PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7

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1 GUIDE DE L UTILISATEUR PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 À utiliser avec le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor (Protocole automatique) Catalog Number Publication Number Revision A Réf. attestation ABI 29/03 03/11 [Fin de validité : voir le certificat à l adresse METHODES ALTERNATIVES D ANALYSE POUR L AGROALIMENTAIRE Certifié par AFNOR Certification Réservé aux tests d échantillons alimentaires et environnementaux.

2 Information in this document is subject to change without notice. LIFE TECHNOLOGIES CORPORATION AND/OR ITS AFFILIATE(S) DISCLAIM ALL WARRANTIES WITH RESPECT TO THIS DOCUMENT, EXPRESSED OR IMPLIED, INCLUDING BUT NOT LIMITED TO THOSE OF MERCHANTABILITY, FITNESS FOR A PARTICULAR PURPOSE, OR NON-INFRINGEMENT. TO THE EXTENT ALLOWED BY LAW, IN NO EVENT SHALL LIFE TECHNOLOGIES AND/OR ITS AFFILIATE(S) BE LIABLE, WHETHER IN CONTRACT, TORT, WARRANTY, OR UNDER ANY STATUTE OR ON ANY OTHER BASIS FOR SPECIAL, INCIDENTAL, INDIRECT, PUNITIVE, MULTIPLE OR CONSEQUENTIAL DAMAGES IN CONNECTION WITH OR ARISING FROM THIS DOCUMENT, INCLUDING BUT NOT LIMITED TO THE USE THEREOF. Limited Use Label License: environmental testing, quality control/quality assurance testing, food and agricultural testing The purchase of this product conveys to the purchaser the limited, non-transferable right to use the purchased amount of the product (a) to perform internal research for the sole benefit of the purchaser; and (b) for environmental testing, quality control/quality assurance testing, food and agricultural testing, including reporting results of purchaser's activities in environmental testing, quality control/quality assurance testing, food and agricultural testing for a fee or other commercial consideration. No other right is hereby granted expressly, by implication, or by estoppel. This product is for environmental testing, quality control/quality assurance testing, food and agricultural testing and research purposes only. The purchase of this product does not grant the purchaser any additional rights, including (without limitation) the right to transfer or resell the product in any form or the right to use the product as a therapeutic agent or diagnostics test component. For information on obtaining additional rights, please contact outlicensing@lifetech.com. Human diagnostic uses require a separate license from Roche Molecular Systems, Inc. TRADEMARKS: The trademarks mentioned herein are the property of Life Technologies Corporation or their respective owners. AOAC is a trademark and Performance Tested Methods is a service mark of AOAC International. Stomacher is a registered trademark of Seward Limited, UK. Whirl-pak is a registered trademark of Wheatherby/Nasco, Inc. Translated from English Publication Number Revision C Life Technologies Corporation. All rights reserved.

3 Sommaire Informations sur le produit Description du produit Matériel et équipement Contenu du kit Matériel non inclus dans le kit PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H Avant de commencer Différences générales entre les workflows PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Workflows Workflow du kit A : Enrichissement pendant 6 à 8 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Workflow du kit B : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Workflow du kit C : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 375 g Protocole Enrichissement de l échantillon alimentaire Étape suivante Protocole à mettre en œuvre avec le workflow A : Enrichissement pendant 6 à 8 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Protocole à mettre en œuvre avec le workflow B : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Protocole à mettre en œuvre avec le workflow C : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 375 g Résolution des problèmes ANNEXE A Informations générales Présentation Certification AOAC Performance Tested Methods sm Validation ISO Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 3

4 Sommaire ANNEXE B Sécurité Sécurité chimique Manipulation spécifique des produits chimiques Sécurité en matière de dangers biologiques Documentation et support Obtention d une FDS Obtention de certificats d analyse Obtention d assistance Support relatif à la sécurité alimentaire Garantie limitée Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

5 Informations sur le produit IMPORTANT! Avant d utiliser ce produit, lire les informations décrites dans Annexe B, «Sécurité» page 27 et s assurer de les avoir bien comprises. ATTENTION! E. coli O157:H7 est un organisme relevant du niveau de biosécurité 2 (BSL-2). Il convient d être vigilant lors de la manipulation d échantillons susceptibles de contenir E. coli O157:H7. Le personnel du laboratoire doit être correctement formé à la manipulation d agents pathogènes avant d être autorisé à dépister E. coli O157:H7 dans des échantillons. Le personnel du laboratoire doit porter les équipements de protection appropriés, notamment des lunettes de protection, un masque facial, des vêtements/blouses de laboratoire et des gants. Des précautions extrêmes doivent être prises lors de la manipulation d objets tranchants contaminés. L accès au laboratoire doit être restreint pendant les travaux. Les déchets doivent être éliminés conformément à la législation locale et nationale en vigueur. Description du produit Le PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing prépare des ADN et des ARN microbiens de haute qualité à partir de bouillons de culture à l aide d un système de préparation d échantillons automatique, le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor (Cat. no ). Pour plus d informations générales, se reporter à Annexe A, page 25. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 5

6 Informations sur le produit Matériel et équipement Matériel et équipement Contenu du kit Le PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing (Cat. no ) contient des réactifs suffisants pour 300 réactions. Les composants du kit et leurs conditions de conservation sont décrits dans le tableau ci-dessous. Pour plus d informations sur le contenu du kit, se reporter à la section «Matériel fourni» de la notice qui accompagne le kit. Élément Quantité ou volume Conservation Lysis Buffer 6 flacons, 50 ml/flacon Température ambiante (23 ± 5 C) Magnetic Particles 6 tubes, 1,5 ml/tube 5 ± 3 C Binding Solution (Isopropanol) 3 flacons vides Température ambiante (23 ± 5 C) Wash Buffer Concentrate 6 flacons, 26 ml/flacon Température ambiante (23 ± 5 C) Elution Buffer 3 flacons, 25 ml Température ambiante (23 ± 5 C) Proteinase K (PK) Buffer 3 flacons, 50 ml Température ambiante (23 ± 5 C) Proteinase K (20 mg/ml) 3 tubes, 1,25 ml En-dessous de -18 C Remarque : Des composants peuvent être expédiés séparément, selon la configuration et les conditions de conservation. 6 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

7 Informations sur le produit Matériel et équipement Matériel non inclus dans le kit Le tableau suivant indique le matériel et l équipement nécessaires pour l utilisation du PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit (mais non inclus). Sauf indication contraire, bon nombre des composants indiqués sont disponibles auprès des principaux fournisseurs de matériel de laboratoire (MLS, Major Laboratory Supplier). Équipement, consommables et réactifs Élément Source Équipement Bloc chauffant, 37 C Microcentrifugeuse de laboratoire MagMAX Express-96 Deep Well Magnetic Particle Processor 96-Well Magnetic-Ring Stand Homogénéisateur, mélangeur de laboratoire Stomacher 400 Vortex MLS Eppendorf 5415D ou équivalent Life Technologies Cat. no Life Technologies Cat. no. AM10050 Seward #0400/001/AJ ou équivalent Consommables Gants jetables MLS Embouts de micropipettes, résistants aux aérosols MLS Micropipettes : MLS À piston À air comprimé Multicanal MagMAX Express-96 Deep Well Tip Combs Life Technologies Cat. no MagMAX Express-96 Deep Well Plates Life Technologies Cat. no MagMAX Express-96 Standard Plates Life Technologies Cat. no Sacs à filtre de type Whirl-Pak, 25,4 cm x 38,1 cm Nasco #B01488WA ou équivalent (10 po x 15 po), 2,6 kg (92 oz.) (sacs Stomacher avec tamis) Sacs à filtre de type Whirl-Pak, 15,2 cm x 22,8 cm Nasco #B01348WA ou équivalent (6 po x 9 po), 680 g (24 oz.) (sacs Stomacher avec tamis) Sacs à filtre de type Whirl-Pak, 15,2 cm x 22,8 cm Nasco #B01297WA ou équivalent (6 po x 9 po), 680 g (24 oz.) (sacs Stomacher sans tamis) Microtubes, PCR-Clean, 1,5 ml MLS Réactifs Bouillon cœur-cervelle (BCC) MLS Eau peptonée tamponnée (EPT) MLS Nuclease-Free Water Life Technologies Cat. no. AM9938 Éthanol à 95 % MLS Isopropanol à 100 % MLS L utilisation du matériel indiqué ici avec ce kit a été validée. Les résultats peuvent varier en cas d utilisation de produits de substitution d autres fournisseurs. MLS Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 7

8 Informations sur le produit Matériel et équipement 8 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

9 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Avant de commencer Avant de procéder à l extraction des échantillons : Régler la température du bloc chauffant sur 37 C. Préparer les réactifs suivants : Binding Solution Ajouter approximativement 35 ml d isopropanol à 100 % dans le flacon Binding Solution vide. Étiqueter le flacon de manière à indiquer que de l isopropanol y a été ajouté. Wash Buffer Ajouter 74 ml d éthanol à 95 % dans le flacon Wash Buffer Concentrate, bien mélanger, puis étiqueter le flacon de manière à indiquer que de l éthanol y a été ajouté. Magnetic Particles Incuber le tube Magnetic Particles à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes, puis mélanger au vortex pendant approximativement 10 secondes ; conserver à température ambiante (23 ± 5 C) jusqu au moment de l utilisation. IMPORTANT! Un précipité blanc peut parfois se former dans le tube Magnetic Particles. Il ressort des expériences en matière d extraction que la formation du précipité n affecte pas les performances du système, à condition que ce précipité soit dissout avant utilisation. En cas de formation d un précipité, incuber le tube à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes. Si, au bout de 10 minutes, le précipité blanc n est pas complètement dissout, un temps d incubation plus long et des températures supérieures ( 50 C) peuvent être appliqués. Mélanger ensuite au vortex jusqu à ce que la solution soit complètement remise en suspension. Remarque : Les Magnetic Particles sont le réactif limitatif du PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit. Vérifier que la quantité de Magnetic Particles disponible est suffisante pour les échantillons à traiter. 25 ou 30 µl de billes magnétiques par échantillon sont nécessaires, selon le workflow (voir les workflows décrits aux pages 11, 12 et 13 pour connaître les volumes de Magnetic Particles requis par échantillon). Pour le traitement de plusieurs échantillons dans les workflows nécessitant le traitement Proteinase K, nous recommandons la préparation d un mélange Proteinase K Buffer : a. Prémélanger 10 µl de Proteinase K (20 mg/ml) et 200 µl du Proteinase K Buffer pour chaque échantillon (utiliser un récipient de volume adapté propre pour le mélange). b. Multiplier les volumes par le nombre d échantillons plus 10 % pour le surplus. c. Bien mélanger pour disperser la Proteinase K dans le Proteinase K Buffer. d. Utiliser immédiatement ou conserver sur glace jusqu au moment de l utilisation. Selon le workflow suivi, se reporter aux procédures décrites aux pages 15, 18 ou 20. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 9

10 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Différences générales entre les workflows PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Différences générales entre les workflows PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Ce document présente les protocoles de trois workflows différents, dont les différences générales sont décrites dans le tableau suivant. Pour déterminer le protocole d enrichissement à suivre, déterminer la quantité de l échantillon et choisir un workflow en fonction du milieu et du temps d enrichissement préférés. Protocole Quantité d échantillon Milieu Temps d enrichissement Volume d enrichissement requis pour la préparation de l échantillon Type d aliment/ Proteinase K requis Script du MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor Workflow d enrichissement A Workflow d enrichissement B Workflow d enrichissement C 25 g ou 25 ml d aliment 25 g ou 25 ml d aliment 375 g d aliment Bouillon cœurcervelle (BCC) préchauffé Eau peptonée tamponnée (EPT) 6 à 8 h (8 à 10 h pour les jus) 1 ml # Produits d origine animale : avec Proteinase K Produits d origine non animale : sans Proteinase K 16 à 20 h 200 µl Produits d origine animale : avec Proteinase K (facultatif) Produits d origine non animale : sans Proteinase K EPT 16 à 20 h 1 ml # Tous les aliments : avec Proteinase K DWPrepSEQGP DWPrepSEQGN DWPrepSEQPK DWPrepSEQDL DWPrepSEQGP IMPORTANT! Le workflow d enrichissement C (volume d échantillon = 375 g d aliment) a été inclus dans le cadre des études de validation AOAC mais pas dans les études de validation AFNOR. Tous les enrichissements sont incubés à 42 ± 1 C. Pour faciliter les procédures, les échantillons peuvent être enrichis en BCC pendant 16 heures au maximum. # Culotter et remettre en suspension le tampon approprié. Les produits d origine animale comprennent du bœuf haché, des découpes de bœuf, du poisson et du lait. Transférer directement vers la plaque à puits profonds ; aucun culot bactérien n est requis. 10 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

11 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Workflows Workflows Workflow du kit A : Enrichissement pendant 6 à 8 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Le workflow de préparation d échantillons décrit ci-dessous s applique aux procédures commençant à partir de la page 15. Enrichissement de l E. coli O157:H7 (page 14) Étape 1 : Ajouter 225 ml de BCC préchauffé à 25 g (ou 25 ml) d échantillon alimentaire. Étape 2 : Homogénéiser l échantillon alimentaire. Étape 3 : Incuber à 42 ± 1 C pendant 6 à 8 h dans des conditions statiques (8 à 10 h pour les jus). Protocole de lyse (page 15) Étape 1 : Transférer 1 ml d échantillon dans un tube de 1,5 ml. Étape 2 : Centrifuger le tube à g pendant 3 minutes environ. Étape 3 : Retirer et éliminer le surnageant aussi vite que possible. Étape 4a : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer). Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. Étape 4b : Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) Ajouter 300 µl du Lysis Buffer. Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. Étape 5 : Transférer l échantillon dans une plaque de microtitration à 96 puits profonds stérile. Étape 6 : Préparer les plaques de lavage et d élution MagMAX Express. Étape 7a : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Sélectionner DWPrepSEQGP sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Étape 7b : Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) Sélectionner DWPrepSEQGN sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Étapes 8a-e : Charger les plaques, puis appuyer sur Start. Étape 9 : Pour les produits d origine animale, passer à l étape 10. Pour tous les autres types d aliments, passer aux étapes 12a d. Étape 10 : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Après 20 minutes, ajouter 300 µl du Lysis Buffer à la plaque de lyse. Charger la plaque, puis appuyer sur Start. Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) Étape 11 : Après 18 minutes, distribuer le Binding Mix : a. Mélanger au vortex les Magnetic Particles pendant environ 10 s. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 300 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument, puis appuyer sur Start. Étape 12 : Après 18 minutes, distribuer le Binding Mix : a. Mélanger au vortex les Magnetic Particles pendant environ 10 s. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 180 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument, puis appuyer sur Start. Étape 13 : Après 30 minutes, la préparation des échantillons est terminée. Le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d'élution. Poursuivre la PCR ou sceller la plaque et la stocker à une température inférieure à -18 C. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 11

12 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Workflows Workflow du kit B : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml Le workflow de préparation d échantillons décrit ci-dessous s applique aux procédures commençant à partir de la page 18. Enrichissement de l E. coli O157:H7 (page 14) Étape 1 : Ajouter 225 ml d EPT à 25 g (ou 25 ml) d échantillon alimentaire. Étape 2 : Homogénéiser l échantillon alimentaire. Étape 3 : Incuber à 42 ± 1 C pendant 16 à 20 h dans des conditions statiques. Protocole de lyse (page 18) Étape 1 : Transférer 200 µl d échantillon dans une plaque de microtitration à 96 puits profonds stérile. Étape 2a : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer). Étape 2b : Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) Ajouter 300 µl du Lysis Buffer. Étape 3 : Préparer les plaques de lavage et d élution MagMAX Express. Étape 4a : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Sélectionner DWPrepSEQPK sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Étape 4b : Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) Sélectionner DWPrepSEQDL sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Étapes 5a e : Charger les plaques sur le MagMAX Express magnetic particle processor, puis appuyer sur Start. Étape 6 : Pour les produits d origine animale, passer à l étape 7. Pour tous les autres types d aliments, passer à l étape 8. Étape 7 : Pour les produits d origine animale (avec Proteinase K) Après 20 minutes, ajouter 200 µl du Lysis Buffer à la plaque de lyse. Charger la plaque, puis appuyer sur Start. Étape 8 : Après 18 minutes, distribuer le Binding Mix : Pour tous les autres types d aliments (sans Proteinase K) a. Mélanger au vortex les Magnetic Particles pendant environ 10 s. b. Ajouter 25 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 325 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument, puis appuyer sur Start. Étape 9 : Après 30 minutes, la préparation des échantillons est terminée. Le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d élution. Poursuivre la PCR ou sceller la plaque et la stocker à une température inférieure à -18 C. 12 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

13 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Workflows Workflow du kit C : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 375 g Le workflow de préparation d échantillons décrit ci-dessous s applique aux procédures commençant à partir de la page 20. Enrichissement de l E. coli O157:H7 (page 14) Étape 1 : Ajouter ml d EPT à 375 g d échantillon alimentaire. Étape 2 : Homogénéiser l échantillon alimentaire. Étape 3 : Incuber à 42 ±1 C pendant 16 à 20 h dans des conditions statiques. Protocole de lyse (page 20) Étape 1 : Transférer 1 ml d échantillon dans un tube de 1,5 ml. Étape 2 : Centrifuger le tube à g pendant 3 minutes environ. Étape 3 : Retirer et éliminer le surnageant aussi vite que possible. Étape 4 : Ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer). Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. Étape 5 : Transférer l échantillon dans une plaque de microtitration à 96 puits profonds stérile. Étapes 6a-b : Préparer les plaques de lavage et d élution MagMAX Express. Étape 7 : Sélectionner DWPrepSEQGP sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor, puis appuyer sur Start. Étapes 8a-e : Charger les plaques sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor, puis appuyer sur Start. Étape 9 : Après 20 minutes, distribuer le Lysis Buffer : a. Ajouter 300 µl du Lysis Buffer. b. Charger la plaque dans l instrument, puis appuyer sur Start. Étape 10 : Après 18 minutes, distribuer le Binding Mix : a. Mélanger au vortex les Magnetic Particles pendant environ 10 s. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 300 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument, puis appuyer sur Start. Étape 11 : Après 30 minutes, la préparation des échantillons est terminée. Le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d élution. Poursuivre la PCR ou sceller la plaque et la stocker à une température inférieure à -18 C. Non inclus dans les études NF Validation Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 13

14 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole Protocole Enrichissement de l échantillon alimentaire 1. Ajouter à l échantillon alimentaire le milieu d enrichissement approprié selon le workflow E. coli O157:H7 choisi parmi les options suivantes : Workflow du kit A Pour l enrichissement pendant 6 à 8 heures de 25 g ou 25 ml d aliment (enrichissement pendant 8 à 10 heures pour les jus), ajouter 225 ml de bouillon cœur-cervelle (BCC) préchauffé (42 ± 1 C). Workflow du kit B Pour l enrichissement pendant 16 à 20 heures de 25 g ou 25 ml d aliment, ajouter 225 ml d eau peptonée tamponnée (EPT). Workflow du kit C Pour l enrichissement pendant 16 à 20 heures de 375 g d aliment, ajouter 1,5 l d EPT. Remarque : Pour 375 g d échantillons alimentaires, utiliser uniquement l enrichissement pendant 16 à 20 heures. 2. Homogénéiser l échantillon alimentaire : Pour 375 g d échantillons alimentaires (workflow de l Enrichissement C), utiliser un sac à filtre Stomacher de 25,4 cm x 38,1 cm (10 po x 15 po) (Nasco #B01488WA ou équivalent) et le malaxer 5 à 10 fois pour réduire les morceaux d aliment. Pour les aliments solides (tels que les ailes de poulet), utiliser un sac à filtre Stomacher et mélanger à la main en malaxant le sac 5 à 10 fois. Pour les types d aliments grossiers (tels que la viande, la volaille et les fruits de mer), utiliser un sac à filtre Stomacher de 15,2 cm x 22,8 cm (6 po x 9 po) (Nasco #B01348WA ou équivalent) et mélanger à la vitesse réglée sur Norm pendant 1 minute (mélangeur de laboratoire Stomacher 400 ou équivalent). Pour les types d aliments mous (comme la mayonnaise), utiliser un sac Stomacher standard de 15,2 cm x 22,8 cm (6 po x 9 po) (Nasco #B01297WA ou équivalent) et mélanger à la vitesse réglée sur Norm pendant 1 minute (mélangeur de laboratoire Stomacher 400 ou équivalent). Pour les liquides ou les aliments en poudre, utiliser un sac Stomacher standard de 15,2 cm x 22,8 cm (6 po x 9 po) (Nasco #B01297WA ou équivalent) et mélanger à la main. 3. Incuber l échantillon alimentaire à 42 ± 1 C dans des conditions statiques pendant les durées suivantes : Workflow du kit A 6 à 8 heures (8 à 10 heures pour les jus) pour permettre l obtention de résultats le même jour. Pour faciliter les procédures, l échantillon peut être enrichi en BCC pendant 16 heures au maximum. Workflow du kit B 16 à 20 heures. Workflow du kit C 16 à 20 heures. Remarque : Le temps d incubation minimum pour l enrichissement est de 6 heures pour le Workflow du kit A et de 16 heures pour les Workflows du kit B et C. Étape suivante Passer au workflow du kit approprié selon le volume de l échantillon, le temps d enrichissement et le type d aliment. 14 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

15 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole Protocole à mettre en œuvre avec le workflow A : Enrichissement pendant 6 à 8 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml IMPORTANT! Lors de la manipulation des échantillons, respecter les techniques d asepsie appropriées afin d éviter toute contamination croisée. 1. Transférer 1 ml d échantillon dans un microtube de 1,5 ml. 2. Centrifuger le tube de g pendant 3 minutes environ. 3. Retirer et éliminer le surnageant aussi vite que possible afin d éviter la dissipation du culot. Remarque : Si aucun culot n est visible après la centrifugation (comme c est le cas, par exemple, dans les jus filtrés), laisser ~50 µl d échantillon dans le tube pour éviter l aspiration du culot bactérien. IMPORTANT! Pour les échantillons contenant une couche grasse après la centrifugation, indiquée comme une couche supérieure distincte, éliminer cette couche grasse en procédant comme suit : Pour les couches grasses liquides (par exemple, dans les échantillons de lait) : 1. Utiliser une micropipette P1000 pour éliminer le gras de la surface supérieure en aspirant avec un mouvement circulaire sans perturber le culot. 2. Poursuivre le prélèvement du surnageant de la surface supérieure jusqu à son élimination totale. 3. Mettre au rebut le surnageant dans un récipient à déchets. ou Pour les couches grasses solides (par exemple, dans les échantillons de préparations pour nourrissons) : 1. Utiliser une micropipette pour déloger délicatement la couche grasse sans perturber le culot. 2. Verser le surnageant et la couche grasse en un seul mouvement rapide. 3. Aspirer le surnageant de la surface supérieure à l aide d une micropipette jusqu à ce qu il soit éliminé en intégralité. 4. Mettre au rebut le surnageant dans un récipient à déchets. 4. Lyser le culot : a. Pour les produits d origine animale (tels que le bœuf haché, les découpes de bœuf, le poisson et le lait), ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer ; voir page 9). Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. b. Pour tous les autres types d aliments, ajouter 300 µl de Lysis Buffer. Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. 5. Transférer l échantillon dans une plaque deep-well stérile 96 puits (DW) (Cat. no ). 6. Préparer les plaques de lavage et d élution : a. Pour préparer la plaque d élution, ajouter 140 µl de l Elution Buffer dans les puits de la plaque de microtitration à 96 puits correspondant à la plaque deep-well 96 puits contenant l échantillon. b. Pour préparer les plaques de lavage 1 et 2, ajouter 300 µl du Wash Buffer dans les puits de la plaque deep-well 96 puits correspondant à la plaque deep-well 96 puits contenant l échantillon. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 15

16 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole 7. Sélectionner le script : Pour les produits d origine animale, sélectionner le programme DWPrepSEQGP sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Appuyer sur Start. Pour tous les autres types d aliments, sélectionner le programme DWPrepSEQGN sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Appuyer sur Start. 8. Charger les plaques selon la mesure indiquée. Vérifier l orientation {A1 à A1}. a. Tip combs Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. b. Plaque d élution (140 µl de l Elution Buffer) Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. c. Wash plate 2 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deepwell à 96 puits ; appuyer sur Start. d. Wash plate 1 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits profonds ; appuyer sur Start. e. Lysis plate (échantillon du mélange PK Buffer ou du Lysis Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. 9. Pour les produits d origine animale, passer à l étape 10. ou Pour tous les autres types d aliments, passer aux étapes 12a d. 10. Pour les produits d origine animale utilisant le script DWPrepSEQGP uniquement : Après 20 minutes, le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor invite l utilisateur à distribuer le Lysis Buffer. Pour distribuer le Lysis Buffer : a. Ajouter 300 µl du Lysis Buffer dans chaque puits. b. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. 11. Pour les produits d origine animale utilisant le script DWPrepSEQGP uniquement : Après 18 minutes, l instrument invite l utilisateur à distribuer le Binding Mix. Pour distribuer le Binding Mix : a. Incuber le tube Magnetic Particles à 37 ± 1 C pendant 10 minutes environ, puis mélanger au vortex pendant 10 secondes environ jusqu à la remise en suspension complète. IMPORTANT! Un précipité blanc peut parfois se former dans le tube Magnetic Particles. Il ressort des expériences en matière d extraction que la formation du précipité n affecte pas les performances du système, à condition que ce précipité soit dissout avant utilisation. En cas de formation d un précipité, incuber le tube à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes. Si, au bout de 10 minutes, le précipité blanc n est pas complètement dissout, un temps d incubation plus long et des températures supérieures ( 50 C) peuvent être appliqués. Mélanger ensuite au vortex pour remettre en suspension complètement. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. 16 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

17 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole c. Ajouter 300 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. Passer à l étape Pour les types d aliments qui ne sont pas d origine animale utilisant le script DWPrepSEQGN : a. Incuber le tube Magnetic Particles à 37 ± 1 C pendant 10 minutes environ, puis mélanger au vortex pendant 10 secondes environ jusqu à la remise en suspension complète. IMPORTANT! Un précipité blanc peut parfois se former dans le tube Magnetic Particles. Il ressort des expériences en matière d extraction que la formation du précipité n affecte pas les performances du système, à condition que ce précipité soit dissout avant utilisation. En cas de formation d un précipité, incuber le tube à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes. Si, au bout de 10 minutes, le précipité blanc n est pas complètement dissout, un temps d incubation plus long et des températures supérieures ( 50 C) peuvent être appliqués. Mélanger ensuite au vortex pour remettre en suspension complètement. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 180 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. Passer à l étape Quand la préparation des échantillons est terminée, le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d élution. Poursuivre la PCR ou sceller la plaque et la stocker à une température inférieure à -18 C. IMPORTANT! Lors de l analyse des échantillons d ADN, suivre les conseils suivants : Pour la PCR, ajouter 30 µl d éluat au dosage lyophilisé. Pour plus d informations, se reporter au MicroSEQ E. coli O157:H7 Detection Kit User Guide (Pub. no ). Si des gouttes d huile sont visibles comme une couche supérieure dans les échantillons sur la plaque d élution, prélever l éluat au centre du tube (en-dessous de la couche supérieure ; se reporter à page 22 pour obtenir les instructions relatives au pipetage de l éluat sur les échantillons alimentaires à forte teneur en graisse ou en huile). Si la plaque d élution contient des billes magnétiques, la placer sur un 96-Well Magnetic Ring Stand pendant une minute au moins avant de prélever l éluat pour la PCR. Si la plaque d élution contient des résidus particulaires de l échantillon alimentaire qui ne sont pas éliminés à l aide du 96-Well Magnetic Ring Stand, centrifuger alors la plaque d élution à g environ pendant approximativement 30 secondes pour culotter les résidus particulaires. Éviter les résidus particulaires lors du prélèvement de l éluat pour la PCR. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 17

18 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole Protocole à mettre en œuvre avec le workflow B : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 25 g ou 25 ml IMPORTANT! Lors de la manipulation des échantillons, respecter les techniques d asepsie appropriées afin d éviter toute contamination croisée. 1. Transférer 200 µl d échantillon dans une plaque deep-well stérile 96 puits. 2. Lyser l échantillon : Pour les produits d origine animale (tels que le bœuf haché, les découpes de bœuf, le poisson et le lait), ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer ; voir page 9). Pour tous les autres types d aliments, ajouter 300 µl de Lysis Buffer. 3. Préparer les plaques de lavage et d élution : a. Pour préparer la plaque d élution, ajouter 140 µl de l Elution Buffer dans les puits de la plaque deepwell à 96 puits correspondant à la plaque de microtitration à 96 puits profonds contenant l échantillon. b. Pour préparer les plaques de lavage 1 et 2, ajouter 300 µl du Wash Buffer dans les puits de la plaque deep-well à 96 puits correspondant à la plaque deep-well à 96 puits contenant l échantillon. 4. Sélectionner le script : Pour les produits d origine animale, sélectionner le programme DWPrepSEQPK sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Appuyer sur Start. Pour tous les autres types d aliments, sélectionner le programme DWPrepSEQDL sur le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor. Appuyer sur Start. 5. Charger les plaques dans le MagMAX Express Magnetic Particle Processor selon la mesure indiquée. Vérifier l orientation {A1 à A1}. a. Tip combs Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. b. Plaque d élution (140 µl de l Elution Buffer) Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. c. Wash plate 2 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. d. Wash plate 1 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. e. Lysis plate (échantillon du mélange PK Buffer ou du Lysis Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. 6. Pour les produits d origine animale, passer à l étape 7. ou Pour tous les autres types d aliments, passer à l étape Pour les produits d origine animale utilisant le script DWPrepSEQPK uniquement. Après 20 minutes, le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor invite l utilisateur à distribuer le Lysis Buffer. a. Ajouter 200 µl du Lysis Buffer dans chaque puits. b. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. 18 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

19 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole 8. Après 18 minutes, le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor invite l utilisateur à distribuer le Binding Mix. a. Incuber le tube Magnetic Particles à 37 ± 1 C pendant 10 minutes environ, puis mélanger au vortex pendant 10 secondes environ jusqu à la remise en suspension complète. IMPORTANT! Un précipité blanc peut parfois se former dans le tube Magnetic Particles. Il ressort des expériences en matière d extraction que la formation du précipité n affecte pas les performances du système, à condition que ce précipité soit dissout avant utilisation. En cas de formation d un précipité, incuber le tube à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes. Si, au bout de 10 minutes, le précipité blanc n est pas complètement dissout, un temps d incubation plus long et des températures supérieures ( 50 C) peuvent être appliqués. Mélanger ensuite au vortex pour remettre en suspension complètement. b. Ajouter 25 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 325 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. 9. Quand la préparation des échantillons est terminée, le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d élution. Conserver à une température inférieure à -18 C. IMPORTANT! Lors de l analyse des échantillons d ADN, suivre les conseils suivants : Pour la PCR, ajouter 30 µl d éluat au dosage lyophilisé. Pour plus d informations, se reporter au MicroSEQ E. coli O157:H7 Detection Kit User Guide (Pub. no ). Si des gouttes d huile sont visibles comme une couche supérieure dans les échantillons sur la plaque d élution, prélever l éluat au centre du tube (en-dessous de la couche supérieure ; se reporter à page 22 pour obtenir les instructions relatives au pipetage de l éluat sur les échantillons alimentaires à forte teneur en graisse ou en huile). Si la plaque d élution contient des billes magnétiques, la placer sur un 96-Well Magnetic Ring Stand (Cat. no. AM10050) pendant une minute au moins avant de prélever l éluat pour la PCR. Si la plaque d élution contient des résidus particulaires de l échantillon alimentaire qui ne sont pas éliminés à l aide du 96-Well Magnetic Ring Stand, centrifuger alors la plaque d élution à g environ pendant approximativement 30 secondes pour culotter les résidus particulaires. Éviter les résidus particulaires lors du prélèvement de l éluat pour la PCR. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 19

20 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole Protocole à mettre en œuvre avec le workflow C : Enrichissement pendant 16 à 20 heures pour un échantillon alimentaire de 375 g Remarque : Le workflow du kit C n a pas été inclus dans les études de validation AFNOR. IMPORTANT! Lors de la manipulation des échantillons, respecter les techniques d asepsie appropriées afin d éviter toute contamination croisée. 1. Transférer 1 ml d échantillon dans un microtube de 1,5 ml. 2. Centrifuger le tube de g pendant 3 minutes environ. 3. Retirer et éliminer le surnageant aussi vite que possible afin d éviter la dissipation du culot. Remarque : Si aucun culot n est visible après la centrifugation (comme c est le cas, par exemple, dans les jus filtrés), laisser ~50 µl d échantillon dans le tube pour éviter l aspiration du culot bactérien. IMPORTANT! Pour les échantillons contenant une couche grasse après la centrifugation, indiquée comme une couche supérieure distincte, éliminer cette couche grasse en procédant comme suit : Pour les couches grasses liquides (par exemple, dans les échantillons de lait) : 1. Utiliser une micropipette P1000 pour éliminer le gras de la surface supérieure en aspirant avec un mouvement circulaire sans perturber le culot. 2. Poursuivre le prélèvement du surnageant de la surface supérieure jusqu à son élimination totale. 3. Eliminer le surnageant dans un récipient à déchets. ou Pour les couches grasses solides (par exemple, dans les échantillons de préparations pour nourrissons) : 1. Utiliser une micropipette pour déloger délicatement la couche grasse sans perturber le culot. 2. Verser le surnageant et la couche grasse en un seul mouvement rapide. 3. Aspirer le surnageant de la surface supérieure à l aide d une micropipette jusqu à ce qu il soit éliminé en intégralité. 4. Eliminer le surnageant dans un récipient à déchets. 4. Ajouter 210 µl du mélange Proteinase K Buffer (10 µl de PK µl de PK Buffer ; voir page 9). Bien mélanger pour remettre en suspension le culot. 5. Transférer l échantillon dans une plaque deep-well à 96 puits stérile (Cat. no ). 6. Préparer les plaques de lavage et d élution : a. Pour préparer la plaque d élution, ajouter 140 µl de l Elution Buffer dans les puits de la plaque de microtitration à 96 puits correspondant à la plaque deep-well à 96 puits profonds contenant l échantillon. b. Pour préparer les plaques de lavage 1 et 2, ajouter 300 µl du Wash Buffer dans les puits de la plaque deep-well à 96 puits correspondant à la plaque deep-well à 96 puits contenant l échantillon. 7. Sélectionner le programme DWPrepSEQGP sur le MagMAX Express- 96 Magnetic Particle Processor. Appuyer sur Start. 20 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

21 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole 8. Charger les plaques dans le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor selon la mesure indiquée. Vérifier l orientation {A1 à A1}. a. Tip combs Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. b. Plaque d élution (140 µl de l Elution Buffer) Dans la plaque de microtitration à 96 puits ; appuyer sur Start. c. Wash plate 2 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. d. Wash plate 1 (300 µl du Wash Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. e. Lysis plate (échantillon du mélange PK Buffer) Dans la plaque deep-well à 96 puits ; appuyer sur Start. 9. Après 20 minutes, le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor invite l utilisateur à distribuer le Lysis Buffer. a. Ajouter 300 µl du Lysis Buffer dans chaque puits. b. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. 10. Après 18 minutes, l instrument invite l utilisateur à distribuer le Binding Mix. a. Incuber le tube Magnetic Particles à 37 ± 1 C pendant 10 minutes environ, puis mélanger au vortex pendant 10 secondes environ jusqu à la remise en suspension complète ; conserver à température ambiante (23 ± 5 C) jusqu au moment de l utilisation. IMPORTANT! Un précipité blanc peut parfois se former dans le tube Magnetic Particles. Il ressort des expériences en matière d extraction que la formation du précipité n affecte pas les performances du système, à condition que ce précipité soit dissout avant utilisation. En cas de formation d un précipité, incuber le tube à 37 ± 1 C pendant approximativement 10 minutes. Si, au bout de 10 minutes, le précipité blanc n est pas complètement dissout, un temps d incubation plus long et des températures supérieures ( 50 C) peuvent être appliqués. Mélanger ensuite au vortex pour remettre en suspension complètement. b. Ajouter 30 µl de Magnetic Particles dans chaque puits. c. Ajouter 300 µl de Binding Solution dans chaque puits. d. Charger la plaque dans l instrument. Appuyer sur Start. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 21

22 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Protocole 11. Quand la préparation des échantillons est terminée, le message «Enjoy your DNA» s affiche à l écran. Retirer la plaque d élution. Conserver à une température inférieure à -18 C. IMPORTANT! Lors de l analyse des échantillons d ADN, suivre les conseils suivants : Pour la PCR, ajouter 30 µl d éluat au dosage lyophilisé. Pour plus d informations, se reporter au MicroSEQ E. coli O157:H7 Detection Kit User Guide (Pub. no ). Si des gouttes d huile sont visibles comme une couche supérieure dans les échantillons sur la plaque d élution, prélever l éluat au centre du tube (en-dessous de la couche supérieure ; se reporter à la figure suivante pour obtenir les instructions relatives au pipetage de l éluat sur les échantillons alimentaires à forte teneur en graisse ou en huile). Si la plaque d élution contient des billes magnétiques, la placer sur un 96-Well Magnetic Ring Stand (Cat. no. AM10050) pendant une minute au moins avant de prélever l éluat pour la PCR. Si la plaque d élution contient des résidus particulaires de l échantillon alimentaire qui ne sont pas éliminés à l aide du 96-Well Magnetic Ring Stand, centrifuger alors la plaque d élution à g environ pendant approximativement 30 secondes pour culotter les résidus particulaires. Éviter les résidus particulaires lors du prélèvement de l éluat pour la PCR. Pour pipeter l éluat d aliments à forte teneur en matières grasses ou en huile : Dans les échantillons alimentaires à forte teneur en matières grasses ou en huile, une couche d huile/de gras peut se former sur l échantillon d ADN sur la plaque d élution. Éviter la couche supérieure et prélever l échantillon pour la PCR dans la couche inférieure, en évitant toutes Magnetic Particles résiduelles (le cas échéant) au fond de la plaque. Éviter la couche supérieure contenant des matières grasses/de l huile. Prélever l échantillon destiné à la PCR en dessous de la couche de matière grasses/ d huile. Éviter les Magnetic Particles résiduelles (le cas échéant). 22 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

23 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Résolution des problèmes Résolution des problèmes Pour les tests d aliments Observation Cause possible Action recommandée L inhibition de la PCR est indiquée par l absence de détection de réaction IPC. Le culot bactérien est séparé du tube, ce qui complique son évitement pendant l aspiration. Le culot bactérien est difficile à remettre en suspension. Présence de Magnetic Particles sur la plaque d élution. La plaque d élution contient des résidus particulaires qui n ont pas été éliminés complètement de l échantillon alimentaire. Le surnageant n a pas été éliminé complètement de l échantillon avant l ajout du Lysis Buffer. L échantillon a été laissé sans surveillance avant l aspiration du surnageant, ce qui a entraîné la dissipation du culot bactérien. Le culot bactérien est très petit et difficile à voir. Le culot est trop dur. Éviter de perturber les Magnetic Particles pendant le transfert de l ADN élué vers le dosage lyophilisé. Facultatif : Centrifuger la plaque à environ g pendant approximativement 30 secondes pour culotter les Magnetic Particles au fond de la plaque. ou Placer la plaque d élution sur le 96-Well Magnetic-Ring Stand (Cat. no. AM10050) pendant le transfert de l échantillon vers le dosage lyophilisé. Éviter les résidus pendant le transfert de l ADN élué vers le dosage lyophilisé. Facultatif : Centrifuger la plaque à environ g pendant approximativement 30 secondes pour culotter les résidus alimentaires au fond de la plaque. S assurer qu un maximum de surnageant est éliminé sans perturber le culot bactérien. Répéter la centrifugation et éliminer le surnageant immédiatement après. Éliminer le surnageant soigneusement, en en laissant jusqu à 50 µl, afin d éviter l aspiration du culot. Vérifier qu une quantité maximale du culot est remise en suspension dans le Lysis Buffer ou le Proteinase K Buffer avant de poursuivre. Transférer l intégralité du contenu, y compris le culot partiellement remis en suspension (le cas échéant), sur la plaque de lyse. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 23

24 PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing: E. coli O157:H7 Résolution des problèmes 24 Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7

25 A Informations générales Présentation Utiliser le PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit pour préparer des échantillons alimentaires en vue du dépistage de E. coli O157:H7. Ce kit est destiné à la préparation de l extraction d ADN à partir de la plupart des types d aliments. La procédure du kit implique les tâches suivantes : l enrichissement des échantillons alimentaires dans lesquels dépister E. coli O157:H7 ; l extraction d acides nucléiques (automatisée avec le MagMAX Express-96 Magnetic Particle Processor). Pour extraire l ADN de E. coli O157:H7 d échantillons alimentaires, nous recommandons de suivre le protocole de lyse décrit à la page 15. Les volumes d échantillon suivants sont recommandés pour l extraction de l acide nucléique : À partir de 25 g ou 25 ml d aliments enrichis pendant 6 à 8 heures (8 à 10 heures pour les jus), commencer avec un volume d échantillon de 1 ml À partir de 25 g ou 25 ml d aliments enrichis pendant 16 à 20 heures, commencer avec un volume d échantillon de 200 µl À partir de 375 g d aliments enrichis pendant 16 à 20 heures, commencer avec un volume d échantillon de 1 ml Dans tous les cas, le volume d élution recommandé est de 140 µl. Guide de l utilisateur de PrepSEQ Nucleic Acid Extraction Kit for Food Testing : E. coli O157:H7 25