Manuel de prélèvement

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1 MDLABT Analyses de Biologie Médicale Manuel de prélèvement Ce document est la propriété exclusive du laboratoire et ne peut être reproduit ou communiqué, en totalité ou en partie, par quelque moyen que ce soit, sans son autorisation écrite

2 MMAR bjet 4 Domaine d application et responsabilités 5 ère partie : MANUL D PRLVMNT 7 1. Équipements et fournitures 8 Liste du matériel disponible 8 Présentation des tubes de prélèvement sanguin utilisés.9 2. Recommandations pré-analytiques 11 Document obligatoire : la feuille de prescription 11 Document obligatoire : la fiche de transmission 11 Formulaires réglementaires : Consentement trisomie 21 et recherches génétiques 13 Préparation du patient 17 Déroulement du prélèvement sanguin 17 rdre de passage des tubes et quantité de retournements 20 Règles d identification et d étiquetage des échantillons 21 Critères de rejet des échantillons 21 Problèmes survenus au cours du prélèvement 21 Conservation et transport des échantillons 22 Gestion des déchets 22 Conduite à tenir en cas d incident de prélèvement 24 Conduite à tenir en cas d A (Accident d xposition au ang) Préconisations pour les analyses microbiologiques 26 o Analyse d urines CBU, Chlamydiae, Mycoplasmes, Légionnelles, Mycobactéries 26 CBU : Cas particuliers 27 Urines : culot 28 Urines : Compte d Addis 28 Urines de 24 heures 29 Urines : parasites (bilharzie, filaires) 29 MU-NR-PRL

3 o Analyse de selles elles : coproculture et examen parasitologique des selles 30 cotch-test 31 elles : recherche de sang 32 elles : stéatorrhée 32 o s gynécologiques vaginal 33 urétral : bactériologie et mycologie 34 perme : spermogramme/spermoculture 35 o s RL Nez : recherche bactériologique ou recherche de BMR 36 Nez : recherche d éosinophiles par lavage 36 Gorge, langue (RL) 37 reilles : recherche bactériologique et mycologique 38 Œil 38 o xpectorations xpectoration pour recherche bactériologique, mycologique et ou BK 39 Coqueluche : recherche de Bordetella pertussis par PCR 39 o s cutanés Plaies, lésions cutanées externes et collections fermées 40 o s divers s divers (cathéter, stérilet, vis, broche ) 40 Hémocultures 41 Liquide articulaire 42 Liquide de ponction (pleural, ascite, LCR) 42 Recherche de dermatophytes et de levures au niveau de la peau, des cheveux et des ongles) Tests spécifiques 44 Anatomopathologie (examen) 44 Clairance de la créatinine

4 Clearance à l urée 45 Cryofibrinogène 46 Cryoglobulines 47 Fécalogramme 47 Fibromètres V, A, 48 g lacrymales 49 Temps de saignement Méthode de Duke 49 Test de Hühner 50 Test respiratoire Hélicobacter Pylori Tests dynamiques 52 o Tests avec injection 52 Test à la LH-RH court 52 Test à la TRH 53 Test au ynacthène 53 o Tests sans injection 54 Diagnostic du diabète gestationnel _ Hyperglycémie provoquée par voie orale sur 2 heures avec 75 g de glucose 54 Test d ULLVAN 55 HGP : Hyperglycémie provoquée par voie orale sur 2 heures 56 Test à la Dexaméthasone 57 Test au Xylose adulte 57 preuve de Nordin 58 ème partie : Liste des analyses 59 o Liste des analyses sanguines 60 o Liste des analyses urinaires 84 Bibliographie 90 Notes

5 BJT Nous vous présentons notre Manuel de. Cette version comporte un éventail des analyses réalisées par notre Laboratoire Medilab st ainsi que par les laboratoires spécialisés avec lesquels nous coopérons. Ce document a pour objet de vous offrir le meilleur service pour la prise en charge de nos patients communs. La première partie, «Manuel de prélèvement», fait une large place aux recommandations pré-analytiques, et apporte des indications, consignes, informations permettant une prise en charge efficace lors de l acte de prélèvement. La seconde partie, «Liste des Analyses», présente l ensemble des analyses réalisées dans notre Laboratoire Medilab st, ainsi que les analyses très spécialisées les plus fréquemment prescrites. Le respect de l ensemble des recommandations pré-analytiques est primordial pour l obtention de résultats d analyses fiables et justes ainsi que pour une gestion des dossiers patients efficace (identification, remboursement, rendu des résultats, analyses complémentaires..). Nous souhaitons que ce manuel corresponde à vos attentes, et vous apporte une aide utile et précieuse dans votre pratique professionnelle quotidienne. l vous est possible de contacter le laboratoire pour toutes informations complémentaires. Nous sommes également attentifs à toutes remarques ou suggestions de votre part qui aideraient à l amélioration de ce manuel mis à jour régulièrement

6 DMAN D APPLCATN T RPNABLT Le manuel est applicable par tous les préleveurs qui sont responsables des actes de prélèvement. Tableau des habilitations pour les différents types de prélèvement : Technicien nfirmier Pharmacien biologiste Médecin biologiste s sanguins veineux et capillaires s sanguins veineux et capillaires à domicile s artériels - Gazométrie (1) (2) Tests dynamiques - ans injection - Avec injection ondage pour prélèvement urinaire chez la femme Ponction sternale ondage pour prélèvement urinaire chez l homme s effectués au niveau des téguments, des phanères et des muqueuses facilement accessibles s vaginaux et urétraux Les recueils de sécrétions lacrymales - 6 -

7 Le préleveur est soit : un infirmier possédant le diplôme d'infirmier diplômé d'état, un médecin, un biologiste disposant du certificat de prélèvement, un technicien disposant du certificat de prélèvement sanguin. (1) Pour les prélèvements à domicile, technicien disposant du certificat de capacité de prélèvements sanguins + l AFGU (Attestation de Formation aux Gestes et oins d Urgence de niveau 2). (2) Les pharmaciens biologistes doivent justifier de la possession d une attestation de formation. Le contenu de cette formation et les conditions de délivrance de cette attestation sont fixés par arrêté du ministre chargé de la santé

8 ère partie MANUL D PRLVMNT - 8 -

9 1. Équipements et fournitures Liste du matériel disponible Ce matériel sert aux prélèvements réalisés et à l extérieur du laboratoire. Pour les prélèvements extérieurs, le laboratoire fournit le matériel nécessaire ainsi que les boites de prélèvement conformes à la réglementation en vigueur, triple emballage, protection des chocs et de la lumière. Boîte étanche. lles sont au nom du laboratoire et possède le logo «UN Matière Biologique B». 1 patient = 1 boite o Aiguilles o Ailettes o eringues à usage unique o Corps de pompe Vacuette à usage unique ou réutilisable (cf. protocole de décontamination) o Tubes pour prélèvements o Flacons à hémoculture o Garrot o Coton o Alcool à 70 o Aniosgel R o Bétadine o Vaccinostyle o Pansements o cotch o Boîte récupératrice d'aiguilles normalisée (NFX ) o Poubelle pour «déchets contaminés» (coton ) o couvillons o péculum à usage unique o Boites de pétri stériles o Pince o Coupe-ongle o calpel / bistouri o Chronomètre o Flacon à CBU stérile avec ou sans borate o Lingettes désinfectantes o Flacon à coproculture stérile o Flacon à urines de 24 heures - 9 -

10 o o o o Flacon compte d Addis Flacon pour recueil de sperme couvillon avec milieu de transport Boite de prélèvement normée conforme à la réglementation ADR contenant le matériel nécessaire (tubes, seringues, pansement, ) et la fiche de transmission. Présentation des tubes de prélèvement sanguin utilisés Tube sans gel VRT 4 ml La paroi intérieure des tubes héparine est recouverte avec de l'héparine de lithium, d'ammonium ou de sodium pulvérisée à sec. Ces additifs sont des anticoagulants qui activent les antithrombines, bloquant ainsi la cascade de coagulation de l'échantillon de sang. L héparine agit en accélérant l inhibition du facteur Xa par l antithrombine. Permet l obtention de. ls sont utilisés pour la chimie clinique. Tube erum avec ou sans éparateur RUG 6 ml l présente sur la paroi interne du tube une fine couche de silice qui permet l activation de la coagulation lorsque les tubes sont correctement homogénéisés. Permet l obtention d un échantillon de sérum. ls sont utilisés pour la chimie clinique, l immunologie, la sérologie et le dosage de certains médicaments

11 Tube DTA VLT 4 ml L DTA K3 (Éthylène Diamine Tétra-acétique tri potassique - [CH2N (CH2CH)2]2) est un anticoagulant choisi pour le dosage des paramètres d hématologie. L DTA agit comme anticoagulant en fixant les ions calcium ; il permet la bonne intégrité des cellules sanguines, des enzymes érythrocytaires ainsi que le dosage des paramètres intra-érythrocytaires. ls sont utilisés pour les analyses d hématologie et d immunohématologie ainsi que pour les hémoglobines glyquées dans le sang total Tube CTRAT BLU 3,5 ml Contient du citrate de sodium, un anticoagulant qui agit en chélatant les ions calcium. ls sont utilisés pour les analyses d hémostase dans le citraté. Respect de la proportion sang/anticoagulant : bien remplir le tube jusqu au trait de jauge. Pour les tubes citrate de plus petite contenance, attention à la position du trait de jauge!

12 Tube GR 4 ml Le Fluorure de sodium avec DTA K3 ou l oxalate de potassium sont utilisés comme inhibiteur de la glycolyse pour préserver le glucose. ls sont utilisés pour la détermination de dosage de glycémie ou d alcoolémie. 2. Recommandations pré-analytiques Document obligatoire : la feuille de prescription La feuille de prescription est un document obligatoire qui comprend les informations nécessaires à l identification du patient et du prescripteur. lle contient également la nature des analyses prescrites, les renseignements cliniques ainsi que la traçabilité du prélèvement. lle se compose le plus souvent de l ordonnance et de la fiche de transmission. Document obligatoire : la fiche de transmission La fiche de transmission est un document obligatoire fournie par le laboratoire et qui doit être complétée en indiquant les éléments suivants : L identification univoque du patient : o Nom, prénom et nom de naissance, o Date de naissance, o exe, o Adresse et numéro de téléphone. Les informations concernant le prélèvement : o Date et heure de prélèvement, o dentification du préleveur, o Modalités de transmission du rendu (fax, téléphone, urgence)

13 Les renseignements cliniques : o tatut physiologique : grossesse, ménopause et la date des dernières règles pour les tests de grossesse et bilans hormonaux, o i traitement aux AVK : posologie, dénomination et valeur cible de l NR, o i dosage de médicaments : dénomination, posologie, date et heure de la dernière prise, o tatut pathologique : fièvre, douleurs, antibiothérapie, traitement, o nformations sur éventuel voyage (recherche de paludisme), o Le poids, o La taille en cm pour les enfants. Les informations nécessaires en cas de groupe sanguin ou de RA : o dentification précise avec nom de naissance BLGATR, o Antécédents transfusionnels, o Antécédents obstétricaux : nombre d enfants, fausses couches, grossesse en cours, o njection anti D pour les femmes RH-1. Les informations relatives à la facturation et prise en charge : o Nom de la caisse et lieu d affiliation, o Régime : local ou général, o N d immatriculation à la écurité ociale, o Nature de l exonération, le cas échéant (maternité, invalidité, ALD, CMU, AM ), o Date de fin de droits sécurité sociale, o Mutuelle (une copie de l attestation est demandée), o Nom de la mutuelle, o N adhérent, o Date de fin de droits mutuelle

14 Formulaires réglementaires : Consentement trisomie 21 et recherches génétiques La réalisation des examens de caractéristiques génétiques d une personne et son identification par empreintes génétiques à des fins médicales sont transmises par nos soins à un laboratoire spécialisé autorisé à pratiquer ce type d analyse. La loi de bioéthique précise un certain nombre de documents indispensables à joindre au prélèvement pour la réalisation des examens de diagnostic génétique pré ou post-natal

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18 Préparation du patient L état de jeûne C est un des éléments permettant la bonne exécution technique des analyses et une interprétation pertinente des résultats : le jeûne assure une meilleure qualité des sérums et/ou s (viscosité augmentée des sérums hyper lipidiques avec par exemple modification possible des conditions de pipetage). Dans la mesure du possible, une période de jeûne strict d au moins 12 heures est nécessaire pour le dosage de la glycémie et du profil lipidique (triglycérides, cholestérol et apolipoprotéines). l est possible de boire un verre d eau, il est recommandé de prendre un repas léger la veille au soir. Pour les autres dosages, une période de jeûne de 4 heures est recommandée. A défaut un repas léger, pauvre en matières grasses est à prévoir. Pour les prélèvements urgents ou d hémostase : pas de conditions particulières. Date et heure de prélèvement à respecter : L heure de prélèvement doit être renseignée sur la fiche de prescription : sur l ordonnance, la fiche de transmission ou tout autre moyen. Déroulement du prélèvement sanguin Au préalable : il convient de : nstaller le patient confortablement. Le prélèvement doit être effectué sur un sujet au repos. Rassurer le patient s il semble angoissé, stressé. Vérifier son identité (nom, prénom, nom de naissance, date de naissance, sexe). assurer de la concordance entre l identité du patient et celle figurant sur la prescription

19 Vérifier la prescription médicale et procéder au recueil des éléments cliniques nécessaires. Respecter les règles d hygiène : lavage des mains ou désinfection hydro-alcoolique. Le port des gants est conseillé. Choisir le matériel adapté au type de prélèvement (tubes, aiguilles, dispositifs de prélèvement) et au malade. Pour les tests dynamiques avec injection : tracer le n de lot du produit ainsi que la date de péremption. 5 étapes pour un prélèvement réussi : 1) assurer que l aiguille soit bien vissée dans le corps de pompe 2) Désinfecter le point de ponction puis piquer la veine. Relâcher le garrot dès le remplissage du premier tube! (Un garrot serré augmente le taux de potassium et est source d hémolyse)

20 3) mportant pour un remplissage complet : Bien maintenir le tube par le bas pendant toute la durée du prélèvement. 4) Homogénéiser les tubes par 5 retournements minimum à la fin du prélèvement Attention de ne pas retourner trop vigoureusement les tubes pour éviter une hémolyse ainsi que la formation de mousse! 5) Jeter l aiguille dans un contenair à déchet spécifique Pour les prélèvements réalisés à la seringue, les points 2 et 4 sont identiques. Le remplissage des tubes se fait jusqu au trait de jauge après avoir jeté l aiguille dans le container à déchet spécifique et ouvert les bouchons des tubes

21 rdre de passage des tubes et quantité de retournements L ordre de prélèvement a pour but d éviter des résultats erronés dus à une contamination entre les additifs du tube. Un nombre insuffisant ou des retournements tardifs peuvent avoir comme conséquence le retardement de la coagulation. Dans les tubes avec anticoagulants, un retournement inadéquat peut engendrer une agglutination plaquettaire avec pour conséquence des résultats incorrects

22 Règles d identification et d étiquetage des échantillons l faut impérativement bien identifier chaque flacon recueillant le prélèvement (tubes de différentes couleurs contenant ou non des anticoagulants, flacon stérile de recueil d urine, de selles, de sperme, de prélèvement mycologique) en indiquant lisiblement : - NM et NM D NAANC s il y a lieu, - PRNM, - DAT de naissance, - Pour la détermination du groupe sanguin, et la recherche d agglutinines irrégulières, il faut également indiquer le sexe (M ou F) tiquetage : Les étiquettes d identification ou les étiquettes CAB doivent être collées soigneusement et impérativement de façon verticale au ras de l étiquette du tube. Critères de rejet des échantillons L absence ou l erreur d identification du prélèvement ou de l échantillon constitue un critère de non-conformité. Celui-ci est enregistré dans le ystème Qualité du laboratoire, et peut entraîner la non-exécution des actes. Problèmes survenus au cours du prélèvement Le préleveur doit informer le laboratoire de tout incident survenu au cours du prélèvement. Conséquences possibles : 1. Temps de coagulation faussé, 2. Tube numération coagulé, 3. Hémolyse, interférences avec les dosages de chimie

23 Conservation et transport des échantillons Les conditions de transport sont un maillon essentiel de la qualité des résultats et doivent respecter les exigences légales relatives au transport. Ainsi le laboratoire met à disposition des préleveurs des mallettes isothermes dans lesquelles ils déposent les boites de prélèvement. Un pain de glace renouvelé régulièrement y assure une plage de température de +18 à +22 C adaptée à la conservation de la majorité des prélèvements. l est également recommandé de stocker dans votre véhicule le minimum de coffrets non utilisés afin d éviter d éventuels chocs thermiques préjudiciables à la bonne conservation des anticoagulants contenus dans les tubes. Lorsqu une température pré-analytique particulière est nécessaire, celle-ci est indiquée dans le tableau des analyses listées à la fin de ce manuel, dans la colonne «Conditions de prélèvements» avec la recommandation de prélever. Ce tableau donne également le délai maximal d acheminement des tubes selon l analyse à effectuer. Analyses complémentaires éventuelles : Les échantillons sont conservés en post-analytique. n cas d ajout d analyses complémentaires, les prélèvements ne sont repris qu après vérification de la faisabilité (dans les notices techniques). Les délais moyens pour les rajouts sont variables en fonction des analyses et dépendent du prélèvement primaire (bon anticoagulant, volume suffisant, ). Dans tous les cas, contacter le laboratoire. Gestion des déchets Le tri, le stockage et l élimination des déchets d activités de soins à risques infectieux est soumis à la réglementation. o Les déchets ménagers comme le carton et le papier où ne figure aucune information confidentielle sont à éliminer dans la poubelle de ville. n revanche, les autres où figurent des identifications sont destinés au destructeur du laboratoire (et recours à des entreprises spécialisées)

24 o Les déchets à risque biologique c'est à dire les DAR (Déchets d'activités de oins à Risques nfectieux) sont de deux catégories et sont éliminés de manière à assurer la sécurité des personnes qui vont manipuler les contenants de DAR : Les objets tranchants ou piquants comme les aiguilles sont à éliminer dans des containers spéciaux de couleur jaune, étanches et indéformables. Les objets contaminés sont à éliminer dans des poubelles en carton ou des fûts en plastiques étanches, eux aussi de couleur jaune, à fermer sans se contaminer et à faire incinérer. Aucun déchet potentiellement contaminé n est laissé chez le patient ni dans la boite de prélèvement. l constitue un danger pour le personnel du laboratoire qui manipule les échantillons et reconditionne les boites. Pas de recapuchonnage des aiguilles. Cette pratique expose le préleveur et le personnel du laboratoire à un risque de piqûre. L enlèvement et l élimination des DAR sont assurés par un prestataire sélectionné par le laboratoire qui assure le transport vers un site d élimination des DAR. Les containers sont identifiés avec le nom du producteur. La traçabilité est assurée par un bordereau de suivi «limination de déchets d activités de soins à risques infectieux» où sont indiqués : le producteur, le nombre de containers enlevés, le poids total des déchets et la date d enlèvement. Ce bordereau est conservé et archivé par le producteur de DAR

25 Conduite à tenir en cas d incident de prélèvement ncident ou Accident Malaise du patient qui reste cependant conscient Hématome au point de prélèvement Perte de connaissance du patient Cause Anxiété, jeûne Garrot trop serré, veine trop fine, piqure hésitante Anxiété, jeûne + cause médicales Conduite à tenir Rassurer le patient. Arrêter le prélèvement et faire comprimer par le patient le point de prélèvement. ncliner le dossier du fauteuil de manière à ce qu il soit le plus allongé possible. Relever les jambes du patient de manière à ce qu elles soient plus hautes que la tête et le couvrir si nécessaire. viter la perte de connaissance en retenant l attention du patient. Faire prévenir un biologiste ou un personnel titulaire de l AFGU sans laisser le patient seul. Noter l incident sur la fiche de prélèvement. Rassurer le patient. Compresser le point de prélèvement. Poser une compresse alcoolisée. Arrêter le prélèvement. ncliner le dossier du fauteuil de manière à ce qu il soit le plus allongé possible. Relever les jambes du patient de manière à ce qu elles soient plus hautes que la tête et le couvrir si nécessaire. Faire prévenir un biologiste ou un personnel titulaire de l AFGU sans laisser le patient seul. i nécessaire, appeler le 15. Remarque : en cas de crise d épilepsie, prendre toutes les précautions nécessaires pour éviter que le patient ne se blesse. Personne agitée, agressive nfant Anxiété, jeûne. Anxiété, première prise de sang Noter l incident sur la fiche de prélèvement. Demander de l aide par exemple pour tenir le bras du patient. i le patient persiste, arrêter le prélèvement. Allonger le patient et prévenir le biologiste. i l enfant est anxieux, en principe, ne garder qu un seul des parents dans la salle de prélèvement. e procurer du gel anesthésiant en pharmacie, ou un patch ; le poser et laisser agir une heure

26 Conduite à tenir en cas d A (Accident d xposition au ang) Premiers soins : ituation Projection d échantillon biologique dans les yeux Projection d échantillon biologique sur les muqueuses Piqûre, blessure cutanée ou projection sur peau Action Rincer abondamment avec le sérum physiologique pendant environ 10 minutes. Retirer, si c est le cas les lentilles de contact. nstiller un collyre antiseptique. Consulter un ophtalmologue le plus rapidement possible. Rincer abondamment pendant 5 minutes sous l eau. Désinfecter avec du Dakin ou du polyvidone. Ne pas faire saigner la blessure. Nettoyer la plaie à l eau courante et au savon. Rincer. Tremper ou imbiber la zone blessée dans ou avec un antiseptique pendant 10 minutes (Dakin, solution de Javel à 9 diluée au 1/5 ème, ou à défaut Bétadine dermique jaune pure ou alcool à 70 ). Déclaration de l accident : La déclaration d accident de travail doit être effectuée dans les 24 heures auprès de la médecine du travail. Un médecin doit être consulté immédiatement afin d évaluer le risque infectieux et envisager la mise en place d un traitement prophylactique anti-viral. uivi sérologique et clinique : après avis médical et en fonction du contexte clinique

27 3. Préconisations pour les analyses microbiologiques Urines : CBU, Chlamydiae, Mycoplasmes, Légionnelles, Mycobactéries But Diagnostic d une infection urinaire. Recommandations au patient Recueil le matin, lavage des mains. Ne pas uriner dans l heure précédant le prélèvement. léments cliniques n dehors de toute antibiothérapie. Femme : indiquer si période menstruelle. Flacon stérile fourni par le laboratoire Matériel Lingettes désinfectantes fournies par le laboratoire ou savon antiseptique Faire une toilette locale soigneuse à l aide de lingettes désinfectantes ou d un savon antiseptique : - Femme : vulve, grandes et petites lèvres, méat urinaire - Homme : verge, gland, méat urinaire uvrir le flacon stérile au dernier moment Uriner le premier jet dans les toilettes. Uriner ensuite dans le flacon stérile et le refermer soigneusement. dentifier le flacon avec nom, prénom, date de naissance, si cela n a pas été fait par le laboratoire et indiquer la date et l heure du recueil. Chlamydiae, mycoplasmes : premier jet du matin Légionnelles : recueil des premières urines du matin Mycobactéries : totalité de la première miction du matin. A renouveler sur 3 jours BK : respecter une restriction hydrique depuis la veille au soir et recueillir les premières urines du matin en quantité suffisante. n principe, recueil des urines sur 3 jours de suite. Rapporter le flacon dans les plus brefs délais. l dépôt peut être conservé au réfrigérateur (2-8 C) pendant maximum 3 heures, délai prolongé à 24 heures si recueil avec conservateur. rendu heures A N A L Y M C R B L G Q U

28 CBU : Cas particuliers La poche de recueil pour les enfants : Faire une toilette locale soigneuse à l aide de la lingette désinfectante fournie par le laboratoire ou au savon antiseptique. Nettoyer soigneusement la peau qui doit être propre et sèche avant la pose. Détacher et jeter la découpe centrale de la poche et retirer le revêtement qui protège l adhésif. Appliquer en massant pour garantir une bonne adhérence. Ne pas dépasser 30 minutes de pose du sac collecteur. Pour enlever la poche, soulever un coin et détacher doucement. Pour assurer l étanchéité, coller l adhésif face contre face, renforcer éventuellement avec un sparadrap. Éviter le transfert de l urine dans un autre flacon mais pour le transport, on peut déposer la poche dans un pot stérile type pot à urine ou coproculture. Le sondage à demeure (AD) : Précaution de base : Respectez impérativement le système clos. Les sondes présentent un site de prélèvement sous forme d une pastille. Clamper sous le site de prélèvement. Attendre. Récupérer l urine fraîchement émise à la seringue après désinfection du site de prélèvement, dans le flacon stérile. Le sondage pour CBU chez les patients incontinents : A N A L Y M C R B L G Q U Respecter les règles d asepsie (gants et compresses stériles, champ ) Utiliser une sonde courte à extrémité arrondie. Recueillir l urine en milieu de jet. nlever la sonde

29 Urines : culot But Numération des éléments figurés. Recommandations Aucune. au patient Matériel Pot stérile fourni par le laboratoire. chantillon d urines fraiches. dépôt Dans les deux heures à température ambiante. Dans les 12 heures si conservation entre 2 et 8 C. rendu 24 heures Urines : Compte d Addis Mesure du débit des hématies But et des leucocytes passant dans les urines. Recommandations Recueil de la totalité des urines émises en 3 heures. au patient Matériel Flacon pour Compte d Addis fourni par le laboratoire. Mettre le réveil 3 heures avant le lever habituel : - e lever. - Vider la totalité de la vessie dans les toilettes. - Boire ¼ litre d eau (2 grands verres). - Noter la date et l heure sur le flacon fourni par le laboratoire. - e recoucher sans manger pendant 3 heures. - Rester allongé, au repos et à jeun pendant 3 heures. 3 heures après (le plus exactement possible) - Après une toilette locale (lingette désinfectante), uriner dans le flacon la totalité des urines. - Noter l heure sur le flacon. NB : i le patient doit uriner avant la fin des 3 heures, recueillir également ces urines dans le flacon et se recoucher. Acheminer le flacon dans les plus brefs dépôt délais. l peut éventuellement être conservé quelques heures au réfrigérateur. rendu 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

30 Urines de 24 heures But Recommandations au patient Matériel dépôt rendu Permet l analyse de certains paramètres de biochimie urinaire. Recueil de la totalité des urines émises pendant une période de 24 heures. Bidon pour urines de 24 heures fourni par le laboratoire. - Au lever : faire uriner le patient dans les toilettes ou jeter les urines. - Noter l heure (exemple : 8 heures). - A partir de ce moment, recueillir toutes les urines du jour et de la nuit dans le flacon fourni par le laboratoire jusqu au lendemain matin même heure incluse (exemple : 8 heures). - Noter sur le flacon : Nom, Prénom, date de naissance, (si cela n a pas été fait par le laboratoire), ainsi que la date et l heure de départ du recueil. NB : i le flacon fourni par le laboratoire est insuffisant, ne jetez pas les urines, mais les récupérer dans un récipient propre (par exemple une bouteille vide d eau minérale) qui sera amené également. Acheminer le(s) flacon(s) dans les plus brefs délais. 24 heures Urines : parasites (bilharzie, filaires) But Recherche des œufs de Bilharzies. Recommandations au patient Matériel dépôt rendu Faire pratiquer un effort le matin au patient. Flacon de 500 ml. Recueillir la totalité de la miction après effort. nférieur à 24 heures. 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

31 elles : coproculture et examen parasitologique des selles Mise en évidence de l agent responsable d une diarrhée But infectieuse (origine bactérienne, parasitaire, virale). Pas de traitement intestinal : laxatif Recommandations xamen à effectuer si possible lors des épisodes au patient diarrhéiques. léments n dehors de toute antibiothérapie. cliniques Préciser un éventuel voyage à l étranger, hospitalisation Matériel Flacon stérile fourni par le laboratoire. Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire. dentifier le flacon avec nom, prénom, date de naissance, si cela n a pas été fait par le laboratoire. Noter la date et l heure du recueil. Acheminer le flacon dans les plus brefs dépôt délais. NB : n cas de recherche d amibes, le recueil est fortement recommandé. Parasitologie : brefs délais < 24 heures rendu Bactériologie : heures A N A L Y M C R B L G Q U

32 cotch-test But Recommandations au patient Matériel dépôt rendu Recherche d œufs d oxyure fréquents chez les enfants et très contagieux. Ces œufs sont recherchés au niveau de la marge anale. ffectuer le prélèvement au lever avant la toilette et les premières selles. 2 lames de microscope fournies par le laboratoire. Ruban adhésif (scotch) standard, transparent, fourni ou non par le laboratoire. (si oui, il est appliqué légèrement sur les lames) Les 2 lames sont disposées dans un étui spécifique. Décoller le scotch du support ou préparer deux bandes de scotch ayant la longueur des lames en verre. Le patient penché en avant, mains sur les genoux, déplier les plis de la marge anale et positionner le scotch au niveau de la marge anale en s aidant d un tube à hémolyse. Retirer le scotch et l appliquer sur la lame de microscope en ayant soin de chasser les poches d air. Renouveler l opération avec le second scotch. Replacer les 2 lames dans l étui spécifique. dentifier l étui avec nom, prénom, date de naissance, si cela n a pas été fait par le laboratoire. Acheminer l étui dans les plus brefs délais. 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

33 elles : recherche de sang But Mise en évidence de l hémoglobine humaine. Recommandations au patient Matériel dépôt rendu Aucune. Recueil des selles de préférence 3 jours de suite si prescrit sur l ordonnance. Flacon fourni par le laboratoire. Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire. dentifier le flacon avec nom, prénom, date de naissance, si cela n a pas été fait par le laboratoire. Noter la date et l heure du recueil. Acheminer le flacon dans les plus brefs délais. 24 heures elles : stéatorrhée Dosage des graisses dans les selles : But analyse fonctionnelle de la digestion. Recommandations Recueil de la totalité des selles de 3 jours ou à défaut recueil au patient des selles de 24 ou 48 heures. Matériel Flacons fournis par le laboratoire. Recueillir la totalité des selles de 24 heures dans le(s) flacon(s) fourni(s) par le laboratoire. dentifier le(s) flacon(s) avec nom, prénom, date de naissance, si cela n a pas été fait par le laboratoire. Noter les dates et heures des recueils. NB : i la prescription précise «sur 3 jours», faites 3 recueils distincts et notez précisément les dates et heures sur tous les flacons. dépôt Acheminer le(s) flacon(s) dans les plus brefs délais. rendu 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

34 vaginal But Recommandations au patient léments cliniques Matériel dépôt rendu Diagnostic d une infection gynécologique. i possible en dehors de toute antibiothérapie. A distance d une toilette intime. Herpès : réaliser le prélèvement le plus tôt possible après l apparition des vésicules. Renseignements cliniques : symptômes. Noter l aspect des lésions et/ou des sécrétions vaginales. péculum à usage unique. Bactériologie standard et Mycoplasmes : 2 écouvillons Chlamydiae par PCR et Herpès : couvillon des kits et lames pour Herpès Prélever avec des gants. Positionner le spéculum. Bactériologie + Mycoplasmes + Chlamydiae : Herpès : Après mise en place d un spéculum, la cavité vaginale est largement ouverte et bien éclairée. Le prélèvement est effectué au niveau du col, après nettoyage de celui-ci et de la cavité vaginale pour éviter la contamination par les sécrétions vaginales. L écouvillon est introduit de 1 cm environ dans le canal cervical et tourné 10 à 20 secondes toujours dans le même sens. Le retirer en évitant le contact avec les parois vaginales. Humecter l écouvillon avec de l eau physiologique stérile et frotter vigoureusement le plancher de la lésion sur toute sa surface : Vésicules : soulever la calotte de la vésicule à l aide d une aiguille stérile (le liquide vésiculaire ne convient pas). Croutelles : découvrir le plancher de la lésion à l aide d une aiguille stérile. rosions : éliminer le pus avec un écouvillon stérile sans perturber le plancher de la lésion. HPV Prélever au niveau de l endocol en effectuant quelques rotations avec la cytobrosse. A transmettre dès que possible heures A N A L Y M C R B L G Q U

35 urétral : bactériologie et mycologie But Recommandations au patient léments cliniques Matériel dépôt rendu Diagnostic d une infection génitale. i possible en dehors de toute antibiothérapie. Abstinence sexuelle de 2 à 5 jours recommandée. Ne pas uriner 2h avant le prélèvement, ne pas éliminer les sécrétions, ne pas laver. Herpès : réaliser le prélèvement le plus tôt possible après l apparition des vésicules. Contexte global du patient : état immunitaire, infection en cours, traitement antibiotique récent éventuel Bactériologie standard : 2 écouvillons : un pour la culture et l autre pour l examen direct Chlamydiae par PCR : couvillon spécial avec milieu de culture Prélever avec des gants. Bactériologie standard + Mycoplasmes : Au moins 1 heure après la dernière miction et toujours avant le premier jet d urine en recueillant le pus ou l écoulement au méat urétral. i absence d écoulement, après décalottage, introduire l écouvillon avec un mouvement de rotation dans le méat urétral sur 1 ou 2 cm. Chlamydiae par PCR : liminer le pus et le mucus qui s écoulent par le méat urinaire ntroduire 1 écouvillon de 1 à 2 cm à l intérieur de l urètre puis imprimer un mouvement de rotation avant de l enlever. Herpès : Humecter l écouvillon avec de l eau physiologique stérile et frotter vigoureusement le plancher de la lésion sur toute sa surface : Vésicules : soulever la calotte de la vésicule à l aide d une aiguille stérile (le liquide vésiculaire ne convient pas). Croutelles : découvrir le plancher de la lésion à l aide d une aiguille stérile. rosions : éliminer le pus avec un écouvillon stérile sans perturber le plancher de la lésion. A transmettre immédiatement heures A N A L Y M C R B L G Q U

36 perme : spermogramme/spermoculture But tude des paramètres du sperme. de préférence. Le prélèvement doit être effectué après une abstinence sexuelle de 3 à 4 jours. Ne pas utiliser de préservatif. Recommandations l doit être effectué le matin entre 7 et 10 heures. au patient Boire 1,5 à 2 litres d eau par jour dans les 2 jours précédent le recueil. Boire 0,5 litre d eau le matin du prélèvement. Flacon stérile fourni par le laboratoire. Matériel Lingette désinfectante fournie par le laboratoire. Vider la vessie dans les toilettes. Laver soigneusement les mains au savon. ffectuer un lavage du gland et désinfecter avec la lingette désinfectante (décalotter le gland). nlever le bouchon du flacon stérile. Recueillir par masturbation la totalité de l éjaculat dans le flacon (Ne rien perdre du prélèvement ou le mentionner lors de l enregistrement du dossier). Refermer soigneusement le flacon. Noter nom, prénom, date de naissance sur le flacon, si cela n a pas été fait par le laboratoire. ndiquer la date et l heure du recueil. i le prélèvement n est pas effectué, Délai dépôt l apporter dans un délai inférieur à 30 minutes en prenant soin de le conserver au contact de la chaleur corporelle (ex : en position debout dans une poche intérieure). rendu 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

37 Nez : recherche bactériologique ou recherche de BMR But Recherche de germes pathogènes multi résistants : recherche de staphylocoque doré méthicillino-résistant. Recommandations au patient i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre thérapeutique de 5 jours maximum). léments cliniques Contexte global du patient : état immunitaire, infection en cours, traitement antibiotique récent éventuel Matériel couvillon x 2. couvillonnage des deux narines (tiers inférieur) avec le même écouvillon sauf précision sur prescription. Possibilité d humidifier l écouvillon avec de l eau physiologique stérile. dépôt Dans les 48 heures. rendu 24 à 48 heures Nez : recherche d éosinophiles par lavage But Cette recherche permet d écarter des rhinites récidivantes non allergiques ou vasomotrices en cas de rhinite allergique. Recommandations au patient Aucune. 1 dosette de 10 ml de sérum physiologique. Matériel 2 pipettes pasteur de 1,5 ml (1 pour chaque narine). 2 flacons stériles (1 pour chaque narine). uvrir une dosette de sérum physiologique en tournant la partie supérieure. dentifier les flacons stériles «narine droite» et «narine gauche». Prélever du sérum physiologique, la moitié de la dosette = 5 ml avec une pipette pasteur. Chez le patient assis tête fléchie en arrière, voile du palais fermé, injecter le sérum dans une narine, en une ou plusieurs fois. Au bout de 10 secondes, le patient doit basculer la tête en avant et se moucher dans le pot correspondant. Recommencer les mêmes opérations pour l autre narine en changeant la pipette pasteur. dépôt. rendu 24 heures A N A L Y M C R B L G Q U

38 Gorge, langue (RL) But Recherche de germes pathogènes spécifiques (streptocoque A, association fuso-spirillaires ). i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre thérapeutique de 5 jours). Recommandations au patient Le patient est mis en confiance par les explications du préleveur et notamment en prévenant du réflexe de régurgitation. nlever les prothèses dentaires amovibles. léments cliniques Contexte global du patient : état immunitaire, infection en cours, traitement antibiotique récent éventuel Matériel couvillon. Prélever 2 écouvillons. Utilisation d un abaisse-langue afin d éviter toute contamination salivaire au moment du prélèvement. (l faut éviter tout contact avec la langue, les joues et le palais). Rechercher attentivement les régions ulcérées, macules et vésicules. Frotter l écouvillon sur chaque amygdale et toute surface d aspect pathologique. l est nécessaire d imprimer aux écouvillons une rotation avec les doigts tout en appuyant légèrement sur la lésion de façon à ce que toute la surface soit bien imprégnée. i ulcérations, prélever à ce niveau. n cas de fausses membranes, prélever sous les fausses membranes ou à la périphérie. dépôt Dans les 24 heures. rendu heures A N A L Y M C R B L G Q U

39 reilles : recherche bactériologique et mycologique Recherche de germes pathogènes et réalisation But d antibiogramme. Recommandations i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre au patient thérapeutique de 5 jours). Contexte global du patient : état immunitaire, infection léments cliniques en cours, traitement antibiotique récent éventuel Matériel 2 écouvillons. Le prélèvement est effectué au mieux, au moment de la paracentèse. Le prélèvement est effectué à l aide de 2 écouvillons fins. dépôt Dans les 48 heures. rendu 24 à 48 heures Œil Recherche de germes pathogènes et réalisation But d antibiogramme. i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre thérapeutique de 5 jours) et avant toute corticothérapie. Recommandations viter tout maquillage, collyre, et pommade 48 heures au patient avant. Pas de toilette avant l examen pour conserver le maximum de sécrétions. Contexte global du patient : état immunitaire, infection en léments cliniques cours, traitement antibiotique récent éventuel Matériel 2 écouvillons sont nécessaires par œil. Recueillir les sécrétions par frottis conjonctival et le pus dans l angle interne de l œil en appuyant avec un doigt sur la paupière inférieure à l aide d un écouvillon. Bien indiquer le site de prélèvement (œil droit, œil gauche). dépôt Dans les 48 heures. rendu 48 heures A N A L Y M C R B L G Q U

40 xpectoration pour recherche bactériologique, mycologique et/ou BK But Rejet par la toux de sécrétions infectieuses. Recommandations i possible en dehors de toute antibiothérapie. au patient Recueil le matin à jeun. viter toute contamination salivaire. Contexte global du patient : état immunitaire, infection en léments cliniques cours, traitement antibiotique récent éventuel Matériel Flacon stérile fourni par le laboratoire. Le recueil se fait le matin au réveil, à jeun, après brossage des dents, rinçage de la bouche et gargarisme avec un liquide aseptique (ex : eau distillée stérile). Après quelques efforts de toux ou après kinésie respiratoire, recueillez le crachat dans le flacon stérile. Cas particuliers : Dans le cas d une recherche de Mycobactéries, prélèvement réalisé 3 jours de suite. dépôt Apporter le flacon dans les plus brefs délais < 24 heures. rendu heures et 7 jours si BK Coqueluche : recherche de Bordetella pertussis par PCR But Recherche Bordetella pertussis par PCR. Recommandations Aucune. au patient Contexte épidémique à préciser. Recherche valable uniquement si : léments cliniques ujet vacciné depuis plus de 3 ans ou statut vaccinal inconnu ujet avec toux de moins de trois semaines Matériel couvillon naso-pharyngé. Maintenir la tête du patient inclinée en arrière. nsérer l écouvillon dans la narine et le pousser délicatement le plus loin possible, parallèlement au palais. Le laisser en place quelques secondes puis le retirer lentement en lui imprimant un léger mouvement rotatif. Procéder de même pour l autre narine avec le même écouvillon. dépôt. rendu 7 jours A N A L Y M C R B L G Q U

41 Plaies, lésions cutanées externes et collections fermées But Recommandations au patient léments cliniques Matériel dépôt rendu Recherche de germes pathogènes et réalisation d antibiogramme. i possible en dehors de toute antibiothérapie locale ou générale (fenêtre thérapeutique : 5 jours minimum). Contexte global du patient : état immunitaire, infection en cours, corticothérapie-traitement antibiotique récent éventuel. couvillon ou écouvillon avec milieu de transport associé. couvillonnage de la lésion. Collections fermées : prélèvement du pus à la seringue. Chasser les bulles d air. Transmettre la seringue sans aiguille ou obturer la seringue avec un bouchon adapté. i recherche de champignons pathogènes, voir Mycologie. A transmettre dans la journée heures s divers (cathéter, stérilet, vis, broche ) But Recommandations au patient Matériel dépôt rendu Aucune. Pot stérile. Recherche d un germe pathogène. Disposer stérilement le matériel dans un pot stérile. térilet : éliminer l excès de sécrétion au niveau du col avec un écouvillon sec. Bien nettoyer le col pour éviter toute contamination par la flore vaginale lors de l extraction. Geste médical. Cathéter : couper stérilement les 5 cm de l extrémité distale pour les cathéters longs et la partie insérée pour les cathéters courts. Les placer dans le flacon stérile. i pus au site d insertion : écouvillonnage. A transmettre dans les 4 heures ; au-delà conserver entre 2 et 8 C et transmettre dans un délai inférieur à 24 heures heures A N A L Y M C R B L G Q U

42 Hémocultures But Diagnostic des bactériémies. Recommandations Aucune. au patient léments cliniques Prélever au moment des pics fébriles. Matériel dépôt rendu Bétadine dermique (sauf si allergie à l iode) ou Biseptine. Flacons aérobie et anaérobie du kit spécial. Ne pas utiliser de flacon d hémoculture présentant un trouble. e laver les mains et revêtir des gants stériles. ter la protection en plastique des bouteilles d hémocultures et procéder à une asepsie des bouchons des flacons. Préparer le bras du malade, poser le garrot et palper la veine. Réaliser une asepsie large du bras. Remplir les 2 flacons en commençant par le flacon aérobie. i d autres tubes sont à prélever, le faire après les flacons d hémoculture. Ne pas mettre le flacon dans une étuve avant transmission. Température ambiante, dans la journée le plus rapidement possible pour optimiser le rendu. 5 jours maximum A N A L Y M C R B L G Q U

43 Liquide articulaire Recherche de germes pathogènes et antibiogramme. But Recherche de microcristaux. i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre Recommandations thérapeutique de 15 jours). au patient Respect des mesures d asepsie rigoureuses et de conditions chirurgicales. Contexte global du patient : état immunitaire, infection en léments cliniques cours, traitement antibiotique récent éventuel Flacon stérile. l faut impérativement : Matériel un tube sec stérile pour la chimie et la bactériologie, un tube pour la cytologie. Geste médical. Les prélèvements doivent être transmis le plus rapidement dépôt possible (moins de 2h à +20 C) pour éviter la dénaturation des cellules et la mort des bactéries. rendu heures Liquide de ponction (pleural, ascite, LCR) But Recherche de germes pathogènes et antibiogramme. i possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre Recommandations thérapeutique de 5 jours). au patient Respect des mesures d asepsie rigoureuses et de conditions chirurgicales. Contexte global du patient : état immunitaire, infection en léments cliniques cours, traitement antibiotique récent éventuel Pot stérile. Matériel (LCR : deux pots bactério-cytologie/chimie) Geste médical. Ponction avec une aiguille de gros diamètre montée sur une seringue. Chasser l air et obturer. dépôt Le plus rapidement possible. Ne pas mettre entre +2 et +8 C heures rendu (LCR : examen direct et cytologie immédiats) A N A L Y M C R B L G Q U

44 Recherche de dermatophytes et de levures (au niveau de la peau, des cheveux et des ongles) But dentification d un champignon pathogène. Privilégier le prélèvement. Recommandations Ne pas débuter un traitement antifongique avant le au patient prélèvement. Métier exercé, notion de voyage récent en zone tropicale, léments cliniques contact éventuel avec des animaux, loisirs (piscine, cheval, chasse, jardinage ), cas dans l entourage Matériel de prélèvement disponible : pince Matériel à épiler, lime, ciseau, vaccinostyle. Pot stérile, boite de Pétri, écouvillon. Lésion de la peau glabre et des plis : Ne pas prélever à l écouvillon, prélever à l aide d une curette ou d un scalpel en raclant fortement les squames à la périphérie de la lésion. Recueillir les squames dans une boite de Pétri et identifier correctement l échantillon. Lésion séche, Pityriasis versicolor : Réaliser le prélèvement à la cellophane adhésive. Après apposition de celle-ci sur la lésion, déposer la cellophane adhésive sur une lame de verre pour observation microscopique. Transmettre dans un porte-lame. Lésion unguéale (ongle) : Limer la partie distale atteinte avec une lime. Prélever également à la curette des poussières d ongle en raclant la tablette interne de l ongle. Prélever le pus de périonyxis en pressant la lésion (écouvillon). Lésion du cuir chevelu et des zones pileuses : Prélever à la loupe les cheveux cassés avec le bulbe pileux si possible. Prélever les squames et les croutes à la curette. Récolter ces divers prélèvements dans une boite de Pétri. dépôt Dans les 48 heures. rendu 30 jours maximum A N A L Y M C R B L G Q U

45 4. Tests spécifiques Anatomopathologie (examen) But tude anatomo-pathologique du tissu. Recommandations Aucune. au patient Fourni par le laboratoire d anatomo-pathologie (flacon, Matériel lames, cytobrosse). Urine : viter les premières urines du matin ; après 2h de marche ou d exercice, recueillir les urines de milieu et fin de jet, transport rapide. Frottis vaginal : A distance d une toilette intime. liminer l excès de sécrétion au niveau du col avec un écouvillon en coton. Technique sur lame : gratter l exo et l endocol avec une spatule d Ayre, étaler en couche fine sur chaque lame, fixer à la laque, déposer le porte-lame. dépôt ans importance une fois le tissu dans la solution de fixation. rendu 7 jours T T P C F Q U

46 Clairance de la créatinine But Méthode simple et pratique d évaluation du débit de filtration glomérulaire. Le patient doit s alimenter normalement et vérifier qu il boit 2L d eau au moins dans la journée. Recommandations viter les aliments riches en créatinine (viande). au patient viter les traitements pouvant augmenter la créatininémie : statines Pas d effort précédant le test. 1 tube. Matériel 1 flacon ne contenant aucun additif pour le recueil des urines de 24h. Recueil des urines de 24h : voir protocole de recueil des urines de 24 heures. de sang : le lendemain matin à jeun, à 8h, à la fin du recueil urinaire. Le résultat de la veille du recueil des urines peut être utilisé pour le calcul, l indiquer en conséquence sur le bon de demande. Homogénéiser les urines et noter le volume total. dépôt Apporter ensemble le flacon d urine + le tube bien identifiés et accompagnés d un bon mentionnant clairance de la créatinine. Clearance à l urée But Recommandations au patient Matériel dépôt La clearance à l urée éliminée par le rein se définit comme le volume de (en ml) entièrement épurée d urée en une minute. Aucune. Flacons d urine (type addis) de 500 ml. Tubes s pour le dosage de l urée sanguine. Vider la vessie. Faire boire deux grands verres d eau. Allonger le patient pendant une heure. de la totalité des urines. Faire une prise de sang pour le taux de l urée. Redonner deux grands verres d eau et allonger le patient pendant une heure. Prélever à nouveau la totalité des urines. Transmettre les urines pour prise de volume et dosage de l urée sanguine et des urées urinaires de 1 et 2 heures. T T P C F Q U