L oïdium de la vigne Erysiphe necator. Claire NEEMA Protection des Plantes et Pathologie Végétale Montpellier supagro

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1 L oïdium de la vigne Erysiphe necator Claire NEEMA Protection des Plantes et Pathologie Végétale Montpellier supagro

2 Vue synoptique de la classification des champignons Phase trophique sans paroi Phase trophique avec paroi Production de zoospores Pas de phase mobile 2 flagelles 1 flagelle Plasmodiophoromycota Plasmode coenocytique production de zoospores 2 flagelles Oomycota hyphes coenocytiques paroi cellulosique Chytridiomycota Hyphes coenocytiques paroi chitineuse Zygomycota Hyphes coenocytiques paroi chitineuse hyphes cloisonnés paroi chitineuse Ascomycota Basidiomycota Ascospores Basidiospores Organismes fongiformes Champignons vrais Adapté de P. Lepoivre

3 Eumycota - Ascomycota ~ espèces (>3 000 genres) ordre le plus important dans les Eumycota comprend l'ex phylum des Deuteromycota Ecologie 50 % des espèces sont mutualistes (lichens, mycorhizes) Milieux marins, aquatiques et terrestres Beaucoup de saprophytes, parasites (plantes, animaux, insectes) Caractéristiques de la classe Thalle unicellulaire (levures) ou filamenteux cloisonné Organismes haploïdes Reproduction sexuée asques et ascospores asexuée conidies Asques nus ou contenus dans un ascocarpe 3

4 Ascocarpes et classification des Ascomycètes Asques nus Cléistothèce Périthèce Asques agrégés et contenus dans un ascocarpe clos Apothécie Asques agrégés dans un ascocarpe en forme de coupe Archiascomycètes Ascomycètes primitifs 8 à n ascospores/asques Pyrénomycètes Ascomycètes évolués 8 ascospores/asques Discomycètes Ascomycètes évolués 8 ascospores/asques ex: Agent des cloques ex: Oïdiums, tavelures ex: Sclérotinioses

5 Ecologie des champignons Relations trophiques entre plantes et champignons phytopathogènes Biotrophes (parasite obligatoire) se développent en association étroite avec des cellules vivantes. Des hyphes spécialisés (haustorium) pénètrent la paroi cellulaire et induisent l'invagination de la membrane cellulaire ex: agents des oïdium, rouilles des céréales, agents de mildiou Néctrophes produisent des enzymes ou toxines pour tuer les cellules de la plante hôte en avant de la zone d'infection. Les hyphes se développent entre les cellules mortes. ex: agent de la pourriture grise B. cinerea Hémibiotrophes se développent initialement en biotrophe en association avec des cellules vivantes mais deviennent plus ou moins rapidement nécrotrophes. ex: Agent de la nécrose du collet des crucifères, d'anthracnoses 5

6 Maladies causées par les Ascomycota (et les Deuteromycota) Agents d'oïdiums Causée par des champignons de l'ordre des Erysiphales (Pyrénomycètes) o o Parasites obligatoires biotrophes Feutrage blanc sur les feuilles, bourgeons, fruits 21 genres, 440 espèces infectant > 40,000 espèces de plantes (dicotylédones surtout) Souvent spécificité d hôte étroite (qqes espèces polyphages) Sporulation abondante (> conidies à partir d un symptôme) Cléistothèce Oïdium de la vigne Uncinula necator

7 Colonisation des tissus végétaux : compartiments cellulaires occupés Infection des cellules épidermiques Les champignons qui causent les maladies tu type «blanc» ou «oïdium» se multiplient à la surface de la plante et envoient des haustoria dans les cellules épidermiques. Sphaerotheca pannosa sur rosier (d après Infection de blé par l'oïdium du blé Nutrition utilise les cellules épidermiques

8 (défense activée ou inhibée) (hôte) Panstruga, Curr. Op. Plant. Biol. 2003

9 Cycle asexué de Erysiphe necator Adhésion conidie Pied d ancrage Croissance mycélium + haustoria Sporulation (conidiophores) 9

10 Cycle parasitaire d un champignon phytopathogène Inoculum primaire Dispersion Infection primaire Inoculum Conservation Dispersion Infection Epidémie = Conservation de l'inoculum + Infection + Dispersion

11 Cycle infectieux de base d'un champignon pathogène Inoculum Infection Dépôt de spores sur les tissus Pénétration des tubes germinatifs Colonisation des tissus POLLUTION LATENCE Premier symptômes Sporulation, dispersion PERIODE INFECTIEUSE

12 Cycle biologique Oïdium de la vigne Uncinula necator Dispersion par le vent source:

13 Le cycle biologique de l oïdium de la vigne Cléistothèce Ascospores Oïdies Contaminations primaires Maturation des cléistothèces. Mycélium latent dans les bourgeons Cléistothèces sur l'écorce Débourrement. Symptômes de "drapeaux". Conidiophore Infection des bourgeons néoformés. Entrée en latence du mycélium Reproduction sexuée. Dispersion Contaminations secondaires (oïdies) Développement sur tous les organes verts. Cléistothèce (organe de conservation) retard maturation des baies baies avec pellicule éclatée

14 La température est le facteur majeur : sur croissance du parasite optimum = 22 à 25 C (Tmin = 6 C et Tmax = C) L eau (état liquide et vapeur) l eau liquide Pluies l humidité (>75%) Les facteurs du climat - germination - éjection des ascospores (conta. primaires) - dispersion des conidies (conta. secondaires) germination, développement, sporulation. Le vent - dispersion des spores mais sur Hygrométrie La lumière directe (U.V.B.) 1 ères taches, face inférieure des feuilles, développement à l intérieur de la végétation, (mais développement en face sup. en fin d été!?)

15 Cycle parasitaire Proportion de tissu malade Dispersion Infection Incubation latence Inoculum primaire Temps

16 Résistance ontogénique -La variation due aux conditions climatiques sur le déroulement de l épidémie est principalement due aux variations sur la croissance de la plante plutôt que l effet de la température sur l agent pathogène. - La sévérité de la maladie est corrélée avec l émergence précoce des feuilles le développement de rameaux secondaires et le nombre de feuilles infectées à la floraison - Influence de la vigueur dépend de la pression d inoculum

17 Diversité génétique de E. necator -Deux groupes génétiques : groupe A en début d épidémie groupe B plutôt en fin d épidémie -Diversité génétique plutôt faible - Sous populations clonales ou fortement diversifiées - Pas de corrélation avec la biologie du champignon