MISE EN CONFORMITE DES INSTALLATIONS DE PRODUCTION D'EAU DE CONSOMMATION VIS-A-VIS DES BROMATES ET DES PROTOZOAIRES
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- Emma Antoinette Baril
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1 TECHNOLOGIES DE L EAU - Alimentation en Eau Potable - 06AEP02 Direction Qualité et Environnement MISE EN CONFORMITE DES INSTALLATIONS DE PRODUCTION D'EAU DE CONSOMMATION VIS-A-VIS DES BROMATES ET DES PROTOZOAIRES Les ultraviolets, remplacement ou complément de la post-ozonation? Etude imprimée à partir du cédérom "Recueil des études financées par l'agence de l'eau Seine- Normandie" Juin 2006
2 SOMMAIRE SOMMAIRE!"#$%#$! #$#$!!"&'!&#( "'&&!&#" ")!&!$!)!*&#!) +&"#!%&&!&#"),")' *&"!&#&)&#!)"& / '&&)&*& " &!&#")&#! $!+#" $!"2)'&! ! ! $!$& #%&##5&6) % $ : $9942;9< = $!+>& # +&$&6) ( ( "@ :3 &#$&), : : : #&"!&#))*"&'!&# :(
3 TABLE DES FIGURES TABLE DES #:B)*B ':A ( '1A9 2 33( '(A942 33( '.A" '?A"44; '/A948; ( 'CA948; '03A9; 2D)*------/ '00A9; / '0A9!+$ C '0:A9!+$ C '01A"@; :3 '0(A; 29@; :0 '0.A; 29@4; :0 '0?A : '0/A94; :: :
4 TABLE DES TABLEAUX TABLE DES #:B)*B :!4A* 2D :!4:AE (!41AF2; #:B)*B 5-0C!4(A42F !4.A :!4?A"4 4; (!4/A99 #"%2D;)*------?!4CA99 #"% E GGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGGG-:/!400A4;)* :C!40A')B*-./7H0(1700I33:7E :C 1
5 PROBLEMATIQUE PROBLEMATIQUE LE RESPECT DE LA NORME BROMATE SANS COMPROMETTRE LA DESINFECTION 9 9 C/B/:B 3:940CC/ 48 9 J 33: : KB 4 33/-) 9 (KB 433:- 4 ; 99;A 2D;4L < M9= ; )" & 8 #F7&9F M9-2D- D ; E D- 4;$ 8 D KB9 (KB- & D 9 ;(KB- 33: D 371BD7 ; < = LD 97 D 4 4D- &874;4 803KB!"#$%&'(')("!!$*#"%"+",,#""'-./#".'","(0'*1."$,"#'$,*/"&..'" (&+2*'$*!&'%","(0'*1."!$/$',%)("+2#" 44O (
6 PROBLEMATIQUE D ; D 9QN N9 78#F72 8 L ; <)*=- 7 < 4 D=7 P = 4 B9 = 4@P)"& 8; 4E # $ J- &; 4 &--!2 9 9QLQ- N D< D3-33-:B= D ;)*< 8133M- =99 E 8 ; 5 8 G = ; 9; 4 ; 9 D8- &24"(,*5%"(",,"),.%""!,%"/$ *%"#6 )(0" "7* &," "!7&!!*2* *,)! *!,)"! 7#)()%"++"', 72;0;)*<@87F 7 2)*7)* 297G =- DEFINITION DE LA PLACE DU TRAITEMENT PAR LES ULTRAVIOLETS SUR LES CHAINES DE POTABILISATION DES EAUXDE SURFACE <I 29 2; = 4 - ) " & M9 8R9<"6= 233(-.
7 PROBLEMATIQUE L Q 7 9 Q 9 )"&-8@P9A 'E 0A )* < 5= D- 'E A )* < 5=9 D- 'E:A )* < 5= E D- 'E 1A )* < 'E(A )* < 5= "E<-@L=A 'E0A9 9 5 D )" &-! 7 2 E )* 2 N928)* 8S )* E 5<E1=- 'EA9 9@4< 5= 9 D- )* N9 9 - D KB9; D 3-3-: B7 9 9 ;)*<8L)* N9 48E0=-?
8 PROBLEMATIQUE 'E:ATL7)* E D9 5 )*< 4 4= ;@F;F < 9 DB 8 4 < =-!7)* E D7 ; 7 8 )* 7 <@=8 D- 'E 1A 9 E &S;E8< 4 )*=-& 9=< 9= 8 4E A 5 4= F " 7 9 D KB 9 ; 4- 'E(A 9 E 5 98 #F S )* +U- & 94 ; E ;)* 9 +U- 9 E1- " Q7 9 D KB 9 ; E 24L-& L ; 8)* M- - LES VALIDATIONS REALISEES SUR PILOTE PAR EAU DE PARIS 6 8 7* "!,')("!!$*#"1." $ 5*,#$,*&'!.#!&*, 7#)()%)" %8.'" %)!*'5"(,*&' 4 - )"&#F&9F;9 5 /
9 PROBLEMATIQUE 9 ) " &7 E = D < D 3-33-: B= 4= D ;)* < 8 133M- =99E8 ; 5 8 G = ; 9; 4;9 D8- "!&',("!/$ *%$,*&'!1.*5&', &24",%"(",,"),.%" 584 E (- C
10 OBJECTIFS ET MOYENS DE L'ETUDE OBJECTIFS ET MOYENS DE L'ETUDE B@ E- ) 8E 22L = )*B 5 4= DB 5 <9 L 9= = D B 5- E 9 ; 9; < 7 D7;)* 5=-& 7E 8< @@<!+$= ( O O 9 88O 2 E - 03
11 MATERIEL ET METHODES MATERIEL ET METHODES LES FILIERES SUIVIES 6 A 5* "72DE4.'#)!*%." %8&9&'" %": +;< 5O 5* " 7#)$(,".#=% +&9133M- 5O 5* "7"$.&9&')"#)!*%." %&9&'"%" :+;<2D-(",,""$."!,$4&.,)"%.!. 5$," %"(.*/#"9 5O 5* "7"$.&9&')"#)!*%." %":+;< 5- L 2 L 9 : ; 5-) )" & <4 F4= <@FD7"= 4 ;2#F8 2&9F ; 89<= #F ; Figure 1 : Photographie du pilote O3/UV/CAG DESCRIPTION DU PILOTE 8JQ@<'=A <07: 1= D <' =- 7 D 44 )*- 00
12 MATERIEL ET METHODES Figure 2 : Schéma d'une file du pilote Ozonation A D ; < =(@03 0 E@4 2 -@<1= 8 2F; VDV-D 4 <!D&7 F (# H A = W F<!D&75F)*#X#$!533=-D 9-9= D*Y; Z;:701B1ZY1;370 ;:701B1Y: #S@E- A 8 L DAY*B6Y:071B(Y>: 3+*'.,"!? #S42<(- 0 =- A 2; 2D< =-40 2D 9 D- 0
13 MATERIEL ET METHODES File 1 File 3 et 4 Résiduel d ozone (mg/l) 0,2 0,4 C.t (mg.min.l -1 ) 1,26 2,51 Tableau 1 : Résiduel d ozone et Ct théorique sur les files 1, 3 et 4 du pilote O3/UV/CAG Irradiation par U.V. 7)*%+&<[ " #7VV )*F 1-&;:0.= 44 D@F8-9(3[- \- 9F)*.7? < 4133-@ 0 =-)*9 A- E)* )* V)*V- Cuve de relevage A 5@ @9( <Y(- 0 =9 <1-0 <&]^$ -A03_3:3_#$_307:1^]^ 5`@$5=@89 9F 5-9 E <)*= 42-Q74E 5 - A L99+*'.,"! O D E D7 E D 9 ;D : 18 <4=- File 1 Files 3 et 4 Ct (mg.min.l -1 ) Colonne d'ozonation 1,26 2,51 Cuve 1,65 5,00 Total 2,91 7,51 Tableau 2 : Valeurs des Ct dans les colonnes d'ozonation dans les cuves 0:
14 MATERIEL ET METHODES Filtration sur C.A.G. A 5 973@7(-03 0 E & %033@0-9 5B <Y 1BY13B@=7=<=<0-@ ; ;F4D VD 5V;)* V)* 5V- A 467 L 5 :3+*'.,"!- Sulfate de cuivre 9 5 ; 7!"# <a'#"# L999: B 9 C?? B7 < # 1 7(+ #=$6- (3B 9- METHODES PARAMETRES DE SUIVI DU PILOTE 9 8 A E 8 4:9 WL- 01
15 MATERIEL ET METHODES Tableau 3 : Paramètres du pilote PARAMETRES RELATIFS A LA QUALITE DES EAUX DU PILOTE Paramètres microbiologiques F 48 ; D7 D E9- E9 ; D07:1@- $ <( 4P=4P<7C3E7*[ 7 -A:C03/?/=7 L8 - ; #:B)*B 5-9 E4-9 ;033K;03K- ;4P 9 A03K 033K-@49-4P 4H?L- $9942;9 0(
16 MATERIEL ET METHODES ;9'#,! C313 <@ ; 97%^ "7-A%$3./3/=-684F 4- ;@ ; 999A E-"7@'#9 <'!C3101= - J (K<A3(3 ;7(3 ((E7%^"7-A %$313/=-4:?H 1+ 1/+ ; "<8= (K=- D %F <%P (( E7%^"7 4:?H 1/+- %4 44F - 4 E < =7 9E- F 8 033@?(H 4 K=- F "F<! 7%^"7-A%$ 3??3/4P7((E7*[ 7-A:C0 3/.?=-4:?H 4 1/+- Paramètres physico-chimiques < #"%= 8 4 ;- $E8 0.
17 MATERIEL ET METHODES 4 8 < <+ : # 1 =/(b848;f4< # = D-48;F # )*B - # 4F DL8 <"&= E- #!E@;/33<"#+$=- F 4 8 %4 < #"%= '#,!C3:0C<@M#!*& 4;4=- 44)* (1 4 F 8-" 7 8 )*DE8 +"B133 #$$<@M7H01=- 9F;8-" F 4 M97 F 2 E +&$"X) <-6$ 3(3/ ' (33= ;:0:7 4F :33.33-;4 1(3 - F 44)* (1 8 <'!+$= D)* ;D ; 8D <*&7 + @ D < +#$ a7 [ #! ' F :3;37(7-A &/ %"'Y073K=- ; F #:B)*B 5- F 8 F4; ; ; D 9 9 L?3 E90(7 2 2D F Q - 0?
18 MATERIEL ET - <"&#,75031;(37-A31:00C= & F8<"&#,7 C+ 1;(37-A3(0?/.=-84 4F8- E82 F 7 P9 E E[![ <$ +B&# $7 -A $,:333=- A!) ') &# <?3?= J- 4E+ +<033&!4&#$@?3?=- 248@ 4 92 <; 5=- 6 - ; L <0B= ; - 94@; - 8 ;-) - Planning de prélèvement et d analyse 4 1 E9 F ; 4 8 E 8-0/
19 MATERIEL ET METHODES Tableau 4 : Planning des analyses effectuées sur l'eau filtrée et les eaux du pilote O3/UV/CAG 0C
20 RESULTATS ET DISCUSSION RESULTATS ET DISCUSSION PARAMETRES DE L'EAU FILTREE 2 2 $ 9 M9-4 D77 - PH 48 #:B)*B 5 +?7.(/7132-F +?7/(9 F ph de l'eau filtrée alimentant le pilote O3/UV/CAG ph 8,5 8,4 8,3 8,2 8,1 8 7,9 7,8 7,7 7,6 7,5 01-janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 3 : Evolution du ph de l'eau filtrée alimentant le pilote au cours de l'année 2005 TEMPERATURE 7 4; (7 7:7/H :7/H <':=- 3
21 RESULTATS ET DISCUSSION 25 Température de l'eau filtrée alimentant le pilote O 3 /UV/CAG Température ( C) janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 4 : Evolution de la température de l'eau filtrée alimentant le pilote en 2005 TURBIDITE DE L EAU D ALIMENTATION DU PILOTE 4 373( 370( ')- F 4373/')2F 373:-!) (370(-F373/!)2F A E 7 9 2E <%=72 <'1=- Turbidité (FNU ; NTU) Turbidité de l'eau filtrée alimentant le pilote O 3 /UV/CAG Turbidité FNU Turbidité NTU 0,18 0,16 0,14 0,12 0,1 0,08 0,06 0,04 0, janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 5 : Evolution de la turbidité de l'eau filtrée alimentant le pilote en
22 RESULTATS ET DISCUSSION PARAMETRES MICROBIOLOGIQUES COLIFORMES, STREPTOCOQUES, BASR <%=8 2 E 4 E D ; 9 82 E <!4;(.=- Coliformes totaux Escherichia coli Streptocoques BASR TYPE D'EAU 20 ml 50 ml 100 ml 50 ml 100 ml 100 ml 100 ml FILTREE OZONEE CAG UV CAG OZONEE CAG OZONEE CAG Tableau 5 : Nombre d'analyses réalisées au cours de l'étude
23 RESULTATS ET DISCUSSION Coliformes totaux Escherichia coli Streptocoques BASR EAU 20 ml 50 ml 100 ml 50 ml 100 ml 100 ml 100 ml FILTREE OZONE CAG UV CAG OZONE CAG OZONE CAG Tableau 6 : Nombre de résultats positifs obtenus au cours de l'étude MICROORGANISMES REVIVIFIABLES SUR MILIEU R2A /3 7F2 ::3-24 2DVV F437/ 03-82D9 2D371B749307? 07C949;37.37/ 03 - )* Q)*4E 8 2D7 D )* /3 <'.=- " : E :07( ;; 2D )*-& ;)*48 4<c /07C 03 ; 59; D=- ) D ;F E 8E S 4 E 8 2;)*E44<'?=-7 9 5<:= 99 59Q9 <1=- :
24 RESULTATS ET DISCUSSION ; 4;9Q Bactéries R2A/ ml EAU FILTREE OZONE 1 UV 2 OZONE 3 OZONE déc 08-avr 17-juil 25-oct 02-févr Dates Figure 6 : Dénombrements des bactéries sur milieu R2A en fonction des conditions de désinfection Bactéries R2A/ ml EAU FILTREE CAG 1 CAG 2 CAG 3 CAG déc 08-avr 17-juil 25-oct 02-févr Dates Figure 7 : Dénombrements sur milieu R2A des bactéries dans les eaux filtrées sur CAG MICROORGANISMES REVIVIFIABLES SUR GELOSE A L'EXTRAIT DE LEVURE (MILIEU PCA) ";- 4?-4E 9-8; 54 4)' <)' =8- FE4V99V
25 RESULTATS ET DISCUSSION -" )*D- Tableau 7 : Dénombrements sur milieu PCA des bactéries dans les différentes eaux PARAMETRES PHYSICO-CHIMIQUES. LE CARBONE ORGANIQUE TOTAL E 8 Q 9 4;<48=-E ;<'/=87D )*28 E- 8 F #! B-9 #!8; 7F707(07? B- 3,5 3 COT (ppm) 2,5 2 1,5 1 0, déc 08-avr 17-juil 25-oct FILTREE OZONE1 UV2 OZONE3 OZONE4 Dates Figure 8 : Evolution des teneur en carbone organique total des eaux filtrée et désinfectées % 8 9 #! ; 47 #! 4 E 5<'C= #! ; D9 371B< 51 ; =7 #!2D19@ 077: B<F07(B=82 51@ (
26 RESULTATS ET DISCUSSION 37C07. B<F07B=-F2437: B 0/b E9 5- > 5F 22d 2;'C #!7 9Q8E4-! 5< 2 ;)*= VV E E 87 E 9F #!; 5- #!F2 5< )*=A07(3 B7; 5 4DA07?07C073B72 37: B 8 Q ; )*72 2D- & 2 2D ,5 3 COT (ppm) 2,5 2 1,5 1 0, déc 08-avr 17-juil 25-oct Dates FILTREE CAG1 CAG2 CAG3 CAG4 Figure 9 : Evolution des teneur en carbone organique total des eaux filtrée sur CAG LE CARBONE ORGANIQUE DISSOUS BIODEGRADABLE 9 #"% 4;/C-"EE7 ;Q 79@-9 #"% ; B #"% E E D7 4 9 ; 4 4 -" 4 8 #"% ED2 )*;;8 -.
27 RESULTATS ET DISCUSSION FILTREE OZONE1 UV2 OZONE3 OZONE4 22-févr 0,45 0,59 0,37 0,55 0,51 17-mai 0,2 0,3 1 0,5 0,3 07-juin <0,1 <0,1 <0,1 0,3 0,3 28-juin <0,1 <0,1 <0,1 <0,1 1,1 26-juil 0,6 0,4 0,5 0,7 0,4 18-oct 0,2 0,2 0,2 0,1 0,2 13-déc 0,3 0,3 0,3 0,5 0,4 Tableau 8 : Evolution des valeurs de CODB au cours de l'ozonation et désinfection aux UV 8 5 #"%<!4C= 8@ ; 5 9 ; D-! #"% ;9 #!4- FILTREE CAG1 CAG2 CAG3 CAG4 22-févr 0,45 0,37 0,36 0,41 0,33 17-mai 0,2 0,3 0,3 0,4 0,4 07-juin 0 0,5 0, juin 0 0,1 0,2 0,3 0,4 26-juil 0,6 0,4 0,4 0,5 0,4 18-oct 0,2 0,3 0,3 0,3 0,3 13-déc 0,3 0,1 0,3 0,3 0,3 Tableau 9 : Evolution des valeurs de CODB après filtration sur CAG FLUORESCENCE ; 2 8 F 4 F D N9-97 )*7 ; ?
28 RESULTATS ET DISCUSSION 30 EAU FILTREE OZONE 1 UV 2 OZONE 3 OZONE 4 25 Fluorescence UF janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 10 : Evolution de la fluorescence des eaux filtrée et désinfectées par l'ozone et les UV ; E 579 EDE ;)*7S <' 00=- 30 EAU FILTREE CAG 1 CAG 2 CAG 3 CAG 4 25 Fluorescence UF janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 11 : Evolution de la fluorescence des eaux filtrées sur CAG PRECURSEURS DE '00:-49'!+$ 8 ; 9 /
29 RESULTATS ET DISCUSSION 5 E- 8 ; F E 87 2D7 9 2 E E E874 )* - 49 '!+$ '!+$ THM (µg/l) EAU FILTREE OZONE 1 UV 2 OZONE 3 OZONE janv 19-mars 08-mai 27-juin 16-août Dates Figure 12 : Evolution des teneurs en précurseur de THM au cours de la désinfection Fluorescence UF EAU FILTREE CAG 1 CAG 2 CAG 3 CAG janv 20-févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 13 : Evolution des teneurs en précurseur de THM au cours de la filtration sur CAG C
30 RESULTATS ET DISCUSSION DEMANDE EN CHLORE 8 E Q E 7 4 -" ^ M9- '01 ; L Demande en chlore Libre Chloration à 0,8 ppm Chloration à 0,85 ppm Chloration à 0,90 ppm Chloration à 0,95 ppm Chloration à 1,00 ppm Chloration à 1,2 ppm Chloration à 1,3 ppm Chlorartion à 1,4 ppm Chloration à 1,6 ppm 1,40 1,20 1,00 Chlore Libre (mg/l) 0,80 0,60 0,40 0,20 0,00 CAG 1 CAG 2 CAG 3 CAG 4 Echantillons prélevés le 06/12/05 Figure 14 : Demande en chlore des eaux filtrées sur CAG '7 N9 24 ; 4- E @P 2; )" & < 2D7 )*= - CINETIQUE DE DISPARITION DU CHLORE @N97 Q 8 2 EE ' 0( 0. ; Q 2 94@-& :3
31 RESULTATS ET DISCUSSION Q7F ;)*< 5=- Figure 15 : Exemple d'évolution du résiduel de chlore total dans les eaux filtrées sur CAG Figure 16 : Exemple d'évolution du résiduel de chlore libre dans les eaux filtrées sur CAG IONS MINERAUX LES BROMURES 4 E ; 4 4 D-& P9 - :0
32 RESULTATS ET DISCUSSION 40 Concentration en bromures (µg/l) janv 09-mars 28-avr 17-juin 06-août 25-sept 14-nov Dates Figure 17 : Evolution de la teneur en bromure dans l'eau filtrée sable ' 0? (KB733(9 :?KB 9-9 W@7 $ ;4 4 W4- LES BROMATES 94;<'0/=98 2;)* 44<)*=-" Q 2D 4 2D <D 0= ; 2D07: A S L <e(3 KB=9942; 2D D 9; 2D7(-- 0 <D:D1= 4947 :/KB- ; 8 D: 1 9 2;4<Q92; 2D=- :
33 RESULTATS ET DISCUSSION concentration en bromates (µg/l) OZONE 1 UV 2 OZONE 3 OZONE janv févr 11-avr 31-mai 20-juil 08-sept 28-oct 17-déc Dates Figure 18 : Evolution des teneurs en bromate dans les différentes eaux désinfectées ::
34 CONCLUSIONS CONCLUSIONS ; - ) L8 D2 $3-1B3-3B729 D ; 9 ; 57 ; 8 L <42D= E E E- 9E88A E 8 < = !+$7@4@4 742@ 2$ @ E=8 D 4 ; 2D 2D 37 B 9 )* E 54=8 D )* $5* *C#"7#)(&'*!)"%.'7&*',%"/."1.$ *,)%"$.",)(&'&+*1.""!, $5* *C#": (" "&D "!#)$(,".#!=!&',!*,.)!$7#C! "!5*,#"!6 7729; @8- :1
35 ANNEXE ANNEXE CONSIDERATIONS SUR LES UV EN DESINFECTION 9 9<)*=0C E E- 8 I94@7 4E@8@@8)* <;---= )* ;;F82D 4E4 2D 2 E 9 E 4 )* <333 0CC. F 7 ; +^AC3333 : -@ 0 =-." 1."!$!7"(,!5&'%$+"',$.E!.# "!.,#$/*& ",! La nature des ultraviolets et des principales lampes UV E)* 8 F,E94- )*984A)*<033 33=7)* <33/3=7)*%</3:0(=)*<:0(133=- 49)*% 2<33:33=- F)* 4 28 D- )*4 D - - )*F 9 D H - E)*@8<(:-/= F = 2.33C33H -" )* :(
36 ANNEXE La propagation des ultraviolets F)* <= 4<= 29-9 ; ; E 44 < 7 E 8 44)*G = " )* Les mécanismes d'inactivation des microorganismes par les ultraviolets )*44 FE8@8-" 7 " 44 E 4-2 Q@ 4 ;- ")*4 98 ;9 9 < 4= " F )*229 < ; = 94- & 7 7F )*J 8= Les mécanismes de réparation 8; ;)*48 9 J- 9 9 DF87 L N9)* 2 ; Les doses-réponses UV pour différents microorganismes ; ; 97 ; C3b CCb7CC7C:7CC7CCb1-@8 :.
37 ANNEXE <; A G =- )*82 -)* 2)* 2; - 8 8M- 7M- [- 790M- Y0[- Y03M Q 7 E ; E4 4 - ; 4; ) 4 78)* ; L 8 4 ; )* 9 E-9 ;)* 9 47F 7^F - 9 ;)* 9F :?
38 ANNEXE Tableau 10 : Sensibilité aux UV de différents microorganismes pathogènes retrouvés dans les eaux :/
39 ANNEXE Tableau 11 : Sensibilité aux UV de différents bactériophages, bactéries non pathogènes et de bactéries pouvant former des spores 249;97; 7 2) 4 9 )* N9 2 24; 03 -<!40=- Crédit d abattement (Log 10 ) Cryptosporidium dose UV (J.m -2 ) Giardia dose UV (J.m -2 ) Virus dose UV (J.m -2 ) Tableau 12 : Federal Register US / Vol. 68, N 154, 11 août 2003, règles proposées Doses UV nécessaires pour l'inactivation de Cryptosporidium, Giardia Lamblia et de virus :C
40 ANNEXE Moyens de validation et de suivi des doses émises 44F9 2)*- " Q " 7 )* J729-& 4244V)*29 03 V- " Q 48 9 <! 2789Q 9Q729 F 8 -&289"<-@ L=- E7 )*9Q@8 2 8?3 /3 b /3b- 92)* )*74 13
41 ANNEXE 2)* F 2 E 8 244)*2 F )*2792)*8Q )*<E)*= )*<"=- " 8 82 PA 2)* O 42O 2 O 2f O W 784 8D O 244)*2O 2@F 8 F9O 8O 97)*Q- 2 E -& 9E4- Performances des chaînes de traitement vis-à-vis des microorganismes et choix de la dose UV à mettre en oeuvre )*N97P9 ; 4 7 < = )*- " 7 24; E <;
42 ANNEXE Evaluation de l'élimination des protozoaires "# 433V D;2A98 8 V- 4 F@E 2 D- " M9 2&9F ( ;3-0!)- " 2 2#F <3-(= BB 724:143-0!)- + 7 Q ) 7 4 J 94< +?-/! -(H = 3-(g0/3C ) &89 F -E72@F & D7 2; 2D 2Q <03 KB= 2@F82D-&82D 29 % 2D7 94A(H ; 2D : - 2@F8 2D 2)" & <1 28 := Evaluation de l'élimination des virus "# 97 4; E < +7 G =- 2 $ <331= 9 2) Q :- "$# F 9 - ELW 7 ; + 1
43 ANNEXE <8L 9=7 7 9 < G= E D- ph Température degré d'inactivation Résiduel d'ozone Temps de contact Exposition à l'ozone ( C) (Log 10 ) (mg.l -1 ) (min.) (mg.min.l -1 ) Entérovirus 7, ,21 2 0,42 Rotavirus SA ,2 0,15 0,03 HRV ,01-0,03 Hépatite A ,2 8,1 6 >4,6 - - < 0,16 Poliovirus ,15 2 0,3 Coxsackievirus ,03 0,5 0,015 '7 4 ; D 3-1 B 1 < ; 2D = ;)72)2419<42@ = ; 2D (H <@ 97 ; E = E @F8 2D7 ; 2D :
44 ANNEXE CHLORE VIRUS ph Température abattement (log10) Chlore libre (mg.l-1) Temps contact (min) CT (mg.min.l- 1) n Référence Adénovirus à 4 0,14 2,2 0,3 Clarke et al. 8,8-9,0 4 2,5 0,10 2 0,3 1,04 8,8-9,0 25 2,5 0,20 0,7-0,8 0,14-0,16 1,46 6,9-7,1 4 2,5 0,10 0,3-0,4 0,03-0,04 0,66 6,9-7,1 25 2,5 0,10 0,13-0,26 0,01-0,03 Coxsackievirus A à 4 1, ,0 Coxsackievirus A ,46 0,3 0, ,49 1,5 0,74 Coxsackievirus B ,51 3,4 1,73 7, ,49 4,5 2, , ,00 Echovirus ,49 0,5 0,25 7, ,48 1,2 0, , ,0 Echovirus ,43 1,3 0,6 7, ,5 1,8 0, , ,5 Poliovirus ,48 2,1 1,0 7, ,48 1,3 0,6 7 1 à 5 3 0,11-0,20 8 0,88-1, , ,7 Poliovirus ,50 1,2 0,6 0,7 à 1,46 - Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. Kelley and Anderson Engelbrecht et al. Engelbrecht et al. 11
45 ANNEXE CHLORE VIRUS ph Température abattement (log10) Chlore libre (mg.l-1) Temps contact (min) CT (mg.min.l- 1) n Référence 7, à 5 3 0,01-0,1 60 0,06-0, , ,4 Kelley and Anderson Engelbrecht et al. USEPA HAV HM175 6 à ,2 à 0,5 0,6 facteur sécurité de 3 pris 3 0,9 4 1, ,2 à 0,5 0,3 3 0,4 4 0,5 HOCl <0, ,0 OCl <1,04 94< (H = 9 2@ "Q +7 -( :3-: $Q 2@F8@ < 979=99; 8E4-94@P2)"& (
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