MANUEL DE PRELEVEMENT

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1 MANUEL DE PRELEVEMENT

2 1. INTRODUCTION ACCES ET SITUATION GEOGRAPHIQUE PRESENTATION DU LABORATOIRE OBJECTIFS DU MANUEL DE PRELEVEMENT 8 2. REFERENTIELS ET DOCUMENTS DE REFERENCE 8 3. LA PRESCRIPTION MEDICALE CRITERES DE CONFORMITE D UNE PRESCRIPTION DEMANDES D ANALYSES SANS ORDONNANCE ANALYSES DEMANDEES PAR LE MEDECIN (AJOUT D'ANALYSES APRES REALISATION DU PRELEVEMENT) ANALYSES DEMANDEES PAR LE PATIENT ANALYSES SPECIFIQUES (GENETIQUE, HORS NOMENCLATURE ) ANALYSES HORS NOMENCLATURE CONDITIONS DE PRELEVEMENT LE CONSENTEMENT PREALABLE DU PATIENT LES ANALYSES A JEUN LISTE DES ANALYSES NECESSITANT DES RENSEIGNEMENTS PARTICULIERS LISTE DES ANALYSES A CONDITIONS PARTICULIERES PRINCIPAUX EXAMENS SOUMIS A DES INTERFERENCES TESTS SPECIFIQUES ET DYNAMIQUES PRECONISATIONS POUR LES PRELEVEMENTS REALISES PAR LE PATIENT CHOIX DU MATERIEL PRELEVEMENTS SANGUINS ORDRE DES TUBES LES DIFFERENTS TYPES DE TUBES AIGUILLES PRELEVEMENTS URINAIRES (HORS BACTERIOLOGIE) LES DIFFERENTS DISPOSITIFS PRELEVEMENTS DE BACTERIOLOGIE REALISATION DES PRELEVEMENTS HABILITATIONS POUR LA REALISATION DES PRELEVEMENTS PRELEVEMENTS SANGUINS VEINEUX MATERIEL DEROULEMENT DU PRELEVEMENT SANGUIN VEINEUX PRELEVEMENTS BACTERIOLOGIQUES (DOCUMENT DE REFERENCE : REMIC) TEST RESPIRATOIRE A LA RECHERCHE D INFECTION A HELICOBACTER PYLORI 34 Page 2 sur 69

3 7. HYGIENE ET SECURITE CONDUITE A TENIR EN CAS D ACCIDENT AVEC EXPOSITION AU SANG (AES) CONDUITE A TENIR EN CAS D INCIDENT LORS DU PRELEVEMENT PRECONISATIONS EN CAS DE DIFFICULTE DE PRELEVEMENT CONDUITE A TENIR EN CAS D INCIDENT ÉLIMINATION DES DECHETS IDENTIFICATION DES ECHANTILLONS PRIMAIRES - IDENTITOVIGILANCE IDENTIFICATION DES PRELEVEMENTS PRELEVEMENTS PAR LES PRELEVEURS DU LABORATOIRE PRELEVEMENTS PAR LES PRELEVEURS EXTERNES ÉCHANTILLONS RECUEILLIS PAR LE PATIENT LA FICHE DE TRANSMISSION AUTRES DOCUMENTS D ACCOMPAGNEMENT TRANSMISSION DES PRELEVEMENTS AU LABORATOIRE TRANSPORT DES ECHANTILLONS DELAIS ET CONDITIONS D ACHEMINEMENT DES PRELEVEMENTS SANGUINS RECEPTION DES PRELEVEMENTS PAR LE LABORATOIRE CONTROLES A RECEPTION DES PRELEVEMENTS AU LABORATOIRE CRITERES D ACCEPTATION/REFUS DES PRELEVEMENTS TRAITEMENT DES DEMANDES D ANALYSES NON CONFORMES RESPONSABILITES LES DIFFERENTS CAS DE FIGURES PROCESSUS POST-ANALYTIQUE DELAIS POUR L AJOUT D UNE ANALYSE COMPLEMENTAIRE OU UNE RE-ANALYSE RENDU DES RESULTATS RESULTATS PATIENTS RESULTATS PRESCRIPTEURS 48 ANNEXE 1 : REFERENTIEL DES ANALYSES SANGUINES ET BIOCHIMIE URINAIRE REALISEES AU LABORATOIRE 49 ANNEXE 2 : PRINCIPALES ANALYSES REALISEES PAR LE LABORATOIRE BIOMNIS 65 ANNEXE 3 : PRELEVEMENTS DIVERS 67 Page 3 sur 69

4 1. AUTRES PRELEVEMENTS URINAIRES PRELEVEMENTS DE SELLES AUTRES TYPES DE PRELEVEMENTS 68 ANNEXE 4 : INSTRUCTIONS POUR LE DOSAGE DES MEDICAMENTS 69 Page 4 sur 69

5 1. INTRODUCTION 1.1 Accès et situation géographique Le laboratoire est situé au 2 rue Auguste Donna à Vienne. Il est ouvert du lundi au vendredi de 6 H 45 à 19 H 00 sans interruption et le samedi de 6 H 45 à 12 H 30. Un parking gratuit est à votre disposition du lundi au vendredi de 6 H 30 à 11 H 30 et pour une durée de 30 min. Pour accéder au parking, il suffit prendre un ticket à la borne d entrée qui sera validé lors de votre passage au laboratoire. Référence documentaire : PRE-ACC-DS-020 : Plan du parking Page 5 sur 69

6 La rue Donna est parallèle au quai Jean Jaurès. Elle part de la place Saint Maurice côté Rhône vers la place S t Pierre. Entrée du Laboratoire de Biologie Médicale Jacquet-Marchand Le laboratoire est situé à 2min à pied de l arrêt de bus S t Maurice via le Quai Jean Jaurès qui borde la N7 puis par la Place Saint-Maurice. De plus, il est situé à 7min à pied de la Gare de Vienne. Page 6 sur 69

7 1.2 Présentation du laboratoire Le laboratoire de biologie médicale Jacquet-Marchand, créé en 1964 par Ms. GELAIN et JALLES a pour mission l accueil des patients et la réalisation de leurs analyses biologiques. Le laboratoire est dirigé par Mesdames Bernadette JACQUET et Florence MARCHAND, biologistes médicaux coresponsables, assistées de leur équipe de biologistes, techniciens, secrétaires, infirmière et qualiticiens. Notre activité est la réalisation de tous types de prélèvements (y compris chez le nouveauné) et d analyses biologiques sur place dans le respect de notre démarche qualité. Notre personnel est recruté selon les exigences réglementaires et suit des formations tous les ans. Les prélèvements sont assurés sans rendez-vous de préférence le matin à jeun mais sont possibles toute la journée du lundi au samedi durant toute la période d ouverture du laboratoire. Veuillez consulter la rubrique infos patients pour savoir si vous devez être à jeun ou si le médecin vous a prescrit une analyse nécessitant de prendre rendez-vous. En cas de doute n hésitez pas à nous contacter. Les prélèvements sont également réalisés par les infirmier(e)s libéraux (ales) avec qui nous avons signé une convention. Ainsi, nous intervenons dans les différents domaines de la biologie médicale: Hématologie, Immuno-hématologie, Biochimie, Hémostase (examens de Coagulation), Sérologie, Marqueurs tumoraux, Hormonologie, Allergologie, Toxicologie, Bactériologie, Virologie, Parasitologie, avec fiabilité et exactitude grâce à des contrôles permanents, et une validation pertinente des résultats. Nous effectuons également des analyses vétérinaires. Le laboratoire participe à la veille sanitaire et assure une veille technologique avec les organismes de diagnostic permettant de connaître et acquérir des méthodes nouvelles. Les résultats sont transmis aux patients et aux prescripteurs soit au laboratoire, soit par poste soit par serveur de résultats. Notre savoir-faire et notre compétence sont à votre disposition. Nous exerçons notre activité en équipe à proximité de chez vous, en relation avec votre médecin et sommes très attachées au suivi et à la qualité relationnelle. Nous sommes toujours disponibles pour vous fournir des explications ou conseils. Page 7 sur 69

8 1.3 Objectifs du manuel de prélèvement Ce manuel reprend l ensemble des exigences du laboratoire en matière de prélèvement, rendu des résultats et conservation des échantillons ; soient les étapes pré-analytiques et post-analytiques décrites dans la norme ISO NF EN : 2012, désormais opposable aux laboratoires de biologie médicale engagés dans le processus d accréditation. Il est destiné aux préleveurs internes et aux IDE, au personnel technique et de secrétariat du laboratoire, mais aussi aux patients effectuant certains prélèvements eux-mêmes (urines, expectorations ). Il est basé sur les documents qualité en vigueur depuis plusieurs années au laboratoire. La modernisation constante de notre matériel et l innovation permanente de nos fournisseurs font que notre système qualité est en permanente évolution. Ce manuel est donc mis à jour au moins une fois par an. Les utilisateurs des prestations du laboratoire sont informés de toute modification importante par la voie habituelle (mail ou note d information). Vous trouverez en annexe le référentiel des analyses, reprenant pour chaque analyse les tubes préconisés, l état de jeûne, les conditions particulières de recueil, le délai de rendu des résultats et de réanalyse. 2. Référentiels et documents de référence Norme NF EN ISO : Laboratoires de Biologie Médiale Exigences particulières concernant la qualité et la compétence Ordonnance n du 13 janvier 2010 relative à la biologie médicale et les textes associés Loi n du 30 mai 2013 portant réforme de la biologie médicale Document SH GTA 01 du COFRAC «Guide technique d accréditation en biologie médicale» Document SH REF 02 du COFRAC «recueil des exigences spécifiques pour l accréditation des laboratoires de biologie médicale» Documents techniques des fournisseurs Page 8 sur 69

9 3. La prescription médicale 3.1 Critères de conformité d une prescription La prescription médicale doit contenir les informations nécessaires pour identifier le patient et le prescripteur autorisé. Elle doit également fournir les données cliniques pertinentes. Il convient que la feuille de prescription ou un équivalent électronique (dont la forme doit être déterminée en accord avec le laboratoire) prévoit les éléments suivants sans s'y limiter (code de déontologie médicale, code de certification des établissements de soins, norme ISO 15189), avec une homogénéité d écriture: - L'identification univoque du patient: nom (et nom de naissance), prénom, sexe, date de naissance, avec vérification de la carte d identité si nécessaire (groupes sanguins) - Le nom ou tout autre moyen d'identification unique du médecin et de toute personne habilitée légalement à prescrire des analyses (sage-femme, commission du permis de conduire, réquisition judiciaire) ainsi que le destinataire du compterendu (numéro d'inscription au tableau de l'ordre, numéro RPPS). Il convient que l'adresse du prescripteur soit associée à la prescription. - La date : de moins de 1an sauf indication précise (et moins de 6 mois pour la télétransmission) et la signature du prescripteur - La nature des analyses prescrites - Les renseignements cliniques pertinents relatifs au patient en particulir lors de dosage de médicaments ou de recherche bactériologique) et les objectifs de la demande. 3.2 Demandes d analyses sans ordonnance Analyses demandées par le médecin (ajout d'analyses après réalisation du prélèvement) Il sera demandé au prescripteur une nouvelle ordonnance avec la prescription supplémentaire et il lui sera indiqué si un nouveau prélèvement est nécessaire (voir délai de rajout d'une analyse dans le référentiel des analyses). En cas de nouveau prélèvement, un nouveau dossier sera créé (ainsi que lorsque le premier dossier est archivé). La demande complémentaire sera communiquée en technique par la secrétaire. Page 9 sur 69

10 3.2.2 Analyses demandées par le patient Le patient est informé que cette demande ne pourra faire l'objet d'un remboursement par la sécurité sociale. Après s'être assurée d'avoir bien compris la demande du patient, la secrétaire lui fera remplir le formulaire "demandes d'analyses formulées oralement". Lorsqu'il s'agit d'une analyse habituelle dont l'ordonnance n'est plus valable (type INR), le prélèvement et l'analyse seront réalisés, le patient signera ce même formulaire et le dossier mis en attente jusqu'à la réception d'une nouvelle prescription. Les tests HIV ne sont réalisés que sur ordonnance Analyses spécifiques (génétique, hors nomenclature ) Certaines analyses (en particulier les analyses génétiques) exigent le consentement écrit du patient sur un formulaire normalisé, rempli par le médecin, signé par le patient ou les deux. Vous pouvez télécharger les documents les plus fréquents sur le site du laboratoire ( ou sur le site du laboratoire Biomnis. Des renseignements complémentaires peuvent être demandés à l accueil Analyses hors nomenclature Certaines analyses ne bénéficient pas d'une prise en charge par l'assurance maladie et sont dites "hors nomenclature ". Leur montant reste donc à la charge du patient. Dans ce cas, le patient remplira le formulaire " demandes d analyses formulées oralement, HN " sur lequel il reconnaît avoir été informé qu'une partie des analyses reste à sa charge. Références documentaires : PRE-ACC-PR-003 : Procédure de prise en charge des demandes d examens. PRE-ACC-EN-009 : demandes d analyses formulées oralement, HN Page 10 sur 69

11 4. CONDITIONS DE PRELEVEMENT 4.1 Le consentement préalable du patient Les échantillons biologiques sont la propriété du patient. Dans ce cadre, la direction du laboratoire met en œuvre les moyens appropriés pour garantir la bonne conservation des échantillons biologiques conformément aux dispositions réglementaires (annexe C du GBEA), aux bonnes pratiques professionnelles, à la sécurité, à la réactovigilance, au code éthique et à l intégrité de la personne. L utilisation d échantillon biologique doit répondre à la seule nécessité de la prescription médicale. Toute autre utilisation comme la vérification ou validation de méthode d analyse sera faite après anonymisation. Les analyses à jeun Le jeûne signifie que le patient n a rien mangé depuis 12 H. Les valeurs de référence ayant été établies chez les patients à jeun le matin, il est préférable d effectuer les analyses le matin, après un repas léger la veille. Il est néanmoins possible de boire de l eau. en annexe). Les analyses qui ne nécessitent pas 12H de jeûne doivent le plus souvent être à distance d un repas léger (plus de 3 H ) (voir le référentiel des analyses Enfin, certains analytes suivent un rythme dit nycthéméral, c'est-à-dire que leur concentration varie de façon significative au cours de la journée. Ils doivent être impérativement prélevés le matin avant 10-11H pour pouvoir être interprétés. Vous trouverez sur ce tableau la liste des analyses nécessitant impérativement un jeune de 12 H (en rouge) et les analyses devant impérativement être prélevées le matin avant 11h (en bleu) : Acide urique ACTH glycosurie albuminurie Bilirubine Bilan lipidique BNP Myoglobine NFP Cortisol (vers 8H) C Peptide Cross Laps (CTX) PTH Phosphore Prolactine Électrophorèse des protéines Fer et saturation Glycémie et tests dynamiques Insuline Testosterone TSH Test Helicobacter pylori (Hélikit) Dans tous les cas, le jeune assure une meilleure qualité des sérums et plasmas. Page 11 sur 69

12 Dans un contexte d urgence, les analyses quelles qu elles soient peuvent être réalisées en dehors du jeûne car il n est plus question de réaliser un suivi : leur interprétation est immédiate. La prescription devra comporter une notification de l urgence. Un commentaire peut être joint au résultat. Références documentaires : PRE-ACC-DS-009 : liste des analyses à réaliser à jeun. Page 12 sur 69

13 4.2 Liste des analyses nécessitant des renseignements particuliers Voir aussi les fiches de préconisations pour les patients et dosages de médicaments. Pour les analyses effectuées en laboratoire spécialisé, appeler le laboratoire ou consulter le site du laboratoire Biomnis. ANALYSES Groupes sanguins ACI Hémostase (INR, TCK, Héparine) Dosage des médicaments NFP Hormonologie Suivi de grossesse RENSEIGNEMENTS A FOURNIR Nom identique à celui de la carte d identité (photocopie), nom de naissance pour les femmes mariées, date de naissance. Pour les femmes enceintes RH-, date d injection des γglobulines anti D (Rhophylac ) Nature de l anticoagulant, posologie, cible, relai AVK, type d héparine et heure d injection. Cofacteurs du TP, TCK : circonstances (saignement, thrombose, préopératoire), clinique (syndrome inflammatoire, grossesse) Nom du médicament et posologie, date et heure de la dernière prise, taille et poids. Raison de la prescription, pic résiduel ou plateau. Clinique, pathologie, chimiothérapie, traitement par héparine Date des dernières règles, traitement en cours, renseignements cliniques (FIV, GEU..). Degré d urgence. Date des dernières règles, vaccinations, injection de γglobulines anti D (Rhophylac ) Trisomie 21 Respect impératif des dates et feuilles de consentement indispensables (site Biomnis), photocopie indispensable du compte-rendu d échographie Analyses génétiques Consentement obligatoire (site Biomnis ou appeler le Marqueurs tumoraux Bactériologie* Hémoculture* Parasitologie, Mycologie* Spermiologie* Hélikit (Helicobacter pylori) laboratoire), fiche renseignements Préciser si diagnostic ou suivi (pathologie, traitement) A distance d un toucher rectal pour les PSA (> 15j) Site de prélèvement, heure de prélèvement, signes cliniques, but de l analyse (diagnostic, choix du traitement, contrôle efficacité..), traitement en cours, antécédents, voyage, immunodépression, Heure du prélèvement, température, frissons * : Se reporter aux fiches de préconisations (PRE-ACC-EN-007) Origine géographique ou séjours à l étranger, antécédents, signes cliniques, prophylaxie, immunodépression Voir questionnaire et préconisations Appeler le laboratoire pour prendre rendez vous et connaitre les conditions (à jeun, pas d antibiotiques depuis 1 mois ni pansements gastriques depuis 7j). Test sur 30 min Page 13 sur 69

14 4.3 Liste des analyses à conditions particulières ANALYSES Liste des analyses à jeun Hormonologie, T3-T4-TSH, PTH Prolactine Cortisol, CTX (Cross Laps) Médicaments (voir annexe 4) Héparinémie Recherche de microfilaires Recherche de trypanosome CONDITIONS A RESPECTER Voir rubrique Liste des analyses à jeun Le matin avant 11h Le matin, au moins 2 H après le lever et après repos de 20 minutes, à distance de tout traitement (psychotropes, antagoniste dopaminergique) Entre 8 et 10H (préciser pour le cortisol si prise de dexaméthasone la veille (prélèvement 8 H après). Avant la nouvelle prise pour obtenir le taux résiduel. Pour connaitre le taux au pic, se renseigner au laboratoire, la pharmacocinétique étant propre à chaque médicament et mode d administration. Héparine standard : au milieu des deux injections HBPM : 4-6 H après injection (selon molécule) Sur anticoagulant. Les horaires diffèrent en fonction de l origine géographique car espèces différentes : Loa Loa : entre 12 et 15 H, Wurscheria : entre 22 H et 4 H Après séjour en Afrique noire 4.4 Principaux examens soumis à des interférences Examens Acide urique Interférences médicamenteuses Interférences alimentaires Hypo-uricémiant : doser rapidement Cortisol Corticothérapie Jeune prolongé, stress augmentent le taux CK Injection IM, activité sportive intense : augmentation Thrombolytiques DDI Protéinogramme Hémostase Produits iodés, antibiotiques Préciser si anticoagulant Référence documentaire : PRE-ACC-DS-008 : Liste des interférences. Page 14 sur 69

15 4.5 Tests spécifiques et dynamiques Tests Hyperglycémie provoquée Dépistage du diabète gestationnel Test respiratoire pour recherche d Helicobacter pylori Test au Synacthène Conditions de prélèvement Prélever la glycémie à jeun sur tube gris (vert au laboratoire) Ingestion de 75g de glucose (100g pour la femme enceinte) en moins de 15 min Repos strict Prélèvement pour glycémie toutes les 30 min pendant 3 H Prélever la glycémie à jeun sur tube gris (vert au laboratoire) Ingestion de 75 g de glucose en moins de 15 min Repos strict Prélèvement de glycémie à 1 H et 2 H. Le patient ne doit pas boire, manger, fumer pendant au moins 6 H avant le test. Pas de traitement antibiotique depuis 4 semaines et d anti-sécrétoire depuis deux semaines. Le prélèvement est à faire au laboratoire (analyse de l air expiré avant et après prise d acide citrique). Prélever vers 8 H à jeun selon la prescription (cortisol, 17O H progestérone..). Réaliser l injection du Synacthène par l infirmière. Selon la prescription réaliser un nouveau prélèvement après 30 et/ou 60 min pour le Synacthène immédiat et après 30min à 24 H pour le Synacthène retard (voir prescription). Page 15 sur 69

16 4.6 Préconisations pour les prélèvements réalisés par le patient Tous ces prélèvements doivent être accompagnés d une fiche de renseignements cliniques (à télécharger en cliquant sur l analyse). Au laboratoire, le personnel d accueil a la responsabilité de donner les fiche de préconisation, le matériel et d identifier les échantillons. ANALYSE Matériel Préconisations Transport - Lavage des mains au savon - Toilette minutieuse de l'orifice Flacon stérile génito-urinaire avec un antiseptique Conservation - Ouvrir le flacon (ne pas toucher le maximum : bord supérieur du flacon) - 12 H si 2 à ECBU - Faire un premier jet urinaire dans les toilettes puis uriner directement 8 C dans le flacon stérile -Fermer immédiatement le flacon, le nettoyer, écrire les nom et prénom, date et heure. - Remplir le questionnaire ECBU - 2 H si C ECBU (Établissements de soins, pharmacies...) Flacon stérile bouchon bleu Tube sous vide bouchon kaki Lavage des mains au savon - Toilette minutieuse de l'orifice génito-urinaire avec un antiseptique - Ouvrir le flacon (ne pas toucher le bord supérieur du flacon) - Faire un premier jet urinaire dans les toilettes puis uriner directement dans le flacon stérile -Fermer immédiatement le flacon -Ouvrir l opercule du flacon à bouchon bleu et percuter le tube kaki. -Identifier immédiatement le tube et jeter les urines restantes - Remplir le questionnaire ECBU Conservation du tube kaki stérile : 48 H Page 16 sur 69

17 ANALYSE Matériel Préconisations Transport - Lavage hygiénique des mains - Toilette soigneuse de la partie génitale au savon puis avec un antiseptique. Bien sécher. - Enlever l adhésif de la poche et coller autour des organes génitaux, en plaçant l encoche au-dessus de URINOCOL Collecteur l anus. Plaquer soigneusement stérile l adhésif sur la peau pour éviter les Apporter le plus fuites (en particulier sillon interfessier) possible au rapidement - Laisser en place 1 heure maximum laboratoire. - Enlever la poche remplie et coller l adhésif sur lui-même pour refermer l ouverture - Placer dans un récipient en évitant que la poche se renverse. Identifier le flacon, nom, date, heure - Remplir le questionnaire ECBU COMPTE D ADDIS (HLM) Flacon spécifique 3 HEURES AVANT LE LEVER - Vider la vessie en rejetant les urines dans les WC - Boire un grand verre d eau - Noter l heure sur le flacon. -Se recoucher et rester allongé, au repos et à jeun pendant 3 heures APRES 3 HEURES PRECISEMENT : - Uriner à fond en recueillant la totalité dans le flacon - Noter l heure sur le flacon. -Noter vos nom et prénom. Apporter le plus rapidement possible au laboratoire URINES DE 24 HEURES Flacon de 3 litres Rejeter les urines du matin dans les WC Noter l heure : Recueillir la totalité des urines de la journée jusqu au lendemain matin même heure compris dans la cantine. Si le récipient fourni est trop petit, utiliser une bouteille d eau minérale vide Noter vos nom et prénom La totalité des urines de 24H doit être acheminée rapidement au laboratoire. Page 17 sur 69

18 ANALYSE Matériel Préconisations Transport COPROCULTURE PARASITOLOGIE DES SEL LES Flacon stérile - Lors des épisodes de diarrhée et à distance de tout traitement - Régime pauvre en résidus et en huiles purgatives pendant quelques jours - Recueillir les selles dans un récipient propre en évitant de contaminer avec les urines - Prélever le maximum de selles à l aide de la spatule et transférer dans le flacon stérile (récipient à disposition au laboratoire). - Inscrivez vos nom et prénom, date et heure, remplir la questionnaire Conservation maximum : - 2 H à C - Recueil au laboratoire si recherche d amibes RECHERCHE DE SANG DANS LES SELLES 3 flacons Recueil des selles sur 3 jours consécutifs. - Recueil des selles fraîchement émises dans un pot fourni par le laboratoire - Recueil éloigné de plus de 3 jours des règles - Ne pas prendre de médicaments (aspirine, vitamine C, Indométacine, corticostéroïdes...) 2j avant l analyse - Identifier le flacon avec votre nom et prénom Apporter chaque flacon au laboratoire chaque jour. RECUEIL DU SPERME Flacon stérile Du lundi au jeudi avant 11 H : - Respecter une abstinence de 3 à 5 jours - Uriner au préalable - Lavage soigneux des mains et de la verge après décalottage - Désinfecter et laisser sécher - Recueillir la totalité de l éjaculat directement dans le flacon fourni - Identifier le flacon, date et heure - Remplir le questionnaire Acheminer au laboratoire immédiatement en gardant le flacon à 37 C Page 18 sur 69

19 ANALYSE Matériel Préconisations Transport CRACHATS Flacon stérile - Le matin au réveil, rincer la bouche et les dents avec de l eau - Faire un effort de toux et recueillir les crachats sans salive - Éviter au maximum la contamination par la salive Acheminer le plus rapidement possible. Référence documentaire : PRE-ACC-EN-007 : Questionnaires et préconisations pour les patients. Page 19 sur 69

20 5. CHOIX DU MATERIEL Vous trouverez en annexes les listes des analyses sanguines, urinaires, bactériologiques et conditions préanalytiques. Si une analyse ne figure pas dans une des listes, merci de contacter le laboratoire pour connaître les conditions de prélèvement 5.1 Prélèvements sanguins Ordre des tubes Les flacons d hémocultures devront toujours être prélevés en premier après une antisepsie parfaite. Les tubes secs fournis par le laboratoire contenant tous des activateurs de la coagulation, il est donc nécessaire de prélever en premier les tubes citratés en vue des tests d hémostase (ou directement après les flacons d hémoculture). Une alternative consiste en l utilisation d un tube neutre (bouchon blanc) avant le tube d hémostase. Page 20 sur 69

21 Le nombre de retournements des tubes est conforme aux standards des procédures recommandées par le NCCLS H3-A5- pour tous les examens de diagnostics sanguins (Cinquième Édition Approuvée). Un nombre insuffisant ou des retournements tardifs dans les tubes avec activateurs (rouge) peuvent avoir comme conséquence le retardement de la coagulation. Dans les tubes avec anticoagulants, un retournement inadéquat peut engendrer une agglutination plaquettaire avec pour conséquence des résultats incorrects. Le prélèvement d un tube de sang pour la coagulation doit être immédiatement achevé par une homogénéisation par retournement du tube au minimum 4 fois. Remarque : Attention de ne pas retourner trop vigoureusement les tubes pour éviter une hémolyse ainsi que la formation de mousse Les différents types de tubes FLACONS POUR HEMOCULTURES Flacon monophasique avec milieu liquide (bouillon riche favorisant le développement d un grand nombre de germes responsables de septicémies) Ensemencement idéal : 10 ml de sang total (repère sur le côté du flacon) SANG TOTAL POUR CULTURES AEROBIE ET ANAEROBIE TUBE CITRATE BOUCHON BLEU POUR OBTENTION DE SANG TOTAL CITRATE / PLASMA CITRATE Mélange par 3-4 retournements lents Tube avec Citrate de sodium 9NC 3,8% M pour tests de coagulation Citrate = anticoagulant, le citrate, en chélatant les ions calcium, empêche le sang de coaguler de manière réversible et permet les tests d'hémostase. Hémostase : TP, TCA, fibrinogène, Antithrombine III, D-Dimères (toujours urgent), Héparines, facteurs de la coagulation Respect de la proportion sang/anticoagulant (bien remplir le tube jusqu au cercle gravé) Acheminer le prélèvement à température ambiante dans un délai inférieur à 4 heures (1 H pour les héparinémies) Page 21 sur 69

22 TUBE SEC AVEC SEPARATEUR BOUCHON JAUNE OR POUR OBTENTION DE SERUM Mélange par 6 retournements lents Tubes en polyéthylène stériles, sous vide, avec activateur de la coagulation et séparateur acrylique. Lors de la centrifugation, le gel séparateur forme une barrière entre le sérum et les cellules sanguines, permettant d améliorer la stabilité de certains paramètres. Pour marqueurs tumoraux, protéines spécifiques, sérologie, hormonologie, autoimmunité, allergie, vitamines TUBE HEPARINE DE LITHIUM BOUCHON VERT POUR OBTENTION DE SANG TOTAL HEPARINE / PLASMA HEPARINE Mélange par 8-10 retournements Tubes BD Vacutainer PST II avec héparine de lithium et séparateur acrylique de plasma. L'héparine de lithium est un anticoagulant qui active les antithrombines (en accélérant l inhibition du facteur Xa par l antithrombine III et bloquant ainsi la cascade de coagulation de l'échantillon de sang). Gel séparateur (résine acrylique) au fond du tube qui forme une barrière entre le sérum et les cellules sanguines, permettant d améliorer la stabilité de certains paramètres Biochimie classique et Troponine, NT-Pro BNP, Procalcitonine TUBE EDTA BOUCHON VIOLET POUR OBENTION DE SANG TOTAL EDTA / PLASMA EDTA Mélange par 8-10 retournements lents EDTA = anticoagulant pulvérisé sur les parois du tube, offre la meilleure protection pour la cellule de sang, particulièrement pour les plaquettes sanguines. Numération Formule, Plaquettes, Réticulocytes, Paludisme Groupes sanguins, RAI HBA1C, HLA B27, Ciclosporine et Tacrolimus, BNP Page 22 sur 69

23 TUBE FLUORURE DE Na/EDTAK3 BOUCHON GRIS POUR OBTENTION DE PLASMA (antiglycolytique et anticoagulant) Mélange par 8-10 retournements lents Fluorure Na: inhibiteur de la glycolyse. Glycémie (prélèvement hors laboratoire), alcoolémie, lactates Aiguilles AIGUILLES QUICKFIT Aiguille Quickfit 21Gx1 (0.8x25mm) VERT AIGUILLES QUICKFIT Aiguille Quickfit 22Gx1 (0.7x23mm) NOIR CORPS DE POMPE QUICKFIT Caractéristiques : Corps de pompe réutilisable avec système intégré d éjection de l aiguille activé à une main (pression sur 2 clips latéraux). A utiliser avec aiguilles spécifiques Quick Fit à baïonnette. Recommandations : Déclencher la libération de l aiguille au-dessus d un collecteur. Réutilisable EPICRÂNIENNES Si une épicrânienne est utilisée, il convient de s assurer que le tuyau collecteur fait moins de 5 cm et en cas d examen d hémostase, utiliser un tube bleu de purge que l on remplira de quelques gouttes de sang avant d utiliser le tube bleu destiné au laboratoire. Vous trouverez dans le tableau du référentiel des analyses effectuées au laboratoire tous les renseignements pré-analytiques concernant les analyses sanguines. Page 23 sur 69

24 5.2 Prélèvements urinaires (hors bactériologie) Les différents dispositifs Flacon pour le recueil des urines de 24 H («cantine»). Flacon en polypropylène, à compléter avec une bouteille d eau minérale si la miction des 24 H est supérieure au volume du flacon. Pour tout paramètre à doser sur 24 H (en fonction de la prescription) : Albumine, sucre, acide urique, ionogramme, créatinine, calcium, phosphore, protéines de Bence Jones,...) Flacon pour Compte Addis (HLM) Flacon en polypropylène pour le comptage des globules blancs et hématies dans les urines émises en 3 H, en position couchée. POCHE POUR RECUEIL DES URINES CHEZ LES BEBES Poche stérile avec découpes anatomiques pour le recueil des urines des bébés. Pour analyses bactériologiques ou chimiques. Vous trouverez dans le tableau du référentiel des analyses (annexes 1 et 2) tous les renseignements pré-analytiques concernant les analyses de biochimie urinaire. Selon les cas, les analyses peuvent être réalisées sur échantillon et/ou sur urines de 24 H. 5.3 Prélèvements de bactériologie POCHE POUR RECUEIL DES URINES CHEZ LES BEBES Poche stérile avec découpes anatomiques pour le recueil des urines des bébés. Pour analyses bactériologiques ou chimiques. La pose doit être inférieure à 2H Page 24 sur 69

25 FLACON STERILE POUR LE RECUEIL DES PRELEVEMENTS LIQUIDES PETIT FORMAT Flacon stérile en polypropylène préconisé pour le recueil stérile des divers liquides biologiques (urines, sperme, liquides de ponction) et des biopsies. FLACON STERILE POUR LE RECUEIL DES PRELEVEMENTS LIQUIDES GRAND FORMAT Flacon stérile en polypropylène préconisé pour le recueil stérile des divers liquides biologiques. De taille plus grande que le précédent, il est utilisé plus souvent pour les prélèvements de selles, crachats mais peut se substituer au petit format. FLACONS POUR HEMOCULTURES ET LIQUIDES DE PONCTION Flacon monophasique avec milieu liquide (bouillon riche favorisant le développement d un grand nombre de germes responsables de septicémies) Ensemencement idéal : 10 ml de sang total (repère sur le côté du flacon), 1 ml chez le bébé. Il peut également être ensemencé avec les liquides de ponction SANG TOTAL ET LIQUIDES DE PONCTION POUR CULTURES AEROBIE ET ANAEROBIE ECOUVILLONS Il existe une grand nombre d écouvillons stériles différents selon le prélèvement à réaliser : peau, muqueuses diverses, écoulements.. Ils sont pourvus de milieux de transport (sauf Pour les prélèvements réalisés au laboratoire qui sont ensemencés rapidement). Il convient de se rapprocher du laboratoire qui vous fournira l écouvillon adapté Page 25 sur 69

26 6. REALISATION DES PRELEVEMENTS Pour les prélèvements réalisés par les patients, voir la rubrique préconisations 6.1 Habilitations pour la réalisation des prélèvements Le tableau suivant défini les habilitations pour les différents types de prélèvement Préleveur Pharmacien Technicien Infirmier Prélèvement biologiste Prélèvement veineux et capillaires au laboratoire * * * Prélèvements veineux et capillaires à domicile, en clinique ** * * Épreuves avec injection * Prélèvements bactériologiques et mycologiques * non invasifs ** Technicien disposant de l attestation de formation aux gestes et soins d urgence (AFGSU) 6.2 Prélèvements sanguins veineux Matériel Avant de prélever le patient il est nécessaire de vérifier la propreté de la salle de prélèvement et la disponibilité du matériel nécessaire : aiguilles stériles à usage unique et porte aiguille avec éjection automatique épicrâniennes pour prélèvements difficiles et porte aiguille tubes à prélèvement sous vide dispositif pour hémocultures Gants, solution hydro-alcoolique garrot coton et antiseptique pansements containers réglementaires pour les DASRI Poubelle pour usage ménager * Pour les prélèvements à domicile, les préleveurs disposent de boites de prélèvement conformes à la réglementation et portant le logo «UN 3373». Le laboratoire laisse le matériel à la disposition des établissements de soins dans des locaux appropriés. Page 26 sur 69

27 6.2.2 Déroulement du prélèvement sanguin veineux Prendre le dossier du patient après enregistrement. Appeler clairement le patient et vérifier son identité (nom de naissance et date de naissance en cas de groupe sanguin). Installer le patient. A domicile, vérifier la concordance entre l identité du patient et les étiquettes présentées. Vérifier la conformité des documents (ordonnance, fiche de prélèvement, étiquettes). Vérifier le jeûne, les renseignements indispensables à l interprétation des résultats Sélectionner les tubes. Se laver et désinfecter les mains, mettre des gants si nécessaire. La désinfection au gel hydro-alcoolique nécessite un lavage au savon toutes les 4-6 applications de gel. Ponction : au pli du coude, faire une désinfection du point de ponction par un coton imbibé de désinfectant. La désinfection doit commencer au point de ponction et faire un mouvement circulaire en s éloignant du centre. Mettre un garrot si nécessaire (sur les vêtements), ne pas trop serré, puis enlever le garrot dès le remplissage du premier tube effectué. Faire serrer le poing. Décapuchonner l aiguille devant le patient et ponctionner. Recueil de l échantillon sanguin : respecter l ordre des tubes (voir l ordre des tubes p 19). Introduire le premier tube dans le porte-aiguille, enlever le garrot et faire desserrer le poing. Retirer le tube sans à-coups et procéder de la même manière avec les autres tubes. Volumes requis : le tube citraté doit être rempli jusqu à la flèche (trait de jauge). Pour les autres tubes, 2ml de sang suffisent en général pour réaliser les analyses dans de bonnes conditions. En cas de difficulté, privilégier les tubes citratés et secs. Poser le coton sec sur le point de ponction sans appuyer, retirer l aiguille puis appuyer sur le coton fortement. Élimination de l aiguille : elle est immédiate et s effectue devant le patient, dans le container pour objets piquants. Le recapuchonnage de l aiguille est formellement interdit (prévention des AES). Page 27 sur 69

28 Prévention des hématomes : le patient doit appuyer fortement sur le coton pendant 5 min, le bras tendu en restant allongé. Vérifier que l hémostase est complète et coller un pansement. Homogénéisation des échantillons par retournements lents. Identification des échantillons : collage des étiquettes devant le patient après le prélèvement. Faire attention lors des prélèvements à domicile de coller les étiquettes du bon patient (identitovigilance). Facteurs pouvant nuire à la qualité de l acte : o stase sanguine : le garrot doit rester en place moins de 1 min (hémolyse, activation de la coagulation), o non-respect de l ordre des tubes : activation de la coagulation si prélèvement du tube sec (rouge) avant le citrate (bleu), contamination par le potassium du tube EDTA (violet) s il y a prélèvement avant le tube hépariné (vert), o non-respect du rapport volume anticoagulant/volume de sang (tube citraté), o hémolyse : garrot trop serré, trop longtemps, agitation trop forte des tubes. Déposer les prélèvements en technique sur les portoirs dédiés (respecter les horaires pour les tubes secs) Références documentaires : PRE-PRE-PR-014 : Procédure des prélèvements Page 28 sur 69

29 6.3 Prélèvements bactériologiques (Document de référence : REMIC) Prélèvement Urines (ECBU : Examen cytobactériologique des urines) Milieu de jet Urines chez un patient handicapé ou incontinent Urines chez un patient sondé à demeure Urines chez les bébés Urines si urétérostomie Urines de 24 h Helicobacter pylori Renseignement s cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques, surtout date et heure Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Conditions initiales Matériels et prélèvements Conservation Recueil des urines en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre thérapeutique d au moins 5 jours) Recueil sur les premières urines du matin, 3j de suite si recherche de BK Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Recueil sur les premières urines du matin, 3j de suite si recherche de BK Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Recueil sur les premières urines du matin, 3j de suite si recherche de BK Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Recueil sur les premières urines du matin, 3j de suite si recherche de BK Au lever rejeter la totalité dans les toilettes - A distance d au moins 4H de la précédente miction - Lavage hygiénique des mains et toilette locale - Commencer à uriner dans la cuvette des WC puis uriner directement dans le flacon stérile et terminer dans la cuvette des WC. - Fermer immédiatement sans toucher l intérieur du flacon et du bouchon et nettoyer l extérieur Indiquer l identité si cela n a pas été fait par le laboratoire. Le recueil par sondage à l aide d une sonde de petit calibre est acceptable si le recueil lors de la miction est impossible. Eliminer les premières gouttes Un collecteur pelvien sera préféré chez l homme. Le préciser avec les renseignements cliniques. - Clamper la tubulure du collecteur sous le site spécifique de prélèvement avec la pince protégée d une compresse pendant min - Mettre des gants et désinfecter le site - Prélever avec une seringue stérile - Déclamper la sonde et s assurer de l écoulement de l urine Après nettoyage, mettre en place un collecteur stérile pendant 1H maximum. Pendant 24h Recueillir à chaque miction la totalité des urines dans le flacon jusqu au lendemain matin même heure comprise Si le flacon n est pas assez grand, continuer dans une bouteille d eau minérale. Acheminer en moins de 1 heure (ou conserver à 4 C maximum 12H, 48H sur borate) Acheminer en moins de2 heures (ou conserver à 4 C maximum 12H, 48H sur borate) Acheminer en moins de2 heures (ou conserver à 4 C maximum 12H, 48H sur borate) Acheminer en moins de2 heures (ou conserver à 4 C maximum 12H, 48H sur borate) Apporter rapidement au laboratoire Page 29 sur 69

30 Prélèvement Urines COMPTE D ADDIS 1 ER jet d urine (infections urétrale, prostatique..) CHLAMYDIA et MYCOPLASME Prélèvement de liquide de ponction, articulaire, pleural Hémocultures Prélèvement de collections fermées Renseignement s cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques. Noter l heure sur le flacon fourni par le laboratoire avec vos nom et prénom Remplir la fiche de renseignements cliniques. Renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques. Indiquer la température Remplir la fiche de renseignements cliniques Conditions initiales Matériels et prélèvements Conservation 3 h avant le lever : - vider complètement la vessie dans les toilettes, - boire un grand verre d eau, - se recoucher et rester allongé, au repos et à jeun pendant 3 h Pour les femmes : pas de recueil durant les règles - Ne pas faire de toilettes intime avant le recueil - Ne pas avoir uriné dans les 3 h précédant le recueil Prélever lors d un pic fébrile (sauf suspicion endocardite). Remplir au maximum le flacon, toujours avant d éventuels autres tubes. Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Après 3 h : Uriner à fond en recueillant la totalité des urines dans le flacon (où le nom, prénom et l heure doivent être notés.) Les préconisations sont rappelées sur l étiquette du flacon délivré par le laboratoire. - Recueillir dans le flacon stérile fourni par le laboratoire 10 ml environ (soit 1/3 du flacon) du PREMIER JET des urines. - Uriner ensuite dans les toilettes - Bien refermer le flacon sans toucher l intérieur ni le bouchon Noter nom et prénom si cela n a pas été fait par le laboratoire Pot stérile bouchon rouge Tube citraté bleu pour cytologie Enlever les capsules de protection des flacons et désinfecter la surface des bouchons (au moins 1 mn de contact). Réaliser une asepsie rigoureuse de la peau. Effectuer une ponction veineuse avec un système à ailette sans toucher la peau et remplir le flacon (minimum 3ml) - Frotter les sécrétions purulentes avec un écouvillon - Après désinfection, aspirer le pus avec une seringue en faisant le moins de bulles possible et transmettre la seringue - Eventuellement ensemencer un flacon hémoculture Apporter rapidement au laboratoire Apporter rapidement au laboratoire 6 h à C Transmettre le plus rapidement possible à C Transmettre le plus rapidement possible à C Prélèvement de cheveux pour recherche de dermatophytes Prélèvement d ongles pour recherche de dermatophytes Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques A distance de tout traitement antifungique A distance de tout traitement antifungique Prélever les cheveux cassés avec une pince à épiler et les squames et croutes par grattage dans un boite de Pétri stérile Désinfecter l ongle à la Biseptine, prélever dans une boite de Pétri avec une curette la tablette interne de l ongle le plus près possible de la séparation ongle sain/ongle malade. 24 h à C 24 h à C Page 30 sur 69

31 Prélèvement Prélèvement de peau pour recherche de dermatophytes Prélèvement de lésions cutanées externes pour bactériologie Prélèvement oculaire Prélèvement oreille Prélèvement de nez Prélèvement nasopharyngé pour recherche de coqueluche Prélèvement de gorge, langue Renseignement s cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques, en particulier rash cutané, couleur de la langue, immunodépression. Conditions initiales Matériels et prélèvements Conservation A distance de tout traitement antifungique Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Pas de toilette locale ni maquillage Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Prélever dans les 3 premières semaines de la maladie et avant toute antibiothérapie (ou moins de 4 jours après le début du traitement). Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Racler fortement les squames à la périphérie des lésions à l aide d une curette. Gratter les squames avec une curette dans une boite de Pétri. Si lésions suintantes, recueillir avec un écouvillon humide si nécessaire. Prélever au niveau de la conjonctive (grattage) et d éventuelles sécrétions (angle interne de l œil) avec un écouvillon humide. Prendre un écouvillon supplémentaire si recherche de Chlamydiae. Donner le boitier si lentilles. Prélever des cils et sourcils si recherche de démodécies. Éliminer les débris et croutes présents dans le conduit externe avec un écouvillon humidifié avec de l eau stérile et effectuer le prélèvement avec un 2eme écouvillon humide. Frotter le 1/3 inférieur des narines avec un écouvillon éventuellement humidifié Prélever un écouvillon par narine en l introduisant le plus loin possible en suivant la paroi nasale supérieure. Écouvillons floqués sans métal ni coton et milieu de transport indispensables. Voir vidéo sur Utiliser un abaisse-langue pour éviter le contact salivaire et frotter les amygdales, les piliers du voile du palais et la paroi postérieure du pharynx. Prélever les éventuelles membranes ou ulcérations Pour les prélèvements de bouche, prélever à la base de la langue, au niveau du palais et de la face interne des joues. 24 h à C 6 h à C Transmettre le plus rapidement possible C C C Voir laboratoire 6 h à C Page 31 sur 69

32 Prélèvement Prélèvement vaginal ou urétral Eventuellement 1 er jet urines Renseignement s cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Conditions initiales Matériels et prélèvements Conservation Ne pas uriner dans l heure précédente Fenêtre thérapeutique d au moins 5j. Femme : prélever deux écouvillons au niveau du cul de sac et des parois (dont un sera à casser dans un tube de sérum physiologique après étalement sur lame) et un écouvillon au niveau de l endocol (Chlamydia, Neisseria) après nettoyage de la glaire. Prélever en plus toute lésion visible. Homme : introduire de 2-3 cm dans l urètre et ressortir par rotation (écouvillon fin bouchon jaune). Si écoulement, prélever le pus au niveau du méat urinaire. Pour les chlamydiae, écouvillon spécial PCR (rose=femme, bleu=homme). Nettoyer l endocol avec l écouvillon blanc puis faire 5 rotations dans le même sens dans le canal cervical avec l écouvillon bleu et le retirer sans toucher les muqueuses. Casser l écouvillon dans le milieu de transport fourni. HPV : Écouvillon et brosse à décharger dans le milieu de transport approprié. Femme : prélever au niveau de l endocol en effectuant quelques rotations. Homme : prélever dans l urètre ou d éventuelles lésions ano-génitales. Prélèvement au laboratoire (2 H à C si milieu de transport) 24 h à C 24 h à C Recherche herpès Remplir la fiche de renseignements cliniques Homme : ne pas uriner dans l heure précédente Écouvillon sans métal ni coton, milieu de transport (M4RT) : Gratter le plancher des lésions/vésicules visibles, casser l écouvillon dans le milieu de transport associé 15j à C Expectorations Ou sécrétions bronchopulmonaires (le matin au lever) Remplir la fiche de renseignements cliniques - Si possible recueillir le premier «crachat» dès le lever - Éviter la présence de salive qui dilue et contamine le prélèvement - Avant toute antibiothérapie ou arrêt de plus de 5j. - En cas de recherche de BK, répéter le prélèvement pendant 3j - Rincer la bouche et les dents avec de l eau - Faire un effort de toux et recueillir les expectorations dans le flacon stérile fourni par le laboratoire La présence de salive entraînera un refus de prélèvement. Apporter immédiatement au laboratoire Page 32 sur 69

33 Prélèvement COPROLOGIE ET PARSITOLOGIE DES SELLES Recherche de Clostridium difficiles et de ses toxines, Adénovirus, Rotavirus SPERMOGRAMME SPERCYTOGRAMME SPERMOCULTURE SCOTCH TEST Recherches d oxyures Renseignement s cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Remplir la fiche de renseignements cliniques Conditions initiales Matériels et prélèvements Conservation - À effectuer si possible lors des épisodes diarrhéiques, 3 fois de suite pour la parasitologie (selon prescription) - En cas de recherche de formes végétatives d amibes, le recueil ne peut se faire qu au laboratoire (analyse immédiate) - Régime pauvre en résidus et pas de traitement intestinal pendant au moins 3j (huiles, charbon, sels de Baryum ou Magnésium), ni de traitement antibiotiques (durant 5j) - Respecter une abstinence de 3j à 5j et hyperhydratation les jours précédents le prélèvement - Pas de traitement antibiotique si spermoculture - Uriner au préalable - A faire le matin avant toute toilette - préparer un morceau de ruban adhésif classique (jaune) et une lame ou tube plastique disponible au laboratoire - Recueillir les selles directement dans le pot stérile en évitant des les contaminer avec les urines (récipient fourni au laboratoire - Cas de prélèvement de couches de bébés : dès l émission des selles, racler le maximum de matières fécales et les mettre dans le pot. Si les selles sont trop liquides apporter les couches au laboratoire. Il est préférable de faire les prélèvements parasitologiques directement au laboratoire - Lavage soigneux au savon des mains puis de la verge après décalottage - Bien rincer et sécher - Désinfecter, ne pas rincer - Laisser sécher - Recueillir la totalité de l éjaculat obtenu par masturbation directement dans le flacon fourni, sans utiliser de crème ni de lubrifiant. Identifier le flacon si cela n a pas été fait par le laboratoire. - écarter les fesses avec une main et bien déplisser l orifice anal. - Coller fortement le ruban adhésif sur l anus en plusieurs endroits. - Prendre une lame et y coller le ruban adhésif. Presser pour s assurer de la bonne adhésion à la lame. - Si utilisation de tube plastique, coller le ruban adhésif. Appliquer sur l anus, serrer les fesses, desserrer, décoller le ruban pour le coller sur la lame. Bien nettoyer les mains et les ongles après le prélèvement (contagieux). Apporter au laboratoire le plus rapidement possible Déposer immédiatement au laboratoire Maintien à 37 C 24 h à C Page 33 sur 69

34 Laboratoire de Biologie Médicale Jacquet Marchand MANUEL DE PRELEVEMENT Version 2 Date d application : Test respiratoire à la recherche d infection à Hélicobacter pylori Patient à jeun depuis 6 H, sans boire ni manger ni fumer, pas de traitement antibiotique depuis 4 semaines, anti-sécrétoire depuis 2 semaines (IPP, anti H2), arrêt des antiacides et pansements gastriques depuis 24 H. Trois kits sont commercialisés : HELIKIT 75mg, INFAI 75mg pour adulte et 45mg pour enfant. Les protocoles sont en quatre étapes et ont pour but de comparer l air expiré avant et après ingestion d urée en milieu acide. Les échantillons d air expiré sont identifiés et acheminés auprès du laboratoire Biomnis qui réalise les analyses. Référence documentaire : PRE-PRE-IN-042 : test respiratoire pour infection à Helicobacter pylori. Page 34 sur 69

35 Laboratoire de Biologie Médicale Jacquet Marchand MANUEL DE PRELEVEMENT Version 2 Date d application : Hygiène et sécurité 7.1 Conduite à tenir en cas d accident avec exposition au sang (AES) Conduite à tenir : cesser immédiatement l activité en cours Piqures et blessures Projection sur les muqueuses, les yeux *contact direct avec la peau lésée Ne pas faire saigner, nettoyer soigneusement la zone lésée à l eau et au savon. Rincer. Désinfecter avec un dérivé chloré (Dakin, eau de javel diluée au ½, Bétadine, pendant au moins 5 mn Rincer abondamment à l eau ou sérum physiologique, au moins 5 mn, retirer d éventuelles lentilles, consulter un ophtalmologue Nettoyage immédiat de la zone avec de l eau et du savon k, rinçage, désinfection. Démarches à suivre (prélèvement au laboratoire) : informer immédiatement le biologiste responsable et contacter le médecin urgentiste de la clinique qui effectuera le bilan initial, évaluer immédiatement le statut sérologique du patient source en l informant (VIH : <4H et Hépatites), évaluer le statut sérologique de la victime (VIH, Hépatite B et C, NFP, transaminases). Renouveler plusieurs fois pendant 6 mois selon le contexte clinique. Faire une déclaration à la médecine du travail et déclarer l AT dans les 24 H. Référence documentaire : HYG-MO-001 : Conduite à tenir en cas d AES. 7.2 Conduite à tenir en cas d incident lors du prélèvement Préconisations en cas de difficulté de prélèvement Échec potentiel : tout préleveur peu confiant face à un système veineux difficile doit impérativement solliciter l intervention d un opérateur plus expérimenté. Échec constaté : Le préleveur doit en analyser l origine et proposer au patient une alternative convenable (nouveau prélèvement en cas de défaillance matériel, relaxation en cas de mouvement incontrôlé du patient, chercher un nouveau site de ponction ou appeler un autre préleveur en cas de système veineux difficile). Un même préleveur n effectuera pas plus de deux prélèvements infructueux. Références documentaires : PRE-PRE-IN-039 : Préconisations en cas de difficulté de prélèvement Page 35 sur 69

36 Laboratoire de Biologie Médicale Jacquet Marchand MANUEL DE PRELEVEMENT Version 2 Date d application : Conduite à tenir en cas d incident Hématome en formation : compression prolongée et conseiller au retour à domicile une compression alcoolisée ou par poche de glace. Malaise du patient : allonger le patient avec surélévation des membres inférieurs et rassurer Prévenir le biologiste Références documentaires : PRE-PRE-IN-039 : Préconisations en cas de difficulté de prélèvement PRE-PRE-IN-045 : conduite à tenir en cas de choc anaphylactique 7.3 Élimination des déchets Le laboratoire produit deux types principaux de déchets lors des prélèvements : Les déchets assimilables à des ordures ménagères (cartons, papiers..), éliminés avec les poubelles avec accord de la mairie. Les déchets à risque infectieux (DASRI) qui suivent des filières d élimination spécialisées. Il s agit de déchets potentiellement contaminés : déchets piquants et coupants (aiguilles, pipettes en verre, lamelles ), déchets liquides traités et éliminés en interne (effluents des automates, urines..) et déchets solides non traités ni recyclés (cultures microbiologiques, échantillons sanguins, réactifs ). Ils sont triés de façon très précise dans des containers de couleur jaune. Les aiguilles sont disposées dans des containers rigides dédiés, immédiatement après la prise de sang, sans recapuchonnage, en respectant le volume de remplissage du container. Les DASRI sont récupérés par une société spécialisée agréée en vue de leur incinération. Le tri, le stockage et l élimination des déchets d activités de soins à risques infectieux (DASRI) est soumis à réglementation : Arrêté du 24/11/2003 définissant les conditionnements en fonction des déchets Article R du CSP précisant les règles d étiquetage et de marquage des conditionnements Arrêté du 07/09/1990 indiquant les conditions et délais d évacuation des déchets Dès la production des DASRI, un tri doit être effectué de manière à assurer la sécurité des personnes manipulant les contenants de DASRI. Ils ne doivent en aucun cas être mélangés aux ordures ménagères et doivent être recueillis dans les récipients normalisés prévus à cet effet. Le préleveur à domicile est responsable de l élimination de ses déchets d activité de soins et ne devra jamais remettre de DASRI dans les boites de prélèvement fournies par le laboratoire (en particulier aiguilles souillées). Page 36 sur 69

37 Laboratoire de Biologie Médicale Jacquet Marchand MANUEL DE PRELEVEMENT Version 2 Date d application : Tous les ustensiles coupants ou piquants doivent être regroupés dans des boîtes récupératrices jaunes marquées NFX Les aiguilles ne devront jamais être recapuchonnées. Les déchets liquides doivent être disposés dans des fûts rigides jaunes. Les autres déchets (coton, pansements..) sont éliminés dans des cartons spécifiques. RESPECTER LES LIMITES DE REMPLISSAGE DES DIFFERENTS CONTAINERS. Les containers sont ensuite entreposés dans le local spécifique des déchets, en y apposant le cachet du laboratoire et la date de récupération par un organisme spécialisé, l émetteur des déchets étant responsable jusqu à la destruction. Référence documentaire : HYG-MO-003 : Tri et élimination des déchets Page 37 sur 69