s en Rouge au Ziehl- Neelsen).

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26 Examen direct des selles (urines). Vers Adultes. Hôtes intermédiaires.

27 Fasciola hepatica (1) Où : Cosmopolite Hôtes intermédiaires : Lymnea spp. Production : Lente (début 11 semaines p.i.), / jours par adulte mais irréguli gulière. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Examen d un d liquide de tubage duodénal. Sérologie (Ac. 95 % sensibilité 2-4 semaines p.i., négatif n à partir d un d an p.i.).!!! Oeufs de passage!!!

28 Fasciola hepatica (2) Morphologie des œufs : µm x µm. Ovoïde, symétrique. Coque lisse, mince. Contenu jamais embryonné : (masse foncée). Jaune brun. Caractéristique : Opercule (ouvrable) Fasciolidae

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30 Opisthorchis spp. (1) Où : Mer de Chine (Japon, Corée, Chine, ). Hôtes intermédiaires : 1. Mollusques d eau douce (Bithynia spp., Alocinma spp., Parafossarulus spp.) 2. Poissons d eau douce Production : œufs/ jours/adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Examen d un d liquide de tubage duodénal. Sérologie (sérum)

31 Opisthorchis spp. (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Amphore asymétrique (ovoïde). Coque lisse, mince. Contenu embryonné : (miracidium). Jaune brun. Caractéristiques ristiques : Opercule (+ protubérance rance au pôle opposé) Heterophyes spp. Metagonimus spp Opistorchidae/Heterophyidae

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33 Paragonimus spp. (1) Où : Sud-est Asiatique, Afrique, Amériques. Hôtes intermédiaires : 1. Mollusques d eau douce Production :. Diagnostic : Examen des crachats. Sérologie (sérum) (Thiaridae spp., Oncomelania spp., ) 2. Crustacés d eau douce

34 Paragonimus spp. (2) Prélèvement : Crachat Pas salive. Blanchâtre à jaunâtre purulent (parfois sang) min 5 ml. répéter 2 à 3 x si négatifn Examen direct mais crachat

35 Paragonimus spp. (3) Examen direct du crachat. après s liquéfaction + sédimentations Exclure TB

36 Paragonimus spp. (4) 5 ml de crachat dans un tube à centrifuger à fond conique. + 5 ml d une d KOH ou NaOH à 1 % (p/v). Mélangez vigoureusement durant 1 minute. Une heure de repos, Re-mélangez vigoureusement le tube durant 1 minute. Centrifugez le tube à rpm (700 g) ) pendant 5 minutes. Eliminez le surnageant Observez culot au microscope (objectif 10x).

37 Paragonimus spp. (5) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde ou irrégulier. Coque d éd épaisseur inégale. Contenu jamais embryonné : (masse foncée). Jaune brun ou gris, foncé. Caractéristique ristique : Opercule (ouvrable)

38

39 Examen direct des selles (crachat). Vers Adultes. Hôtes intermédiaires.

40 HELMINTHES Trématodes Cestodes S. haematobium S. mansoni F. hepatica D. latum Taenia spp. H. nana (diminuta) Nématodes A. lumbricoides E. vermicularis Ancylostomidae S. stercoralis

41 Diphyllobothrium latum (1) Où : Cosmopolite, régions r froides et tempérées. es. Hôtes intermédiaires : 1. Cyclops spp. 2. Poisson (eau douce). Production : Très s haute œufs/ jours/adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. [Concentration de Ritchie (selles)]. [Segments gravides (selles)].!!! Sparganose pas d œd œufs dans les selles!!!

42 Diphyllobothrium latum (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde. Coque lisse, très s mince. Contenu jamais embryonné : (masse foncée). Assez foncé. Caractéristiques ristiques : Opercule bien visible, parfois protubérance rance pôle opposé

43 Diphyllobothrium spp. (3) Segments : largeur > longueur Œufs concentrés au centre

44

45 Taenia saginata Où : Cosmopolite (peu hindous). Hôtes intermédiaires : Bovidés. Production : Diagnostic : Très s haute (jusqu (jusqu à /jours/adulte). Segments gravides (selles 2 mois pi). Examen direct des selles (œufs).( [Concentration de Ritchie (œufs)].( [Tape-test].

46 Taenia solium Où : Cosmopolite (peu musulmans). Hôtes intermédiaires : Porcins (HOMME( HOMME). Production : Diagnostic : Très s haute (jusqu (jusqu à /jours/adulte). Segments gravides (selles 2 mois pi). Examen direct des selles (œufs).( [Concentration de Ritchie (œufs)].( [Tape-test].!!! Cysticercose : Homme hôte intermédiaire sérologie (Ac dans le sérum s ou LCR).

47 Taenia spp. Segments 1 1,5 cm longueur > largeur Morphologie des œufs : µm. Rond ou ovale. Coque épaisse, Contenu : larve hexacanthe. Gris foncé. Caractéristiques : Larve hexacanthe, crochets visibles, parfois entouré d une membrane périovulaire.

48 Taenia saginata proglottis

49 Différentiation T.saginata/T.solium Taenia saginata ramifications 5-10 mètres Taenia solium 7-16 ramifications 3-5 mètres

50

51 Hymenolepis nana Vampirolepis nana (1) Où : Cosmopolite. Hôtes intermédiaires : AUCUN. ( auto infestation) Production : Diagnostic : Haute. Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles).

52 Hymenolepis nana Vampirolepis nana (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde ou rond, symétrique. Coque lisse, mince. Contenu : embryophore, 2 bouchons polaires + filaments. Transparent, gris très s clair. Caractéristiques ristiques : Larve hexacanthe, crochets bien visibles

53

54 Hymenolepis diminuta (1) Où : Cosmopolite (zoonose, rongeurs). Hôtes intermédiaires : Arthropodes Production : Haute. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles).

55 Hymenolepis diminuta (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Rond, symétrique. Coque lisse, épaisse + couronne de filaments. Contenu : embryophore, SANS bouchons polaires. Brun, brun-jaune. Caractéristiques ristiques : Larve hexacanthe, crochets bien visibles

56

57 Examen direct des selles Différentiation des Taenia spp.

58 PAUSE

59 HELMINTHES Trématodes Cestodes S. haematobium S. mansoni F. hepatica D. latum Taenia spp. H. nana (diminuta) Nématodes A. lumbricoides E. vermicularis Ancylostomidae S. stercoralis

60 Enterobius vermicularis (1) Où : Cosmopolite (zones tempérées). es). Hôtes intermédiaires : Aucun ( ( auto infestation). Production : 500 oeufs/jours/ adulte). Diagnostic : Ver adulte (nuit, 8-15 mm). Tape-test = test de Graham (matin).

61 Enterobius vermicularis (2) Morphologie des œufs (tape test) : µm m x µm. Asymétrique, tranche de pain. Coque transparente, double ligne. Contenu embryonné (larve ou masse granuleuse). Très s transparent. Caractéristiques ristiques : Tranche de pain, transparent.

62

63 Ascaris lumbricoides (1) Où : Cosmopolite. Hôtes intermédiaires : Aucun (mais maturation de 18 jours pas auto infestation). Production : Diagnostic : Très s haute ( œufs/jours/ ufs/jours/ adulte). Ver adulte (stress). Examen direct des selles (2 mois p.i). [Concentration de Ritchie (selles)]. Radiographie (mâle) Sérologie (phase de migration 2 mois).

64 Ascaris lumbricoides (2) Examen macroscopique

65 ète AscarisOligoch lumbricoides (3) Examen macroscopique

66 Ascaris lumbricoides (4) Morphologie des œufs fécondf condés: µm m x µm. Ovale, symétrique. Coque épaisse, lisse incolore + couche albumineuse brune et mamelonnée. e. Contenu embryonné (masse granuleuse centrale, rarement larve). Brun jaunâtre. Caractéristiques ristiques : Œufs semi-décortiqu cortiqués s moins colorés, sans couche externe.

67 Ascaris lumbricoides (5) Morphologie des œufs nonfécondés: µm m x µm. Ellipsoïdale ou irréguli gulière. Coque mince, lisse incolore + couche albumineuse brune et mamelonnée. e. Contenu : Granulations très réfringentes. Brun jaunâtre. Caractéristiques ristiques : Œufs semi-décortiqu cortiqués s moins colorés, sans couche externe.

68

69 Trichuris trichiura (1) Où : Cosmopolite. Hôtes intermédiaires : Aucun (mais maturation de 10 jours pas auto infestation). Production : œufs/jours/ ufs/jours/ adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Ver adulte dans selles (3-5 cm).

70 Trichuris trichiura (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. symétrique, «CITRON». Coque épaisse, lisse, double ligne. Contenu non embryonné (granuleux). Brun jaune orange, foncé. Caractéristiques ristiques : A chaque pôle 1 bouchon transparent, arrondi, saillant.

71 Trichuris trichiura morphologies (3)

72

73 Tape test. Vers Adultes. Examen direct des selles. Œufs,

74 Ancylostomidae (1) Où : Cosmopolite. Hôtes intermédiaires : Aucun (mais maturation de 10 jours nécessaire pas d auto d infestation). Production : œufs/jours/ adulte. Diagnostic : Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Remarque : Perte et consommation de 0,02 (N.a.) 0,2 ml (A.d.) de sang/jours/ver.

75 Ancylostomidae (2) Morphologie des œufs : µm m x µm. Ovoïde, symétrique. Coque mince, lisse, simple. Contenu : 4 (A.d.) à 8 (N.a.) blastomères gris-brun. Incolore. Caractéristiques ristiques : En général g œufs (blastomère, parfois morula ou embryon), rarement larve rhabditoïdes des.

76 Ancylostomidae (3) larve rhabditoïde de Cavité buccale longue, Bulbe

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78 Strongyloides stercoralis (1) Où : tropique ou sub-tropique (sporadique mine, tunnel). Hôtes intermédiaires : Aucun ( ( auto infestation). Production : Diagnostic : Remarque : transformation en larves dans l intestin. l Examen direct des selles. Concentration de Ritchie (selles). Baermann. Infestation opportuniste (VIH).

79 Strongyloides stercoralis (2) larve rhabditoïde de µm m x µm. Cavité buccale courte (⅓ à ½ de la largeur de la larve). Bulbe. Extrémit mité pointue.

80 Strongyloides stercoralis (3) larve rhabditoïde de

81 Strongyloides stercoralis (4) oeuf

82 S. stercoralis larve rhabditoïde de

83 Strongyloides stercoralis (5) larve filariforme

84 Différentiation (œufs) S. stercoralis - Ancylostomidae 50 µm S.stercoralis 65 µm 80 µm Ancylostomidae >100 µm Trichostrongylus spp. Acarina spp.

85 Différentiation S. stercoralis Ancylostomidae larves rhabditoïdes

86 Stades < 1 heure Strongyloides stercoralis Forme fréquente Ancylostoma duodenale Necator americanus Forme rare 12 heures Larves rhabditoïdes qq heures Généralement 225 µm de long sur 18 µm (minimum 200 µm, maximum 300 µm) CAVITE BUCCALE COURTE Bulbe Queue peu pointue Forme rare Généralement 250 µm de long sur 16 µm (minimum 200 µm, maximum 300 µm) CAVITE BUCCALE PROFONDE Bulbe Queue très pointue Forme très rare 10 jours Larves strongyloïdes Ou Larves filariformes Généralement entre 500 µm sur 22 µm (minimum 500 µm, maximum 550 µm) CAVITE BUCCALE COURTE Sans bulbe Queue bifide Généralement 700 µm de long sur 22 µm (minimum 500 µm, maximum 700 µm) CAVITE BUCCALE PROFONDE Sans bulbe Queue pointue

87

88 Vers Adultes. Examen direct des selles. Œufs, Larves rhabditoïdes, Larves filariformes.

89 PAUSE

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